Summary

Mognad av mänskliga stamceller som härrör Cardiomyocytes i Biowires Använda elektrisk stimulering

Published: May 06, 2017
doi:

Summary

Hjärt biowire plattformen är en in vitro-metod som används för att mogna humana embryonala och inducerade pluripotenta stamceller härledda kardiomyocyter (hPSC-CM) genom att kombinera tredimensionella cellodlingar med elektrisk stimulering. Detta manuskript presenterar detaljerade installationen av hjärt biowire plattformen.

Abstract

Humana pluripotenta stamceller härledda kardiomyocyter (hPSC-CMS) har varit ett lovande cellkälla och har därmed uppmuntrat undersökning av deras potentiella tillämpningar inom hjärt forskning, inklusive läkemedelsupptäckt, sjukdom modellering, vävnadsteknik, och regenerativ medicin. Emellertid celler som produceras av existerande protokoll visa ett intervall av omognad jämfört med nativa vuxen ventrikulära kardiomyocyter. Många ansträngningar har gjorts för att mogna hPSC-CMS med endast måttlig mognad uppnås hittills. Därför konstruerad systemet, kallat biowire, varit har utarbetat genom att tillhandahålla både fysiska och elektriska signaler till bly hPSC-CM till en mer mogen tillstånd in vitro. Systemet använder en mikrofabricerad plattform till utsäde hPSC-CMs i kollagen typ I gela längs en styv mall sutur för att montera in i linje hjärtvävnaden (biowire), som utsattes för elektriska fältstimulering med en progressivt ökande frekvens. Jämfört med icke stimulerade kontrollerstimulerade biowired kardiomyocyter uppvisar en ökad grad av strukturell och elektrofysiologiska mognad. Sådana förändringar är beroende av stimuleringsfrekvensen. Detta manuskript beskriver i detalj design och skapande av biowires.

Introduction

Cellbaserad terapi är en av de mest lovande och undersökta strategier för att uppnå hjärt reparation / regeneration. Det har med hjälp av hjärtvävnadsteknik och co-leverans av biomaterial 1, 2. De flesta tillgängliga cellkällor har studerats i djurmodeller för deras potentiellt positiva effekter på skadade, sjuka eller äldre hjärtan 3. I synnerhet, har stora ansträngningar gjorts för att använda human pluripotent stamcell (hPSC) -härledda kardiomyocyter (hPSC-CM), en potentiellt obegränsad autolog cellkälla för hjärtvävnadsteknik. hPSC-CMs kan produceras med användning av flera fastställda protokoll 4, 5, 6. Emellertid, de erhållna cellerna uppvisar fetala liknande fenotyper, med en rad av omogna egenskaper jämfört med vuxna ventrikulära kardiomyocyter 7, </sup> 8. Detta kan vara ett hinder för tillämpningen av hPSC-CM som modeller för vuxna hjärtvävnad i läkemedelsforskning och utveckling av vuxna förebilder 9 hjärtsjukdom.

För att övervinna denna begränsning av fenotypisk omognad, har nya metoder aktivt undersökts för att främja cardiomyocyte mognad. Tidiga studier avslöjade effektiva pro-mognads egenskaper i neonatala råttkardiomyocyter via cyklisk mekanisk 10 eller elektrisk stimulering 11. Gel kompaktering och cyklisk mekanisk stimulering visade sig också förbättra vissa aspekter av hPSC-CM mognad 12, 13, med minimal ökning av hanterings de elektrofysiologiska och kalcium egenskaper. Därför var en plattform system som kallas "biologisk tråd" (biowire) devised genom att tillhandahålla både strukturella signaler och elektriska fältet stimuleringn för att förbättra mognaden av hPSC-CM 14. Detta system använder en mikro plattform för att skapa linje hjärtvävnad som är mottaglig för elektrisk fältstimulering. Detta kan användas för att förbättra den strukturella och elektrofysiologiska löptid hPSC-cm. Här beskriver vi detaljerna i att göra sådana biowires.

Protocol

1. Master Design och Fabrication OBS! Använd mjuk litografi för tillverkning av apparater. Gör en tvåskikt SU-8-mast för polydimetylsiloxan (PDMS) gjutning. Konstruera enheten med hjälp av en design- och ritningsprogramvara ( Figur 1A , vänster). Rita varje lager av masten separat. Skriv ut designen på två fotomasker vid 20 000 dpi, vilket motsvarar de två skikten i master 15 . Ställ in enhetsmönstret så transparent och omgivni…

Representative Results

Det rationella för användningen av en sutur i biowires är att fungera som ett templat för bildande av 3D-konstruktioner som är inriktade i en axel och efterliknar formen av hjärtfibrer. Vi visar att efter sju dagars odling i biowire, celler ombyggda gelén runt suturen (Figur 3A). Cellerna monterade längs axeln av suturen för att bilda linje hjärtvävnad (Figur 3). Efter 7 dagar av förodling ades biowires kastades 7 dagar av elektrisk fältstim…

Discussion

Detta manuskript beskriver installationen och genomförandet av den modifierade plattformen biowire att förbättra mognaden av hPSC-cm. Anordningen kan tillverkas i standardmikrotillverkningsmöjligheter och biowires kan produceras med vanliga cellodlingstekniker och en elektrisk stimulator.

Så vitt vi vet finns det ingen rapporterad metod som liknar biowires. Denna strategi visar att förbättrade mognads egenskaper var beroende av den elektriska stimuleringen regim, vilket framgår av de…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett bidrag-i-stöd från hjärta- och slaggrunden of Canada (G-14 till 0.006.265), driftsbidrag från den kanadensiska Institutes of Health Research (137.352 och 143.066), och en JP Bickell Foundation (1.013.821 ) till SSN.

Materials

L-Ascorbic acid Sigma A-4544 hPSC-CM culture media componet
AutoCAD Autodesk, Inc Software to design device
Carbon rods, Ø 3 mm Electrical stimulator chamber component
Collagen, type 1, rat tail BD Biosciences 354249 Collagen gel: 2.1 mg/ml of rat tail collagen type I in 24.9 mM glucose, 23.8 mM NaHCO3, 14.3 mM NaOH, 10 mM HEPES, in 1xM199 media with 10 % of growth factor-reduced Matrigel.
Collagenase type I  Sigma C0130 0.2% collagenase type I (w/v) and 20% FBS (v/v) in PBS with Ca2+ and Mg2+. Sterilize with 0.22 μm filter and make 12 ml aliquots. Store at -20 °C.
Deoxyribonuclease I (DNase I) EMD Millipore 260913-25MU Make 1 mg/ml DNase I stock solution in water. Filter sterile and store 0.5 ml aliquots at −20 °C
Drill & drill bits (Ø 1mm and 2 mm) Dremel Drill holes in polycarbonate frames
Electrical stimulator Grass s88x
Fetal bovine serum (FBS) WISENT Inc. 080-450
D-(+)-Glucose  Sigma G5767 Collagen gel component
L-Glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081
H2O MilliQ 18.2 MΩ·cm at 25 °C, ultrapure, to make all solutions
HEPES Sigma H4034 Collagen gel component
Hot plate Torrey Pines HS40
Iscove's Modified Dulbecco's Medium(IMDM) Thermo Fisher Scientific 12440053
Mask aligner EVG  EVG 620
Matrigel, growth factor reduced  Corning 354230 Collagen gel component
Medium 199 (M199) Thermo Fisher Scientific 11150059 Collagen gel component
Monothioglycerol (MTG) Sigma M-6145 hPSC-CM culture media componet
Orbital shaker VWR 89032-088
Penicillin/Streptomycin (P/S) Thermo Fisher Scientific 15070063
Phosphate-buffered saline (PBS) with Ca2+ and Mg2+  Thermo Fisher Scientific 14040133
Plate (6-well) Corning 353046
Plate (6-well), low attachment Corning 3471
Platinum wires, 0.2 mm Electrical stimulator chamber component
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184
Propylene glycol monomethyl ether acetate (PGMEA) Doe & Ingalls Inc. To develop the wafer
Pouch, peel-open Convertors 92308 For steam sterilization
Silicon wafer, 4-inch UniversityWafer Inc.
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma S5761 Collagen gel component
Sodium hydroxide Sigma S8045 Collagen gel component
Sprin coater Specialty Coating Systems G3P-8
StemPro-34 culture medium Thermo Fisher Scientific 10639011 hPSC-CM culture medium. To make 50 ml, add 1.3 ml supplement, 500 μl of 100× L-Glutamine, 250 μl of 30 mg/ml transferrin, 500 μl of 5 mg/ml ascorbic acid, 150 μl of 26 μl /2 ml monothioglycerol (MTG), and 500 μl (1 %) penicillin/streptomycin.
Stop media  Wash medium:FBS (1:1)
SU-8 50  MicroChem Corp. photoresist, master component
SU-8 2050  MicroChem Corp. photoresist, master component
Transferrin Roche 10-652-202 hPSC-CM culture media componet
Trypsin/EDTA, 0.25% Thermo Fisher Scientific 25200056 hPSC-CM culture media componet
Wash medium IMDM containing 1% Penicillin/Streptomycin

Riferimenti

  1. Sun, X., Nunes, S. S. Overview of hydrogel-based strategies for application in cardiac tissue regeneration. Biomed Mater. 10 (3), 034005 (2015).
  2. Sun, X., Altalhi, W., Nunes, S. S. Vascularization strategies of engineered tissues and their application in cardiac regeneration. Adv Drug Deliv Rev. 96, 183-194 (2016).
  3. Hastings, C. L., et al. Drug and cell delivery for cardiac regeneration. Advanced Drug Delivery Reviews. 84, 85-106 (2015).
  4. Yang, L., et al. Human cardiovascular progenitor cells develop from a KDR+ embryonic-stem-cell-derived population. Nature. 453 (7194), 524-528 (2008).
  5. Zhang, J., et al. Extracellular matrix promotes highly efficient cardiac differentiation of human pluripotent stem cells: the matrix sandwich method. Circ Res. 111 (9), 1125-1136 (2012).
  6. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  7. Snir, M., et al. Assessment of the ultrastructural and proliferative properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 285 (6), H2355-H2363 (2003).
  8. Dolnikov, K., et al. Functional properties of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes: intracellular Ca2+ handling and the role of sarcoplasmic reticulum in the contraction. Stem Cells. 24 (2), 236-245 (2006).
  9. Yang, X., Pabon, L., Murry, C. E. Engineering adolescence: maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Circ Res. 114 (3), 511-523 (2014).
  10. Zimmermann, W. H., et al. Tissue engineering of a differentiated cardiac muscle construct. Circ Res. 90 (2), 223-230 (2002).
  11. Radisic, M., et al. Functional assembly of engineered myocardium by electrical stimulation of cardiac myocytes cultured on scaffolds. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (52), 18129-18134 (2004).
  12. Schaaf, S., et al. Human engineered heart tissue as a versatile tool in basic research and preclinical toxicology. PLoS One. 6 (10), e26397 (2011).
  13. Tulloch, N. L., et al. Growth of engineered human myocardium with mechanical loading and vascular coculture. Circ Res. 109 (1), 47-59 (2011).
  14. Nunes, S. S., et al. Biowire: a platform for maturation of human pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Nat Methods. 10 (8), 781-787 (2013).
  15. Lake, M., et al. Microfluidic device design, fabrication, and testing protocols. Protocol Exchange. , (2015).
  16. Shiba, Y., Hauch, K. D., Laflamme, M. A. Cardiac applications for human pluripotent stem cells. Curr Pharm Des. 15 (24), 2791-2806 (2009).
  17. Yang, X., et al. Tri-iodo-l-thyronine promotes the maturation of human cardiomyocytes-derived from induced pluripotent stem cells. J Mol Cell Cardiol. 72, 296-304 (2014).
  18. Zhang, D., et al. Tissue-engineered cardiac patch for advanced functional maturation of human ESC-derived cardiomyocytes. Biomaterials. 34 (23), 5813-5820 (2013).
  19. Radisic, M., et al. Oxygen gradients correlate with cell density and cell viability in engineered cardiac tissue. Biotechnol Bioeng. 93 (2), 332-343 (2006).
  20. Reubinoff, B. E., Pera, M. F., Fong, C. Y., Trounson, A., Bongso, A. Embryonic stem cell lines from human blastocysts: somatic differentiation in vitro. Nat Biotechnol. 18 (4), 399-404 (2000).

Play Video

Citazione di questo articolo
Sun, X., Nunes, S. S. Maturation of Human Stem Cell-derived Cardiomyocytes in Biowires Using Electrical Stimulation. J. Vis. Exp. (123), e55373, doi:10.3791/55373 (2017).

View Video