Summary

Akutte og kroniske modeller av hyperglykemi i sebrafisk: En metode for å vurdere virkningen av hyperglykemi på neurogenese og biodistribusjon av radiomerkede molekyler

Published: June 26, 2017
doi:

Summary

Dette arbeidet beskriver metoder for å etablere akutte og kroniske hyperglykemodeller i sebrafisk. Målet er å undersøke effekten av hyperglykemi på fysiologiske prosesser, som konstitutiv og skadefremkalt neurogenese. Arbeidet fremhever også bruk av sebrafisk for å følge radiomerkede molekyler (her, [ 18 F] -FDG) ved hjelp av PET / CT.

Abstract

Hyperglykemi er et stort helseproblem som fører til kardiovaskulær og cerebral dysfunksjon. For eksempel er det forbundet med økte nevrologiske problemer etter slag og er vist å svekke nevogene prosesser. Interessant nok har den voksne zebrafisken nylig kommet fram som en relevant og nyttig modell for å etterligne hyperglykemi / diabetes og å undersøke konstitutiv og regenerativ neurogenese. Dette arbeidet gir metoder for å utvikle sebrafiskmodeller av hyperglykemi for å undersøke virkningen av hyperglykemi på hjernecelleproliferasjon under hjemmestatiske og hjernens reparasjonsbetingelser. Akutt hyperglykemi er etablert ved intraperitoneal injeksjon av D-glukose (2,5 g / kg kroppsvekt) til voksen sebrafisk. Kronisk hyperglykemi er indusert ved nedsenking av voksen sebrafisk i D-glukose (111 mM) som inneholder vann i 14 dager. Blodglukose-nivåmålinger er beskrevet for disse forskjellige tilnærmingene. Metoder for å undersøke effekten av hyperglykemi på konstitutiv aOg regenerativ neurogenese ved å beskrive telensfalonens mekaniske skade, dissekere hjernen, paraffininkonstruksjon og snitting med et mikrotom og utføre immunhistokjemeprosedyrer, blir demonstrert. Endelig beskrives også metoden for bruk av sebrafisk som en relevant modell for å studere biodistribusjon av radioaktive merkede molekyler (her, [ 18 F] -FDG) ved bruk av PET / CT.

Introduction

Hyperglykemi er definert som for høyt blodsukkernivå. Selv om det kan gjenspeile en situasjon med akutt stress, er hyperglykemi også en tilstand som ofte fører til diagnose av diabetes, en kronisk lidelse av insulinsekresjon og / eller motstand. I 2016 har antall voksne som lever med diabetes nådd 422 millioner over hele verden, og hvert år dør 1,5 millioner mennesker av denne sykdommen, noe som gjør det til et stort helseproblem 1 . Faktisk fører ukontrollert diabetes til flere fysiologiske lidelser som påvirker kardiovaskulærsystemet, nyrene og perifere og sentrale nervesystemer.

Interessant kan akutt og kronisk hyperglykemi endre kognisjon og bidra til både demens og depresjon 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . I tillegg er inntak av pasienter wI hyperglykemi er det blitt forbundet med dårligere funksjonelle, neurologiske og overlevelsesutfall etter iskemisk berøring 7 , 8 , 9 , 10 , 11 . Det ble også vist at hyperglykemi / diabetes påvirker voksen neurogenese, en prosess som fører til generering av nye nevroner, ved å påvirke nevrale stamcelleaktivitet og neuronal differensiering, migrasjon og overlevelse 2 , 12 .

I motsetning til pattedyr, viser teleostfisk, som sebrafisk, intensiv nevogenisk aktivitet gjennom hele hjernen og har en fremragende evne til hjernearbeid i voksen alder 13 , 14 , 15 , 16 . Spesielt er slike kapasiteter mulige på grunn av persistensen av neuRal stamme / stamceller, inkludert radial glia og neuroblaster 17 , 18 , 19 . I tillegg har zebrafisken nylig kommet fram som en modell for å studere metabolske forstyrrelser, inkludert fedme og hyperglykemi / diabetes 20 , 21 , 22 .

Selv om zebrafisken er en velkjent modell for hyperglykemi og nevrogenese, har få studier undersøkt virkningen av hyperglykemi på hjernens homeostase og kognitive funksjon 12 , 23 . For å fastslå effekten av hyperglykemi på konstitutiv og skadefremkalt hjernecelleproliferasjon ble en modell av akutt hyperglykemi opprettet ved intraperitoneal injeksjon av D-glukose. I tillegg ble en modell av kronisk hyperglykemi reprodusert ved nedsenkning av fisk i vann tilsatt wMed D-glukose 12 . Sebrafisk har mange fordeler i forskning. De er billige, enkle å øke og gjennomsiktige i de første utviklingsstadiene, og deres genom er blitt sekvensert. I sammenheng med dette arbeidet viser de også flere flere fordeler: (1) de deler lignende fysiologiske prosesser med mennesker, noe som gjør dem til et kritisk verktøy for biomedisinsk forskning; (2) de tillater hurtig undersøkelse av virkningen av hyperglykemi på hjernens homeostase og neurogenese, gitt deres utbredt og sterk nevogenisk aktivitet; Og (3) de er en alternativ modell som gjør det mulig å redusere antallet pattedyr som brukes i forskning. Til slutt kan sebrafisk brukes som en modell for testing av biodistribusjon av radiomerkede molekyler og potensielle terapeutiske midler ved bruk av PET / CT.

Det overordnede målet med følgende prosedyre er å visuelt dokumentere hvordan man oppretter modeller av akutt og kronisk hyperglykemi i sebrafisk, bruk zebElektroish for å vurdere hjernemodellering i hyperglykemiske forhold og overvåke radiomerkede molekyler (her, [ 18 F] -FDG) ved bruk av PET / CT.

Protocol

Voksne wildtype zebrafish ( Danio rerio ) ble opprettholdt under standard fotoperiod (14/10 h lys / mørk) og temperatur (28 ° C) forhold. Alle eksperimenter ble utført i samsvar med retningslinjene for fransk og europeisk fellesskap for bruk av dyr i forskning (86/609 / EEC og 2010/63 / EU) og ble godkjent av det lokale etikkutvalget for dyreforsøk. 1. Etablere en modell for akutt hyperglykemi hos sebrafisk Forbered en stamløsning av tricaine (MS-222) ved å oppløse…

Representative Results

Ved bruk av prosedyrene beskrevet i denne artikkelen ble intraperitoneal injeksjon av D-glukose (2,5 g / kg kroppsvekt) utført på voksen sebrafisk og ført til en signifikant økning i blodsukkernivået 1,5 time etter injeksjon ( figur 1A ). 24 timer etter injeksjon var blodglukosenivåene like mellom D-glukose og PBS-injisert fisk 12 . For kronisk behandling ble sebrafisk nedsenket i D-glukose-vann (111 mM) og ble hyperglykemisk ve…

Discussion

Dette arbeidet beskriver ulike metoder for å etablere akutte og kroniske modeller av hyperglykemi hos sebrafisk. De viktigste fordelene ved disse prosedyrene er at: (1) de tillater reduksjon i antall pattedyr som brukes til forskning, (2) de er enkle å sette opp og raskt å implementere, og (3) de er økonomiske. Derfor tillater slike modeller undersøkelsen av virkningen av hyperglykemi på et stort antall dyr for å studere dens innvirkning på forskjellige fysiologiske prosesser, inkludert aterotrombose, kardiovask…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker sterkt Direction des Usages du Numérique (DUN) fra La Réunion University for redigering av videoen (spesielt Jean-François Février, Eric Esnault og Sylvain Ducasse), Lynda-Rose Mottagan for voiceover, Mary Osborne-Pellegrin for korrekturlesing Voice-over, og CYROI-plattformen. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra La Réunion University (Bonus Qualité Recherche, Dispositifs incitatifs), Conseil Regional de La Réunion, European Union (CPER / FEDER) og Philancia-foreningen. ACD er mottaker av stipend stipend fra Ministère de l'Education Nationale, de l'Enseignement Supérieur et de la Recherche, La Réunion Universitetet (Contrat Doctoral).

Materials

1mL Luer-Lok Syringe BD, USA 309628
4',6'-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Sigma-Aldrich, Germany D8417
7 mL bijou container plain lab Dutscher, France 080171
D-glucose Sigma-Aldrich, Germany 67021
Digital camera Life Sciences, Japan Hamamatsu ORCA-ER
Disposable base molds  Simport, Canada M475-2
Donkey anti-rabbit Alexa fluor 488 Life Technologies, USA A21206
Embedding center Thermo Scientific, USA Shandon Histocentre 3
Fluorescence microscope Nikon, Japan Eclipse 80i
Fluorodeoxyglucose (18F-FDG) Cyclotron, France
Glucometer test strip LifeScan, France One-Touch 143 Ultra
Goat anti-mouse Alexa fluor 594 Life Technologies, USA A11005
In-Vivo Imaging System TriFoil Imaging, Canada Triumph Trimodality 
Microtome Thermo Scientific, USA Microm HM 355 S
Monoclonal mouse anti-PCNA DAKO, USA clone PC10
Paraformaldehyde (PFA) Sigma-Aldrich, Germany P6148-500G
Polyclonal rabbit anti-GFAP DAKO, USA Z033429
Slide drying bench Electrothermal, USA MH6616
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium citrate trisodium salt dehydrate  Prolabo, France 27833.294
Sterile needle BD Microlance 3 30 G 1/2 ; 0.3 mm x 13 mm
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20
Student surgical scissors Fine Science Tools 91400-14
Superfros Plus Gold Slides Thermo Scientific, USA FT4981GLPLUS
Surgical microscope Leica, France M320-F12
Tissue embedding cassettes Simport, Canada M490-10
Tissue embedding medium LeicaBiosystems, USA 39602004
Toluene Sigma-Aldrich, Germany 244511
Tricaine MS-222 Sigma-Aldrich, Germany A5040
Triton X100 Sigma-Aldrich, Germany X100-500 mL
Vectashield medium  Vector Laboratories, USA H-1000
Xylene Sigma-Aldrich, Germany 534056
Fish Strain AB
Saline phosphate buffer (10X PBS) pH 7.4 (for 1 liter) For preparing 10X PBS, add the following  salts and complete to 1 liter with distilled water
Potassium chloride (MM : 74.55 g/mol): 2.00 g Sigma-Aldrich, Germany 746436
Potassium phosphate monobasic (MM: 136,09 g/mol): 2.40g Sigma-Aldrich, Germany 795488
Sodium chloride (MM : 58.44 g/mol): 80.00 g  Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium phosphate dibasic (MM: 141,96 g): 14,40 g Sigma-Aldrich, Germany 795410

Riferimenti

  1. Ho, N., Sommers, M. S., Lucki, I. Effects of diabetes on hippocampal neurogenesis: links to cognition and depression. Neurosci Biobehav Rev. 37 (8), 1346-1362 (2013).
  2. Cukierman, T., Gerstein, H. C., Williamson, J. D. Cognitive decline and dementia in diabetes–systematic overview of prospective observational studies. Diabetologia. 48 (12), 2460-2469 (2005).
  3. Gaudieri, P. A., Chen, R., Greer, T. F., Holmes, C. S. Cognitive function in children with type 1 diabetes: a meta-analysis. Diabetes Care. 31 (9), 1892-1897 (2008).
  4. Brismar, T., et al. Predictors of cognitive impairment in type 1 diabetes. Psychoneuroendocrinology. 32 (8-10), 1041-1051 (2007).
  5. Ojo, O., Brooke, J. Evaluating the Association between Diabetes, Cognitive Decline and Dementia. Int J Environ Res Public Health. 12 (7), 8281-8294 (2015).
  6. Capes, S. E., Hunt, D., Malmberg, K., Pathak, P., Gerstein, H. C. Stress hyperglycemia and prognosis of stroke in nondiabetic and diabetic patients: a systematic overview. Stroke. 32 (10), 2426-2432 (2001).
  7. Stead, L. G., et al. Hyperglycemia as an independent predictor of worse outcome in non-diabetic patients presenting with acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 10 (2), 181-186 (2009).
  8. Kagansky, N., Levy, S., Knobler, H. The role of hyperglycemia in acute stroke. Arch Neurol. 58 (8), 1209-1212 (2001).
  9. Gilmore, R. M., Stead, L. G. The role of hyperglycemia in acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 5 (2), 153-158 (2006).
  10. Desilles, J. P., et al. Diabetes mellitus, admission glucose, and outcomes after stroke thrombolysis: a registry and systematic review. Stroke. 44 (7), 1915-1923 (2013).
  11. Dorsemans, A. C., et al. Impaired constitutive and regenerative neurogenesis in adult hyperglycemic zebrafish. J Comp Neurol. , (2016).
  12. Schmidt, R., Strähle, U., Scholpp, S. Neurogenesis in zebrafish – from embryo to adult. Neural Dev. 8, 3 (2013).
  13. Kizil, C., Kaslin, J., Kroehne, V., Brand, M. Adult neurogenesis and brain regeneration in zebrafish. Dev Neurobiol. 72 (3), 429-461 (2012).
  14. Grandel, H., Brand, M. Comparative aspects of adult neural stem cell activity in vertebrates. Dev Genes Evol. 223 (1-2), 131-147 (2013).
  15. Lindsey, B. W., Tropepe, V. A comparative framework for understanding the biological principles of adult neurogenesis. Prog Neurobiol. 80 (6), 281-307 (2006).
  16. März, M., et al. Heterogeneity in progenitor cell subtypes in the ventricular zone of the zebrafish adult telencephalon. Glia. 58 (7), 870-888 (2010).
  17. Chapouton, P., Jagasia, R., Bally-Cuif, L. Adult neurogenesis in non-mammalian vertebrates. Bioessays. 29 (8), 745-757 (2007).
  18. Lindsey, B. W., Darabie, A., Tropepe, V. The cellular composition of neurogenic periventricular zones in the adult zebrafish forebrain. J Comp Neurol. 520 (10), 2275-2316 (2012).
  19. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. Zebrafish. , 2611-2619 (2012).
  20. Oka, T., et al. Diet-induced obesity in zebrafish shares common pathophysiological pathways with mammalian obesity. BMC Physiol. 10, 21 (2010).
  21. Capiotti, K. M., et al. Persistent impaired glucose metabolism in a zebrafish hyperglycemia model. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. 171, 58-65 (2014).
  22. Capiotti, K. M., et al. Hyperglycemia induces memory impairment linked to increased acetylcholinesterase activity in zebrafish (Danio rerio). Behav Brain Res. 274, 319-325 (2014).
  23. Schmidt, R., Beil, T., Strähle, U., Rastegar, S. Stab wound injury of the zebrafish adult telencephalon: a method to investigate vertebrate brain neurogenesis and regeneration. J Vis Exp. (90), e51753 (2014).
  24. Diotel, N., et al. Effects of estradiol in adult neurogenesis and brain repair in zebrafish. Horm Behav. 63 (2), 193-207 (2013).
  25. Rodriguez Viales, R., et al. The helix-loop-helix protein id1 controls stem cell proliferation during regenerative neurogenesis in the adult zebrafish telencephalon. Stem Cells. 33 (3), 892-903 (2015).
  26. Kaslin, J., Ganz, J., Brand, M. Proliferation, neurogenesis and regeneration in the non-mammalian vertebrate brain. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 363 (1489), 101-122 (2008).
  27. Kroehne, V., Freudenreich, D., Hans, S., Kaslin, J., Brand, M. Regeneration of the adult zebrafish brain from neurogenic radial glia-type progenitors. Development. 138 (22), 4831-4841 (2011).
  28. Alunni, A., Bally-Cuif, L. A comparative view of regenerative neurogenesis in vertebrates. Development. 143 (5), 741-753 (2016).
  29. März, M., Schmidt, R., Rastegar, S., Strähle, U. Regenerative response following stab injury in the adult zebrafish telencephalon. Dev Dyn. 240 (9), 2221-2231 (2011).
  30. Wullimann, M., Rupp, B., Reichert, H. . Neuroanatomy of the zebrafish brain: A topological atlas. , 1-144 (1996).
  31. Pellegrini, E., et al. Identification of aromatase-positive radial glial cells as progenitor cells in the ventricular layer of the forebrain in zebrafish. J Comp Neurol. 501 (1), 150-167 (2007).
  32. Zupanc, G. K., Hinsch, K., Gage, F. H. Proliferation, migration, neuronal differentiation, and long-term survival of new cells in the adult zebrafish brain. J Comp Neurol. 488 (3), 290-319 (2005).
  33. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. iConcept Press. , 2611-2619 (2013).
  34. Connaughton, V. P., Baker, C., Fonde, L., Gerardi, E., Slack, C. Alternate Immersion in an External Glucose Solution Differentially Affects Blood Sugar Values in Older Versus Younger Zebrafish Adults. Zebrafish. , (2016).
  35. Prasad, S., Sajja, R. K., Naik, P., Cucullo, L. Diabetes Mellitus and Blood-Brain Barrier Dysfunction: An Overview. J Pharmacovigil. 2 (2), 125 (2014).
check_url/it/55203?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dorsemans, A., Lefebvre d’Hellencourt, C., Ait-Arsa, I., Jestin, E., Meilhac, O., Diotel, N. Acute and Chronic Models of Hyperglycemia in Zebrafish: A Method to Assess the Impact of Hyperglycemia on Neurogenesis and the Biodistribution of Radiolabeled Molecules. J. Vis. Exp. (124), e55203, doi:10.3791/55203 (2017).

View Video