Summary

Modelos agudos y crónicos de la hiperglucemia en el pez cebra: un método para evaluar el impacto de la hiperglucemia en la neurogénesis y la biodistribución de las moléculas radiomarcadas

Published: June 26, 2017
doi:

Summary

Este trabajo describe métodos para establecer modelos de hiperglucemia aguda y crónica en el pez cebra. El objetivo es investigar el impacto de la hiperglucemia sobre los procesos fisiológicos, tales como la neurogénesis constitutiva y la inducida por lesión. El trabajo también destaca el uso de pez cebra para seguir moléculas radiomarcadas (aquí, [ 18 F] -FDG) utilizando PET / CT.

Abstract

La hiperglucemia es un problema de salud importante que conduce a la disfunción cardiovascular y cerebral. Por ejemplo, se asocia con un aumento de los problemas neurológicos después del accidente cerebrovascular y se muestra que perjudica los procesos neurogénicos. Curiosamente, el pez cebra adulto ha emergido recientemente como un modelo relevante y útil para imitar la hiperglucemia / diabetes y para investigar la neurogénesis constitutiva y regenerativa. Este trabajo proporciona métodos para desarrollar modelos de hiperfeminismo de pez cebra para explorar el impacto de la hiperglucemia en la proliferación de células cerebrales bajo condiciones homeostáticas y de reparación cerebral. La hiperglucemia aguda se establece mediante la inyección intraperitoneal de D-glucosa (2,5 g / kg de peso corporal) en el pez cebra adulto. La hiperglucemia crónica se induce por inmersión de pez cebra adulto en D-glucosa (111 mM) que contiene agua durante 14 días. Se describen mediciones de nivel de glucosa en la sangre para estos diferentes enfoques. Métodos para investigar el impacto de la hiperglucemia sobreY la neurogénesis regenerativa, mediante la descripción de la lesión mecánica del telencéfalo, la disección del cerebro, la inclusión de parafina y la sección con un microtomo, y la realización de procedimientos inmunohistoquímicos. Finalmente, se describe también el método de utilizar el pez cebra como modelo relevante para estudiar la biodistribución de moléculas radiomarcadas (aquí, [18F] -FDG) utilizando PET / CT.

Introduction

La hiperglucemia se define como niveles excesivos de glucosa en la sangre. A pesar de que podría reflejar una situación de estrés agudo, la hiperglicemia es también una condición que a menudo conduce a un diagnóstico de diabetes, un trastorno crónico de la secreción de insulina y / o resistencia. En 2016, el número de adultos que viven con diabetes ha alcanzado 422 millones en todo el mundo, y cada año, 1,5 millones de personas mueren de esta enfermedad, por lo que es un problema de salud importante 1 . De hecho, la diabetes no controlada conduce a varios trastornos fisiológicos que afectan al sistema cardiovascular, a los riñones y al sistema nervioso periférico y central.

Curiosamente, la hiperglucemia aguda y crónica puede alterar la cognición y contribuir a la demencia y la depresión 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . Además, la admisión de pacientes wLa hiperglicemia se ha asociado con peores resultados funcionales, neurológicos y de supervivencia después del accidente cerebrovascular isquémico 7 , 8 , 9 , 10 , 11 . También se demostró que la hiperglucemia / diabetes afecta la neurogénesis de adultos, un proceso que conduce a la generación de nuevas neuronas, por el impacto de la actividad de las células madre neurales y la diferenciación neuronal, la migración y la supervivencia [ 2 , 12] .

En contraste con los mamíferos, los peces teleósteos, como el pez cebra, muestran una intensa actividad neurogénica en todo el cerebro y muestran una capacidad excepcional para la reparación del cerebro durante la edad adulta 13 , 14 , 15 , 16 . Cabe destacar que estas capacidades son posibles debido a la persistencia de neuRal / células progenitoras, incluyendo glia radial y neuroblastos [ 17 , 18 , 19] . Además, el pez cebra ha surgido recientemente como un modelo para estudiar los trastornos metabólicos, incluyendo obesidad e hiperglucemia / diabetes 20 , 21 , 22 .

Aunque el pez cebra es un modelo bien reconocido de hiperglucemia y neurogénesis, pocos estudios han investigado el impacto de la hiperglucemia sobre la homeostasis del cerebro y la función cognitiva 12 , 23 . Para determinar el impacto de la hiperglucemia sobre la proliferación de células cerebrales constitutivas y lesionadas, se creó un modelo de hiperglucemia aguda mediante la inyección intraperitoneal de D-glucosa. Además, se reprodujo un modelo de hiperglucemia crónica a través de la inmersión de peces en agua suplementada wCon D-glucosa 12 . Zebrafish exhiben muchas ventajas en la investigación. Son baratos, fáciles de levantar y transparentes durante las primeras etapas de desarrollo, y su genoma ha sido secuenciado. En el contexto de este trabajo, también muestran varias ventajas adicionales: (1) comparten procesos fisiológicos similares con los humanos, haciéndolos una herramienta crítica para la investigación biomédica; (2) permiten una rápida investigación del impacto de la hiperglucemia sobre la homeostasis del cerebro y la neurogénesis, dada su amplia y fuerte actividad neurogénica; Y (3) son un modelo alternativo, que permite la reducción del número de mamíferos utilizados en la investigación. Finalmente, el pez cebra puede usarse como un modelo para probar la biodistribución de moléculas radiomarcadas y agentes terapéuticos potenciales usando PET / CT.

El objetivo general del siguiente procedimiento es visualizar visualmente cómo configurar modelos de hiperglucemia aguda y crónica en el pez cebra, use zebRafish para evaluar la remodelación cerebral en condiciones hiperglucémicas y monitorear las moléculas radiomarcadas (aquí, [ 18 F] -FDG) utilizando PET / CT.

Protocol

El pez cebra de tipo salvaje adulto ( Danio rerio ) se mantuvo en condiciones normales de fotoperiodo (14/10 h luz / oscuridad) y temperatura (28 ° C). Todos los experimentos se realizaron de acuerdo con las Directrices de la Comunidad Francesa y de la Comunidad Europea para el Uso de Animales en la Investigación (86/609 / EEC y 2010/63 / EU) y fueron aprobados por el Comité de Ética local para la experimentación con animales. 1. Establecimiento de un modelo de hiperglucemia agud…

Representative Results

Utilizando los procedimientos descritos en este artículo, se realizó una inyección intraperitoneal de D-glucosa (2,5 g / kg de peso corporal) en pez cebra adulto y se produjo un aumento significativo de los niveles de glucosa en sangre 1,5 h después de la inyección ( Figura 1A ). 24 h después de la inyección, los niveles de glucosa en sangre fueron similares entre D-glucosa y PBS inyectado de peces [ 12] . Para el tratamiento c…

Discussion

Este trabajo describe varios métodos para establecer modelos agudos y crónicos de hiperglucemia en el pez cebra. Las principales ventajas de estos procedimientos son: (1) permitir una reducción en el número de mamíferos utilizados para la investigación, (2) son fáciles de configurar y de implementar rápidamente, y (3) son económicos. Por lo tanto, estos modelos permiten investigar el impacto de la hiperglucemia en un gran número de animales para estudiar su impacto en diferentes procesos fisiológicos, incluye…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a la Dirección de Usos del Número (DUN) de la Universidad de la Reunión por editar el video (en particular Jean-François Février, Eric Esnault y Sylvain Ducasse), Lynda-Rose Mottagan por la voz en off, Mary Osborne-Pellegrin por la corrección de pruebas La voz en off, y la plataforma CYROI. Este trabajo contó con el apoyo de becas de la Universidad de La Reunión, del Consejo Régional de la Reunión, de la Unión Europea (CPER / FEDER) y de la asociación Philancia. ACD es becario del Ministerio de Educación Nacional, de la Enseñement Supérieur et de la Recherche, de la Universidad de la Reunión (Contrat Doctoral).

Materials

1mL Luer-Lok Syringe BD, USA 309628
4',6'-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Sigma-Aldrich, Germany D8417
7 mL bijou container plain lab Dutscher, France 080171
D-glucose Sigma-Aldrich, Germany 67021
Digital camera Life Sciences, Japan Hamamatsu ORCA-ER
Disposable base molds  Simport, Canada M475-2
Donkey anti-rabbit Alexa fluor 488 Life Technologies, USA A21206
Embedding center Thermo Scientific, USA Shandon Histocentre 3
Fluorescence microscope Nikon, Japan Eclipse 80i
Fluorodeoxyglucose (18F-FDG) Cyclotron, France
Glucometer test strip LifeScan, France One-Touch 143 Ultra
Goat anti-mouse Alexa fluor 594 Life Technologies, USA A11005
In-Vivo Imaging System TriFoil Imaging, Canada Triumph Trimodality 
Microtome Thermo Scientific, USA Microm HM 355 S
Monoclonal mouse anti-PCNA DAKO, USA clone PC10
Paraformaldehyde (PFA) Sigma-Aldrich, Germany P6148-500G
Polyclonal rabbit anti-GFAP DAKO, USA Z033429
Slide drying bench Electrothermal, USA MH6616
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium citrate trisodium salt dehydrate  Prolabo, France 27833.294
Sterile needle BD Microlance 3 30 G 1/2 ; 0.3 mm x 13 mm
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20
Student surgical scissors Fine Science Tools 91400-14
Superfros Plus Gold Slides Thermo Scientific, USA FT4981GLPLUS
Surgical microscope Leica, France M320-F12
Tissue embedding cassettes Simport, Canada M490-10
Tissue embedding medium LeicaBiosystems, USA 39602004
Toluene Sigma-Aldrich, Germany 244511
Tricaine MS-222 Sigma-Aldrich, Germany A5040
Triton X100 Sigma-Aldrich, Germany X100-500 mL
Vectashield medium  Vector Laboratories, USA H-1000
Xylene Sigma-Aldrich, Germany 534056
Fish Strain AB
Saline phosphate buffer (10X PBS) pH 7.4 (for 1 liter) For preparing 10X PBS, add the following  salts and complete to 1 liter with distilled water
Potassium chloride (MM : 74.55 g/mol): 2.00 g Sigma-Aldrich, Germany 746436
Potassium phosphate monobasic (MM: 136,09 g/mol): 2.40g Sigma-Aldrich, Germany 795488
Sodium chloride (MM : 58.44 g/mol): 80.00 g  Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium phosphate dibasic (MM: 141,96 g): 14,40 g Sigma-Aldrich, Germany 795410

Riferimenti

  1. Ho, N., Sommers, M. S., Lucki, I. Effects of diabetes on hippocampal neurogenesis: links to cognition and depression. Neurosci Biobehav Rev. 37 (8), 1346-1362 (2013).
  2. Cukierman, T., Gerstein, H. C., Williamson, J. D. Cognitive decline and dementia in diabetes–systematic overview of prospective observational studies. Diabetologia. 48 (12), 2460-2469 (2005).
  3. Gaudieri, P. A., Chen, R., Greer, T. F., Holmes, C. S. Cognitive function in children with type 1 diabetes: a meta-analysis. Diabetes Care. 31 (9), 1892-1897 (2008).
  4. Brismar, T., et al. Predictors of cognitive impairment in type 1 diabetes. Psychoneuroendocrinology. 32 (8-10), 1041-1051 (2007).
  5. Ojo, O., Brooke, J. Evaluating the Association between Diabetes, Cognitive Decline and Dementia. Int J Environ Res Public Health. 12 (7), 8281-8294 (2015).
  6. Capes, S. E., Hunt, D., Malmberg, K., Pathak, P., Gerstein, H. C. Stress hyperglycemia and prognosis of stroke in nondiabetic and diabetic patients: a systematic overview. Stroke. 32 (10), 2426-2432 (2001).
  7. Stead, L. G., et al. Hyperglycemia as an independent predictor of worse outcome in non-diabetic patients presenting with acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 10 (2), 181-186 (2009).
  8. Kagansky, N., Levy, S., Knobler, H. The role of hyperglycemia in acute stroke. Arch Neurol. 58 (8), 1209-1212 (2001).
  9. Gilmore, R. M., Stead, L. G. The role of hyperglycemia in acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 5 (2), 153-158 (2006).
  10. Desilles, J. P., et al. Diabetes mellitus, admission glucose, and outcomes after stroke thrombolysis: a registry and systematic review. Stroke. 44 (7), 1915-1923 (2013).
  11. Dorsemans, A. C., et al. Impaired constitutive and regenerative neurogenesis in adult hyperglycemic zebrafish. J Comp Neurol. , (2016).
  12. Schmidt, R., Strähle, U., Scholpp, S. Neurogenesis in zebrafish – from embryo to adult. Neural Dev. 8, 3 (2013).
  13. Kizil, C., Kaslin, J., Kroehne, V., Brand, M. Adult neurogenesis and brain regeneration in zebrafish. Dev Neurobiol. 72 (3), 429-461 (2012).
  14. Grandel, H., Brand, M. Comparative aspects of adult neural stem cell activity in vertebrates. Dev Genes Evol. 223 (1-2), 131-147 (2013).
  15. Lindsey, B. W., Tropepe, V. A comparative framework for understanding the biological principles of adult neurogenesis. Prog Neurobiol. 80 (6), 281-307 (2006).
  16. März, M., et al. Heterogeneity in progenitor cell subtypes in the ventricular zone of the zebrafish adult telencephalon. Glia. 58 (7), 870-888 (2010).
  17. Chapouton, P., Jagasia, R., Bally-Cuif, L. Adult neurogenesis in non-mammalian vertebrates. Bioessays. 29 (8), 745-757 (2007).
  18. Lindsey, B. W., Darabie, A., Tropepe, V. The cellular composition of neurogenic periventricular zones in the adult zebrafish forebrain. J Comp Neurol. 520 (10), 2275-2316 (2012).
  19. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. Zebrafish. , 2611-2619 (2012).
  20. Oka, T., et al. Diet-induced obesity in zebrafish shares common pathophysiological pathways with mammalian obesity. BMC Physiol. 10, 21 (2010).
  21. Capiotti, K. M., et al. Persistent impaired glucose metabolism in a zebrafish hyperglycemia model. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. 171, 58-65 (2014).
  22. Capiotti, K. M., et al. Hyperglycemia induces memory impairment linked to increased acetylcholinesterase activity in zebrafish (Danio rerio). Behav Brain Res. 274, 319-325 (2014).
  23. Schmidt, R., Beil, T., Strähle, U., Rastegar, S. Stab wound injury of the zebrafish adult telencephalon: a method to investigate vertebrate brain neurogenesis and regeneration. J Vis Exp. (90), e51753 (2014).
  24. Diotel, N., et al. Effects of estradiol in adult neurogenesis and brain repair in zebrafish. Horm Behav. 63 (2), 193-207 (2013).
  25. Rodriguez Viales, R., et al. The helix-loop-helix protein id1 controls stem cell proliferation during regenerative neurogenesis in the adult zebrafish telencephalon. Stem Cells. 33 (3), 892-903 (2015).
  26. Kaslin, J., Ganz, J., Brand, M. Proliferation, neurogenesis and regeneration in the non-mammalian vertebrate brain. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 363 (1489), 101-122 (2008).
  27. Kroehne, V., Freudenreich, D., Hans, S., Kaslin, J., Brand, M. Regeneration of the adult zebrafish brain from neurogenic radial glia-type progenitors. Development. 138 (22), 4831-4841 (2011).
  28. Alunni, A., Bally-Cuif, L. A comparative view of regenerative neurogenesis in vertebrates. Development. 143 (5), 741-753 (2016).
  29. März, M., Schmidt, R., Rastegar, S., Strähle, U. Regenerative response following stab injury in the adult zebrafish telencephalon. Dev Dyn. 240 (9), 2221-2231 (2011).
  30. Wullimann, M., Rupp, B., Reichert, H. . Neuroanatomy of the zebrafish brain: A topological atlas. , 1-144 (1996).
  31. Pellegrini, E., et al. Identification of aromatase-positive radial glial cells as progenitor cells in the ventricular layer of the forebrain in zebrafish. J Comp Neurol. 501 (1), 150-167 (2007).
  32. Zupanc, G. K., Hinsch, K., Gage, F. H. Proliferation, migration, neuronal differentiation, and long-term survival of new cells in the adult zebrafish brain. J Comp Neurol. 488 (3), 290-319 (2005).
  33. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. iConcept Press. , 2611-2619 (2013).
  34. Connaughton, V. P., Baker, C., Fonde, L., Gerardi, E., Slack, C. Alternate Immersion in an External Glucose Solution Differentially Affects Blood Sugar Values in Older Versus Younger Zebrafish Adults. Zebrafish. , (2016).
  35. Prasad, S., Sajja, R. K., Naik, P., Cucullo, L. Diabetes Mellitus and Blood-Brain Barrier Dysfunction: An Overview. J Pharmacovigil. 2 (2), 125 (2014).
check_url/it/55203?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dorsemans, A., Lefebvre d’Hellencourt, C., Ait-Arsa, I., Jestin, E., Meilhac, O., Diotel, N. Acute and Chronic Models of Hyperglycemia in Zebrafish: A Method to Assess the Impact of Hyperglycemia on Neurogenesis and the Biodistribution of Radiolabeled Molecules. J. Vis. Exp. (124), e55203, doi:10.3791/55203 (2017).

View Video