Summary

इलेक्ट्रोफिजियोलॉजी और कैल्शियम इमेजिंग के लिए तीव्र Neuronal ऊतक लंबे समय तक ऊष्मायन

Published: February 15, 2017
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Summary

एक बार शरीर से हटा दिया, न्यूरोनल ऊतक बहुत पर्यावरण की स्थिति से प्रभावित होता है, के बाद 6 ऊतक के अंतिम गिरावट के लिए अग्रणी – 8 h। एक अनूठा ऊष्मायन विधि है, जो बारीकी से नजर रखता है और ऊतक के बाह्य वातावरण को नियंत्रित करता है का उपयोग करना, ऊतक व्यवहार्यता काफी> 24 घंटे के लिए बढ़ाया जा सकता है।

Abstract

8 घंटे विच्छेदन के बाद – एक्यूट न्यूरोनल ऊतक की तैयारी, मस्तिष्क के स्लाइस और रेटिना wholemount, आमतौर पर केवल 6 बनाए रखा जा सकता है। इस प्रयोगात्मक समय सीमा है, और जानवरों है कि अध्ययन के अनुसार उपयोग किया जाता है की संख्या बढ़ जाती है। इस सीमा विशेष रूप से ऐसे कैल्शियम इमेजिंग कि स्नान लागू रंगों के साथ लंबे समय तक पूर्व ऊष्मायन की आवश्यकता के रूप में प्रभाव डालता प्रोटोकॉल। 3 के भीतर घातीय बैक्टीरिया विकास – टुकड़ा करने की क्रिया के बाद 4 घंटे कसकर ऊतक स्वास्थ्य में कमी के साथ जोड़ा जाता है। इस अध्ययन में तीव्र तैयारी में बैक्टीरिया के प्रसार को सीमित समय की लंबी अवधि (> 24 ज) एंटीबायोटिक दवाओं, बाँझ प्रक्रियाओं, या टिशू कल्चर मीडिया वृद्धि कारक युक्त बिना जरूरत के लिए के लिए व्यवहार्य न्यूरोनल ऊतक बनाए रखने के लिए के लिए एक विधि का वर्णन है। पराबैंगनी विकिरण के माध्यम से बाह्य तरल पदार्थ साइकिल और 15 पर एक कस्टम होल्डिंग कक्ष में ऊतक रखने से – 16 डिग्री सेल्सियस, ऊतक electrophysiological गुण, या कैल्शियम si में कोई अंतर नहीं चलता> 24 घंटे postdissection पर intracellular कैल्शियम रंगों के माध्यम से gnaling। इन तरीकों से न केवल तीव्र न्यूरोनल ऊतक का उपयोग करने वालों के लिए प्रयोगात्मक समय का विस्तार होगा, लेकिन प्रयोगात्मक लक्ष्यों को पूरा करने के लिए आवश्यक जानवरों की संख्या कम हो जाएगा, और तीव्र न्यूरोनल ऊतक ऊष्मायन के लिए एक स्वर्ण मानक की स्थापना की जाएगी।

Introduction

इलेक्ट्रोफिजियोलॉजी और कार्यात्मक इमेजिंग (कैल्शियम, वोल्टेज संवेदनशील ध्वज) तंत्रिका विज्ञान में सबसे अधिक इस्तेमाल किया प्रयोगात्मक तकनीक से दो हैं। मस्तिष्क टुकड़ा तैयारियाँ और रेटिना wholemount, जो यहाँ की जांच की जाएगी, anesthetics या मांसपेशियों को ढीला से संदूषण के बिना electrophysiological गुण और synaptic कनेक्टिविटी की जांच करने का एक साधन प्रदान करते हैं। मस्तिष्क के स्लाइस और रेटिना wholemount उनकी संरचनात्मक अखंडता को बनाए रखने, संस्कृतियों या सेल homogenates के विपरीत, विशिष्ट सर्किट और मस्तिष्क नेटवर्क 1 के अध्ययन की अनुमति। पृथक ऊतक से रिकॉर्डिंग दिल की धड़कन और श्वसन के साथ जुड़े आंदोलनों के रूप में विवो रिकॉर्डिंग से अधिक लाभ का सफाया कर रहे हैं। इसके अलावा, प्रत्यक्ष दृश्य कोशिकाओं के विशिष्ट वर्गों को निशाना बनाया जा सकता है, और औषधीय उपकरण 2, 3 के स्थानीय आवेदन की अनुमति देता है।

पैच दबाना रिकॉर्डिंग और कैल्कIUM डाई लोड हो रहा है रेटिना wholemount में इनर के अस्तित्व झिल्ली (ILM) है, जो रेटिना नाड़ीग्रन्थि सेल (RGC) परत को शामिल किया गया है और कोशिकाओं के लिए सीधी पहुँच रोकता सीमित द्वारा जटिल है। सामान्यतया, यह झिल्ली एक गिलास पिपेट के साथ दूर scraped है एक एकल कोशिका पर एक पैच पिपेट और एक gigaohm मुहर के गठन के प्रत्यक्ष आवेदन की अनुमति है। इसके अलावा, स्नान लागू कैल्शियम रंगों इल्म पार नहीं करते हैं और या तो यह झिल्ली के नीचे 4 इंजेक्शन होना चाहिए, प्रतिगमनपूर्वक ऑप्टिक तंत्रिका 5 पर निम्न इंजेक्शन ले जाया या ऊतक 6 के माध्यम से electroporated। इसके अलावा, जब रेटिनाइटिस पिगमेंटोसा की एक कृंतक मॉडल का उपयोग, आरडी / आरडी माउस, इल्म मोटा और अधिक अभेद्य है। यहाँ, हम, enzymatic पाचन 7 के साथ इल्म निकालने के लिए एक तकनीक का उपयोग दोनों सर्वव्यापी कैल्शियम डाई लोड हो रहा है, और पैच दबाना recordi के लिए रेटिना नाड़ीग्रन्थि कोशिकाओं के लिए सीधी पहुँच अनुमति देने के लिएNGS 8।

या तो मस्तिष्क स्लाइस या रेटिना wholemount से सफल रिकॉर्डिंग विच्छेदन और व्यवहार्य न्यूरोनल ऊतक के ऊष्मायन पर निर्भर करते हैं। आमतौर पर, ऊतक प्रयोग की सुबह निकाले और कृत्रिम मस्तिष्कमेरु द्रव (ACSF) में incubated जब तक यह रिकॉर्डिंग के लिए प्रयोग किया जाता है। आमतौर पर, ऊतक 6 के लिए व्यवहार्य रहता है – 8 घंटे, इस समय खिड़की निम्नलिखित महत्वपूर्ण गिरावट के साथ। हालांकि, दोनों के मस्तिष्क के स्लाइस और wholemount दृष्टिपटल की तैयारी आम तौर पर की तुलना में यह कम समय अवधि के भीतर से दर्ज किया जा सकता है और अधिक ऊतक का उत्पादन। नतीजतन, ऊतक अक्सर दिन के अंत में खारिज कर दिया है और विच्छेदन बाद के दिनों को फिर से पूरा हो गया है। इसका मतलब यह है एक और जानवर का उपयोग किया और ~ 2 सेटअप और विच्छेदन / धुंधला दोहराया की ज रहा है। निम्नलिखित प्रोटोकॉल अधिक से अधिक 24 घंटे के लिए न्यूरोनल ऊतक के जीवन का विस्तार, कम जानवरों के अर्थ में उपयोग किया जाता है के लिए एक विधि का वर्णन है, और अधिक प्रयोगात्मक समय उपलब्ध है। ऊतक व्यवहार्यता wके रूप में electrophysiological गुण और कैल्शियम की गतिशीलता की रिकॉर्डिंग के माध्यम से मूल्यांकन, और ये गुण <4 h और> 24 घंटे postdissection के बीच पृथक किया गया।

इन परिणामों से संकेत मिलता है कि न केवल एकल कोशिका गुण लंबे समय तक ऊष्मायन के बाद बरकरार है और कार्य कर रहे हैं, लेकिन नेटवर्क गतिविधि के रूप में कैल्शियम इमेजिंग और electrophysiological रिकॉर्डिंग के द्वारा मूल्यांकन, अपरिवर्तित> 24 घंटे postdissection है। इसके अलावा, हम बताते हैं कि कैल्शियम रंगों किसी भी हानिकारक प्रभाव के कारण के बिना लंबी अवधि के लिए कोशिकाओं में रह सकते हैं। इस प्रोटोकॉल के आवेदन को दर्शाता है कि तीव्र न्यूरोनल ऊतकों में न्यूरॉन्स की कार्यात्मक गतिविधि, एक बार बाहरी वातावरण अत्यधिक विनियमित है लंबी अवधि के लिए बनाए रखा जा सकता है। इसके अलावा, के रूप में ऊतक व्यवहार्यता अलग ऊष्मायन प्रोटोकॉल के कारण प्रयोगशालाओं के बीच बहुत भिन्न होता है, इस पद्धति है कि तीव्र Neu के स्वास्थ्य में परिवर्तनशीलता को कम करने के लिए लागू किया जाना चाहिए आदर्श मानकों के लिए एक स्वर्ण मानक स्थापित करता हैRonal ऊतक।

Protocol

नीचे प्रोटोकॉल C57BL / 6 और C3H / वह (retinally पतित) माउस न्यूरोनल ऊतक की तैयारी का वर्णन है, लेकिन इसी तरह की तकनीक अन्य प्रजातियों के लिए लागू किया जा सकता है। सभी जानवरों को स्वस्थ और तापमान की मानक स्थितियों, आर्द्रता, 12 घं?…

Representative Results

ऊष्मायन के दौरान बैक्टीरियल लोड और aCSF के तापमान की तंग विनियमन न्यूरोनल ऊतक व्यवहार्यता बनाए रखने के लिए आवश्यक है। 16 डिग्री सेल्सियस (चित्रा 1) – यह UVC प्रकाश के साथ विकिरण और 15 पर aCSF का त?…

Discussion

यह लेख एक ऊष्मायन विधि का वर्णन इमेजिंग और electrophysiological प्रयोगों के लिए तीव्र न्यूरोनल ऊतक की व्यवहार्यता का विस्तार करने की है, जिससे पशु संख्या प्रयोगात्मक लक्ष्यों को पूरा करने की जरूरत को कम करने। दो म?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Colin Symons and James Wright for technical assistance. This work was supported by seed funding grant (WSU) to Y.B. and the innovation office at Western Sydney University. M.C. is supported by ARC fellowship (DECRA).

Materials

Sodium Chloride Sigma Aldrich VETEC V800372
Potassium chloride Sigma Aldrich P9333
N-Methyl-D-glucamine Sigma Aldrich M2004 
D-glucose Sigma Aldrich G5767
Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S6014
Sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich S2554
Magnesium chloride Sigma Aldrich M9272 
Calcium chloride  Sigma Aldrich 223506
Papain Dissociation System Worthington  LK003150
Dimethyl sulfoxide anhydrous Sigma Aldrich 276855
Pluronic F-127 Low UV absorbance* Life technologies P-6867 20% solution in DMSO 
Fura-2 AM   Anaspec 84017
Fluo-4 AM   Life Technologies F23917
Fluo-8 AM Abcam Ab142773
Vibrating blade microtome  Leica Biosystem VT1200 S Equiped with Leica’s Vibrocheck™ measurement device 
Antivibration table Kinetic Systems Vibraplane  Vibraplane 9100/9200 
Fixed Stage Upright Microscope Olympus BX51WI 
Microscope Objective Olympus XLUMPlanFLN 20x/1.00w 20X 
Microscope Objective Olympus LUMPlanFLN 60x/1.00w 60X
CCD Camera Andor Ixon +
High speed wavelength switcher Sutter instrument Lambda DG-4 
Patch clamp amplifier Molecular Devices MultiClamp 700B
Data acquisition system Molecular Devices Digidata 1440A Axon Digidata® System
Borosilicate glass capillaries Sutter Instrument Co BF150-86-10
Microelectrode puller Sutter Instrument Co P-97 Flaming/Brown type micropipette puller
Recording/perfusion chamber Warner Instruments RC-40LP Low Profile Open Bath Chambers
Software Molecular Devices pClamp 10.2
Andor iQ Live Cell Imaging Software Andor Andor iQ3
Braincubator Payo Scientific BR26021976 www.braincubator.com.au
Peltier-Thermoelectric Cold Plate Cooler TE Technology CP-121
Temperature Controller TE Technology TC-36-25 RS232

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Cameron, M. A., Kekesi, O., Morley, J. W., Bellot-Saez, A., Kueh, S., Breen, P., van Schaik, A., Tapson, J., Buskila, Y. Prolonged Incubation of Acute Neuronal Tissue for Electrophysiology and Calcium-imaging. J. Vis. Exp. (120), e55396, doi:10.3791/55396 (2017).

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