Hjärt biowire plattformen är en in vitro-metod som används för att mogna humana embryonala och inducerade pluripotenta stamceller härledda kardiomyocyter (hPSC-CM) genom att kombinera tredimensionella cellodlingar med elektrisk stimulering. Detta manuskript presenterar detaljerade installationen av hjärt biowire plattformen.
Humana pluripotenta stamceller härledda kardiomyocyter (hPSC-CMS) har varit ett lovande cellkälla och har därmed uppmuntrat undersökning av deras potentiella tillämpningar inom hjärt forskning, inklusive läkemedelsupptäckt, sjukdom modellering, vävnadsteknik, och regenerativ medicin. Emellertid celler som produceras av existerande protokoll visa ett intervall av omognad jämfört med nativa vuxen ventrikulära kardiomyocyter. Många ansträngningar har gjorts för att mogna hPSC-CMS med endast måttlig mognad uppnås hittills. Därför konstruerad systemet, kallat biowire, varit har utarbetat genom att tillhandahålla både fysiska och elektriska signaler till bly hPSC-CM till en mer mogen tillstånd in vitro. Systemet använder en mikrofabricerad plattform till utsäde hPSC-CMs i kollagen typ I gela längs en styv mall sutur för att montera in i linje hjärtvävnaden (biowire), som utsattes för elektriska fältstimulering med en progressivt ökande frekvens. Jämfört med icke stimulerade kontrollerstimulerade biowired kardiomyocyter uppvisar en ökad grad av strukturell och elektrofysiologiska mognad. Sådana förändringar är beroende av stimuleringsfrekvensen. Detta manuskript beskriver i detalj design och skapande av biowires.
Cellbaserad terapi är en av de mest lovande och undersökta strategier för att uppnå hjärt reparation / regeneration. Det har med hjälp av hjärtvävnadsteknik och co-leverans av biomaterial 1, 2. De flesta tillgängliga cellkällor har studerats i djurmodeller för deras potentiellt positiva effekter på skadade, sjuka eller äldre hjärtan 3. I synnerhet, har stora ansträngningar gjorts för att använda human pluripotent stamcell (hPSC) -härledda kardiomyocyter (hPSC-CM), en potentiellt obegränsad autolog cellkälla för hjärtvävnadsteknik. hPSC-CMs kan produceras med användning av flera fastställda protokoll 4, 5, 6. Emellertid, de erhållna cellerna uppvisar fetala liknande fenotyper, med en rad av omogna egenskaper jämfört med vuxna ventrikulära kardiomyocyter 7, </sup> 8. Detta kan vara ett hinder för tillämpningen av hPSC-CM som modeller för vuxna hjärtvävnad i läkemedelsforskning och utveckling av vuxna förebilder 9 hjärtsjukdom.
För att övervinna denna begränsning av fenotypisk omognad, har nya metoder aktivt undersökts för att främja cardiomyocyte mognad. Tidiga studier avslöjade effektiva pro-mognads egenskaper i neonatala råttkardiomyocyter via cyklisk mekanisk 10 eller elektrisk stimulering 11. Gel kompaktering och cyklisk mekanisk stimulering visade sig också förbättra vissa aspekter av hPSC-CM mognad 12, 13, med minimal ökning av hanterings de elektrofysiologiska och kalcium egenskaper. Därför var en plattform system som kallas "biologisk tråd" (biowire) devised genom att tillhandahålla både strukturella signaler och elektriska fältet stimuleringn för att förbättra mognaden av hPSC-CM 14. Detta system använder en mikro plattform för att skapa linje hjärtvävnad som är mottaglig för elektrisk fältstimulering. Detta kan användas för att förbättra den strukturella och elektrofysiologiska löptid hPSC-cm. Här beskriver vi detaljerna i att göra sådana biowires.
Detta manuskript beskriver installationen och genomförandet av den modifierade plattformen biowire att förbättra mognaden av hPSC-cm. Anordningen kan tillverkas i standardmikrotillverkningsmöjligheter och biowires kan produceras med vanliga cellodlingstekniker och en elektrisk stimulator.
Så vitt vi vet finns det ingen rapporterad metod som liknar biowires. Denna strategi visar att förbättrade mognads egenskaper var beroende av den elektriska stimuleringen regim, vilket framgår av de…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av ett bidrag-i-stöd från hjärta- och slaggrunden of Canada (G-14 till 0.006.265), driftsbidrag från den kanadensiska Institutes of Health Research (137.352 och 143.066), och en JP Bickell Foundation (1.013.821 ) till SSN.
L-Ascorbic acid | Sigma | A-4544 | hPSC-CM culture media componet |
AutoCAD | Autodesk, Inc | Software to design device | |
Carbon rods, Ø 3 mm | Electrical stimulator chamber component | ||
Collagen, type 1, rat tail | BD Biosciences | 354249 | Collagen gel: 2.1 mg/ml of rat tail collagen type I in 24.9 mM glucose, 23.8 mM NaHCO3, 14.3 mM NaOH, 10 mM HEPES, in 1xM199 media with 10 % of growth factor-reduced Matrigel. |
Collagenase type I | Sigma | C0130 | 0.2% collagenase type I (w/v) and 20% FBS (v/v) in PBS with Ca2+ and Mg2+. Sterilize with 0.22 μm filter and make 12 ml aliquots. Store at -20 °C. |
Deoxyribonuclease I (DNase I) | EMD Millipore | 260913-25MU | Make 1 mg/ml DNase I stock solution in water. Filter sterile and store 0.5 ml aliquots at −20 °C |
Drill & drill bits (Ø 1mm and 2 mm) | Dremel | Drill holes in polycarbonate frames | |
Electrical stimulator | Grass | s88x | |
Fetal bovine serum (FBS) | WISENT Inc. | 080-450 | |
D-(+)-Glucose | Sigma | G5767 | Collagen gel component |
L-Glutamine | Thermo Fisher Scientific | 25030081 | |
H2O | MilliQ | 18.2 MΩ·cm at 25 °C, ultrapure, to make all solutions | |
HEPES | Sigma | H4034 | Collagen gel component |
Hot plate | Torrey Pines | HS40 | |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM) | Thermo Fisher Scientific | 12440053 | |
Mask aligner | EVG | EVG 620 | |
Matrigel, growth factor reduced | Corning | 354230 | Collagen gel component |
Medium 199 (M199) | Thermo Fisher Scientific | 11150059 | Collagen gel component |
Monothioglycerol (MTG) | Sigma | M-6145 | hPSC-CM culture media componet |
Orbital shaker | VWR | 89032-088 | |
Penicillin/Streptomycin (P/S) | Thermo Fisher Scientific | 15070063 | |
Phosphate-buffered saline (PBS) with Ca2+ and Mg2+ | Thermo Fisher Scientific | 14040133 | |
Plate (6-well) | Corning | 353046 | |
Plate (6-well), low attachment | Corning | 3471 | |
Platinum wires, 0.2 mm | Electrical stimulator chamber component | ||
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dow Corning | Sylgard 184 | |
Propylene glycol monomethyl ether acetate (PGMEA) | Doe & Ingalls Inc. | To develop the wafer | |
Pouch, peel-open | Convertors | 92308 | For steam sterilization |
Silicon wafer, 4-inch | UniversityWafer Inc. | ||
Sodium bicarbonate (NaHCO3) | Sigma | S5761 | Collagen gel component |
Sodium hydroxide | Sigma | S8045 | Collagen gel component |
Sprin coater | Specialty Coating Systems | G3P-8 | |
StemPro-34 culture medium | Thermo Fisher Scientific | 10639011 | hPSC-CM culture medium. To make 50 ml, add 1.3 ml supplement, 500 μl of 100× L-Glutamine, 250 μl of 30 mg/ml transferrin, 500 μl of 5 mg/ml ascorbic acid, 150 μl of 26 μl /2 ml monothioglycerol (MTG), and 500 μl (1 %) penicillin/streptomycin. |
Stop media | Wash medium:FBS (1:1) | ||
SU-8 50 | MicroChem Corp. | photoresist, master component | |
SU-8 2050 | MicroChem Corp. | photoresist, master component | |
Transferrin | Roche | 10-652-202 | hPSC-CM culture media componet |
Trypsin/EDTA, 0.25% | Thermo Fisher Scientific | 25200056 | hPSC-CM culture media componet |
Wash medium | IMDM containing 1% Penicillin/Streptomycin |