Summary

Modning af humane stamceller afledt Cardiomyocytter i Biowires Brug af elektrisk stimulering

Published: May 06, 2017
doi:

Summary

Cardiac biowire platform er en in vitro metode, der anvendes til modne humane embryonale og inducerede pluripotente stamcelleafledte cardiomyocytter (hPSC-CM) ved at kombinere dyrkning tredimensionale celle med elektrisk stimulering. Dette håndskrift præsenterer den detaljerede opsætning af hjerte- biowire platformen.

Abstract

Humane pluripotente stamcelleafledte cardiomyocytter (hPSC-CMS) har været en lovende cellekilde og har således tilskyndet undersøgelse af deres potentielle anvendelser i hjerte- forskning, herunder lægemiddelforskning, sygdom modellering, tissue engineering, og regenerativ medicin. Celler fremstillet ved eksisterende protokoller vise en række umodenhed sammenlignet med native voksne ventrikulære cardiomyocytter. Der er gjort mange forsøg på at modne hPSC-CMS med kun moderat modning nået hidtil. Derfor en manipuleret system, kaldet biowire, er blevet udtænkt ved at tilvejebringe både fysiske og elektriske signaler til at lede hPSC-CMS til en mere moden tilstand in vitro. Systemet anvender en mikrofremstillet platform til frø hPSC-CMS i collagen type I gel langs en stiv skabelon sutur til at samle sig på linie hjertevæv (biowire), som underkastes elektrisk felt-stimulering med en gradvis voksende frekvens. Sammenlignet med ikke-stimulerede kontroller,stimulerede biowired cardiomyocytter udviser en forøget grad af strukturel og elektrofysiologisk modning. Sådanne ændringer er afhængige af stimulation sats. Dette manuskript beskriver detaljeret design og skabelse af biowires.

Introduction

Celle-baseret behandling er en af ​​de mest lovende og undersøgte strategier for at opnå hjerteopheling / regeneration. Det er blevet hjulpet af hjertevæv teknik og samtidig tilførsel af biomaterialer 1, 2. De fleste tilgængelige celle kilder er blevet undersøgt i dyremodeller for deres potentielt gavnlige virkninger på beskadigede, syge eller ældre hjerter 3. Især har gjort en betydelig indsats for at anvende human pluripotente stamcelle (hPSC) afledt cardiomyocytter (hPSC-CM), et potentielt ubegrænset autolog celle kilde til hjertevæv engineering. hPSC-CM kan fremstilles under anvendelse af adskillige etablerede protokoller 4, 5, 6. Men de opnåede celler udviser føtale-lignende fænotyper, med en række af umodne egenskaber sammenlignet med voksne ventrikulære cardiomyocytter 7, </sup> 8 . Dette kan være en hindring for anvendelsen af ​​hPSC-CM'er som modeller af voksen hjertevæv i forskning i narkotikaforskning og i udviklingen af ​​voksne hjertesygdomsmodeller 9 .

For at overvinde denne begrænsning af fænotypisk umodenhed er nye tilgange blevet undersøgt aktivt for at fremme kardiomyocyt modning. Tidlige studier afslørede effektive formognningsegenskaber i neonatale rottekardiomyocytter via cyklisk mekanisk 10 eller elektrisk stimulering 11 . Gelkomprimering og cyklisk mekanisk stimulering viste sig også at forbedre nogle aspekter af hPSC-CM modning 12 , 13 med minimal forbedring af de elektrofysiologiske og calciumbehandlingsegenskaber. Derfor blev et platformsystem kaldet "biologisk ledning" (biowire) udformet ved at tilvejebringe både strukturelle signaler og elektrisk feltstimuleringn at øge modningen af hPSC-CM'erne 14. Dette system anvender en mikrofremstillet platform til at skabe linie hjertevæv, der er modtagelig for elektrisk felt-stimulering. Dette kan bruges til at forbedre den strukturelle og elektrofysiologiske løbetid på hPSC-CMS. Her beskriver vi detaljerne i at foretage sådanne biowires.

Protocol

1. Master Design og Fabrication BEMÆRK: Brug blød litografi til enhed fabrikation. Lav en to-lags SU-8 master for polydimethylsiloxan (PDMS) støbning. Design enheden ved hjælp af en design og udarbejdelse software (figur 1A, til venstre). Tegn hvert lag af master separat. Udskrive enheden design på to fotomasker på 20.000 dpi, svarende til de to lag af master 15. Indstille enhedens mønster som gennemsigtige og det omkringliggende omr…

Representative Results

Rationalet for anvendelse af en sutur i biowires er at tjene som en template til dannelse af 3D-konstruktioner, der justeres i én akse og efterligner formen af ​​kardiale fibre. Vi viser, at efter syv dages dyrkning i biowire, celler remodeled gelen omkring suturen (figur 3A). Cellerne samles langs aksen af suturen til dannelse justeret hjertevæv (figur 3). Efter 7 dages forkultur blev biowires underkastet 7 dage af elektrisk felt-stimulering og yd…

Discussion

Dette håndskrift beskriver opsætning og implementering af manipuleret platform, biowire, for at forbedre modning af hPSC-CMS. Indretningen kan fremstilles i standard microfabrication faciliteter, og biowires kan fremstilles med almindelige celledyrkningsteknikker og en elektrisk stimulator.

Så vidt vi ved, er der ingen rapporterede metode, der ligner biowires. Denne strategi afslører, at forbedrede modningsprodukter egenskaber var afhængige af den elektriske stimulation regime, som det …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af en bevilling-i-støtte fra Heart and Stroke Foundation of Canada (G-14 til 0.006.265), driftstilskud fra de canadiske Institutes of Health Research (137.352 og 143.066), og en JP Bickell fundament tilskud (1.013.821 ) til SSN.

Materials

L-Ascorbic acid Sigma A-4544 hPSC-CM culture media componet
AutoCAD Autodesk, Inc Software to design device
Carbon rods, Ø 3 mm Electrical stimulator chamber component
Collagen, type 1, rat tail BD Biosciences 354249 Collagen gel: 2.1 mg/ml of rat tail collagen type I in 24.9 mM glucose, 23.8 mM NaHCO3, 14.3 mM NaOH, 10 mM HEPES, in 1xM199 media with 10 % of growth factor-reduced Matrigel.
Collagenase type I  Sigma C0130 0.2% collagenase type I (w/v) and 20% FBS (v/v) in PBS with Ca2+ and Mg2+. Sterilize with 0.22 μm filter and make 12 ml aliquots. Store at -20 °C.
Deoxyribonuclease I (DNase I) EMD Millipore 260913-25MU Make 1 mg/ml DNase I stock solution in water. Filter sterile and store 0.5 ml aliquots at −20 °C
Drill & drill bits (Ø 1mm and 2 mm) Dremel Drill holes in polycarbonate frames
Electrical stimulator Grass s88x
Fetal bovine serum (FBS) WISENT Inc. 080-450
D-(+)-Glucose  Sigma G5767 Collagen gel component
L-Glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081
H2O MilliQ 18.2 MΩ·cm at 25 °C, ultrapure, to make all solutions
HEPES Sigma H4034 Collagen gel component
Hot plate Torrey Pines HS40
Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM) Thermo Fisher Scientific 12440053
Mask aligner EVG  EVG 620
Matrigel, growth factor reduced  Corning 354230 Collagen gel component
Medium 199 (M199) Thermo Fisher Scientific 11150059 Collagen gel component
Monothioglycerol (MTG) Sigma M-6145 hPSC-CM culture media componet
Orbital shaker VWR 89032-088
Penicillin/Streptomycin (P/S) Thermo Fisher Scientific 15070063
Phosphate-buffered saline (PBS) with Ca2+ and Mg2+  Thermo Fisher Scientific 14040133
Plate (6-well) Corning 353046
Plate (6-well), low attachment Corning 3471
Platinum wires, 0.2 mm Electrical stimulator chamber component
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184
Propylene glycol monomethyl ether acetate (PGMEA) Doe & Ingalls Inc. To develop the wafer
Pouch, peel-open Convertors 92308 For steam sterilization
Silicon wafer, 4-inch UniversityWafer Inc.
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma S5761 Collagen gel component
Sodium hydroxide Sigma S8045 Collagen gel component
Sprin coater Specialty Coating Systems G3P-8
StemPro-34 culture medium Thermo Fisher Scientific 10639011 hPSC-CM culture medium. To make 50 ml, add 1.3 ml supplement, 500 μl of 100× L-Glutamine, 250 μl of 30 mg/ml transferrin, 500 μl of 5 mg/ml ascorbic acid, 150 μl of 26 μl /2 ml monothioglycerol (MTG), and 500 μl (1 %) penicillin/streptomycin.
Stop media  Wash medium:FBS (1:1)
SU-8 50  MicroChem Corp. photoresist, master component
SU-8 2050  MicroChem Corp. photoresist, master component
Transferrin Roche 10-652-202 hPSC-CM culture media componet
Trypsin/EDTA, 0.25% Thermo Fisher Scientific 25200056 hPSC-CM culture media componet
Wash medium IMDM containing 1% Penicillin/Streptomycin

Riferimenti

  1. Sun, X., Nunes, S. S. Overview of hydrogel-based strategies for application in cardiac tissue regeneration. Biomed Mater. 10 (3), 034005 (2015).
  2. Sun, X., Altalhi, W., Nunes, S. S. Vascularization strategies of engineered tissues and their application in cardiac regeneration. Adv Drug Deliv Rev. 96, 183-194 (2016).
  3. Hastings, C. L., et al. Drug and cell delivery for cardiac regeneration. Advanced Drug Delivery Reviews. 84, 85-106 (2015).
  4. Yang, L., et al. Human cardiovascular progenitor cells develop from a KDR+ embryonic-stem-cell-derived population. Nature. 453 (7194), 524-528 (2008).
  5. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circ Res. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  6. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  7. Snir, M., et al. Assessment of the ultrastructural and proliferative properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (6), H2355-H2363 (2003).
  8. Dolnikov, K., et al. Functional properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes: intracellular Ca2+ handling and the role of sarcoplasmic reticulum in the contraction. Stem Cells. 24 (2), 236-245 (2006).
  9. Yang, X., Pabon, L., Murry, C. E. Engineering adolescence: maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circ Res. 114 (3), 511-523 (2014).
  10. Zimmermann, W. H., et al. Tissue engineering of a differentiated cardiac muscle construct. Circ Res. 90 (2), 223-230 (2002).
  11. Radisic, M., et al. Functional assembly of engineered myocardium by electrical stimulation of cardiac myocytes cultured on scaffolds. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (52), 18129-18134 (2004).
  12. Schaaf, S., et al. Human engineered heart tissue as a versatile tool in basic research and preclinical toxicology. PLoS One. 6 (10), e26397 (2011).
  13. Tulloch, N. L., et al. Growth of engineered human myocardium with mechanical loading and vascular coculture. Circ Res. 109 (1), 47-59 (2011).
  14. Nunes, S. S., et al. Biowire: a platform for maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Nat Methods. 10 (8), 781-787 (2013).
  15. Lake, M., et al. Microfluidic device design, fabrication, and testing protocols. Protocol Exchange. , (2015).
  16. Shiba, Y., Hauch, K. D., Laflamme, M. A. Cardiac applications for human pluripotent stem cells. Curr Pharm Des. 15 (24), 2791-2806 (2009).
  17. Yang, X., et al. Tri-iodo-l-thyronine promotes the maturation of human cardiomyocytes-derived from induced pluripotent stem cells. J Mol Cell Cardiol. 72, 296-304 (2014).
  18. Zhang, D., et al. Tissue-engineered cardiac patch for advanced functional maturation of human ESC-derived cardiomyocytes. Biomaterials. 34 (23), 5813-5820 (2013).
  19. Radisic, M., et al. Oxygen gradients correlate with cell density and cell viability in engineered cardiac tissue. Biotechnol Bioeng. 93 (2), 332-343 (2006).
  20. Reubinoff, B. E., Pera, M. F., Fong, C. Y., Trounson, A., Bongso, A. Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro. Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).
check_url/it/55373?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Sun, X., Nunes, S. S. Maturation of Human Stem Cell-derived Cardiomyocytes in Biowires Using Electrical Stimulation. J. Vis. Exp. (123), e55373, doi:10.3791/55373 (2017).

View Video