Vi har utviklet en modulær high-throughput screening system for å oppdage nye forbindelser mot Mycobacterium tuberculosis, rettet mot intracellulær og i-buljong voksende bakterier, så vel som cytotoksisitet mot pattedyrvertscellen.
Mycobacterium tuberculosis, the causative agent of tuberculosis (TB), is a leading cause of morbidity and mortality worldwide. With the increased spread of multi drug-resistant TB (MDR-TB), there is a real urgency to develop new therapeutic strategies against M. tuberculosis infections. Traditionally, compounds are evaluated based on their antibacterial activity under in vitro growth conditions in broth; however, results are often misleading for intracellular pathogens like M. tuberculosis since in-broth phenotypic screening conditions are significantly different from the actual disease conditions within the human body. Screening for inhibitors that work inside macrophages has been traditionally difficult due to the complexity, variability in infection, and slow replication rate of M. tuberculosis. In this study, we report a new approach to rapidly assess the effectiveness of compounds on the viability of M. tuberculosis in a macrophage infection model. Using a combination of a cytotoxicity assay and an in-broth M. tuberculosis viability assay, we were able to create a screening system that generates a comprehensive analysis of compounds of interest. This system is capable of producing quantitative data at a low cost that is within reach of most labs and yet is highly scalable to fit large industrial settings.
Mycobacterium tuberculosis, det forårsakende middel for tuberkulose (TB), er en ledende årsak til morbiditet og dødelighet over hele verden. Medikament-sensitive TB er en behandle sykdom som krever flere antibiotika for en periode på 6 måneder. Til tross for å være en mulig å behandle sykdom, ble TB dødelighet beregnet til å være 1,5 millioner i 2015 1. I de siste 10 år har det vært økende bekymring over forekomsten av legemiddelresistent M. tuberculosis. Multidroge-resistente TB (MDR-TB) er definert som TB som er resistent overfor minst Isoniazid (INH) og Rifampicin (RMP), og de fleste MDR-TB stammer er også motstandsdyktig til å velge andre linjer TB medisiner, og begrenser således behandlingsmuligheter . Virkningene av medikamentresistens skape en større utfordring for behandling av pasienter som er infisert med humant immunsviktvirus (HIV); 400.000 pasienter over hele verden døde av HIV-assosiert TB i 2015 en. Skuffende, USA Food and Drug Administrasjon har godkjent bare en ny TB legemiddel mot MDR-TB, bedaquiline, de siste 40 år 2. Fremskritt i å finne bedre og kortere TB terapi er et presserende behov for å ligge i forkant i kampen mot tuberkulose og MDR-TB.
Tradisjonelt er TB narkotika-skjermer utført under in vitro-vekstbetingelser i vekstmedium, hvorved forbindelser tilsettes til en voksende kultur og deres effektivitet i å utrydde mikroorganismer bestemmes ved å telle kolonidannende enheter (CFU) på fast medium. Som CFU teller er arbeidskrevende, tidkrevende og kostbart, har ulike indirekte metoder er utviklet for å lindre dette problemet. Slike metoder omfatter Alamar blå levedyktighet assay 3, bestemmelse av fluorescens 4 fra grønt fluorescerende protein (GFP) eller luminescens 5 fra luciferase-uttrykkende bakterier, og estimering av det totale adenosintrifosfat (ATP) 6, 7.
Typisk TB er karakterisert ved en M. tuberculosis-infeksjon i lungen, hvor bakteriene befinner seg og replikere inne i phagosomes av alveolære makrofager 8. Den enkle i-buljong fenotypisk skjerm kan passe ekstracellulære patogener; imidlertid, i de historisk perspektiv, treffer forbindelsene overfor M. tuberculosis er identifisert ved hjelp av denne metoden ofte mislykkes i å leve opp til forventningene på nedstrømsvaliderings trinn i infeksjonsmodeller. Vi foreslår at TB stoffet er best utføres i en intracellulær vertscelle infeksjonsmodell. Ikke desto mindre, intracellulære modeller har mange tekniske og biologiske barrierer for high-throughput screening (HTS) utvikling. Et stort hinder er kompleksiteten av infeksjonsprosessen, eksemplifisert ved en rekke trinn, og den omstendelige fjernelse av ekstracellulære bakterier ved i mellom vasking. Et annet stort hinder er den lange tids remelsene, som vekst deteksjon, normalt ved å CFU telling på dyrkingsplater, er en prosess som tar over 3 uker å fullføre. En løsning for å erstatte CFU tellingene har blitt gitt av automatisert fluorescens mikroskopi i kombinasjon med fluoriserende bakterier. Dette krever imidlertid løsningen en innledende utstyr investering som er utenfor rekkevidde for mange forskningslaboratorier. En enkel, billig, og sykdomsrelevant HTS-metoden i stor grad vil forbedre drug discovery prosessen.
I denne studien, rapporterer vi en ny, modul HTS system som tar sikte på å gi en hurtig, og skalerbar, men økonomisk, analyse egnet for å bestemme aktiviteten av forbindelsene overfor intracellulær M. tuberculosis. Dette system er sammensatt av tre moduler: (i) intracellulære, (ii) cytotoksisitet, og (III) i-buljong analyser. Den kombinerte endelige resultatet gir en fullstendig beskrivelse av de sammensatte egenskaper, sammen med ytterligere informasjon med hensyn til potensielle virkningsmåte. dette screening system har vært brukt i flere prosjekter med ulike sammensatte biblioteker som er rettet mot virkningsmåte, inkludert analyse av stoffet synergi 9, stimulering av autophagy 10, og inhibering av M. tuberculosis -secreted virulens faktor (upublisert). Forbindelser med ukjent virkningsmekanisme har også blitt studert 11. En modifisert versjon av denne metode ble også tatt i bruk av vår industripartner som den primære undersøkelsesmetode for å identifisere nye forbindelser for intracellulær M. tuberculosis 11.
Målet med denne studien var å skape en enkel og kostnadseffektiv HTS-metoden ved anvendelse av et humant intracellulær infeksjonsmodell for M. tuberculosis. Tuberkulose er en human sykdom karakterisert ved infeksjon av alveolære makrofager av M. tuberculosis. På grunn av biosikkerhet problemer, har forskning som involverer biologiske modeller av både bakterien og vertsceller blitt brukt i det siste. Imidlertid har det vist seg at bruken av surrogat bakterier og ikke-humane modeller er fattige pre…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by BC Lung Association and Mitacs.
RPMI 1640 | Sigma-Aldrich | R5886 | |
L-glutamine | Sigma-Aldrich | G7513 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Thermo Fisher Scientific | 12483020 | |
Middlebrook 7H9 | Becton, Dickinson and Company | 271210 | |
Tween80 | Fisher Scientific | T164 | |
Albumin, Bovine pH7 | Affymetrix | 10857 | |
Dextrose | Fisher Scientific | BP350 | |
Sodium Chloride | Fisher Scientific | BP358 | |
kanamycin sulfate | Fisher Scientific | BP906 | |
PMA | Sigma-Aldrich | P8139 | |
MTT | Sigma-Aldrich | M2128 | |
N,N-Dimethylformamide (DMF) | Fisher Scientific | D131 | |
1M Hydrocholoric acid (HCl) | Fisher Scientific | 351279212 | |
Acetic acid | Fisher Scientific | 351269 | |
SDS | Fisher Scientific | BP166 | |
Resazurin | Alfa Aesar | B21187 | |
DMSO | Sigma-Aldrich | D5879 | |
Glycerol | Fisher Scientific | BP229 | |
THP-1 | American Type Culture Collection | TIB-202 | |
M. tuberculosis H37Rv | |||
96-well flat bottom white plate | Corning | 3917 | |
95-well flat bottom clear plate | Corning | 3595 | |
Transparent plate sealer | Thermo Fisher Scientific | AB-0580 | |
Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | Biomate 3 | |
Microplate spectrophotometer | Biotek | Epoch | |
luminometer | Applied Biosystems | Tropix TR717 |