Summary

Time-løst elektrospray-ionisering Hydrogen-deuterium Veksling massespektrometri for å studere Protein struktur og dynamikk

Published: April 17, 2017
doi:

Summary

Konformasjonelle fleksibilitet spiller en kritisk rolle i proteinfunksjon. Heri, beskriver vi bruken av tidsoppløst elektrosprayionisering massespektrometri koplet til hydrogen-deuterium-utveksling for sondering de hurtige strukturelle endringer som driver funksjon i bestilt og uordnede proteiner.

Abstract

Egen uordnede proteiner (revet) har lenge vært en utfordring for å strukturelle biologer på grunn av deres mangel på stabile sekundære strukturelementer. Hydrogen-Deuterium Exchange (HDX) målt ved hurtige tidsskalaer er unikt tilpasset for å detektere strukturer og hydrogenbindings nettverk som er kort bygde, slik at for karakterisering av transiente konformerer i native ensembler. Kobling av HDX massespektrometri gir flere viktige fordeler, blant annet høy sensitivitet, lav prøven forbruk og ingen begrensning på proteinstørrelse. Denne teknikken har avansert kraftig i de siste tiårene, inkludert muligheten til å overvåke HDX merking ganger på millisekund tidsskalaen. I tillegg, ved å inkorporere den HDX arbeidsflyten på et mikrofluidplattformen rommer en sur protease-mikroreaktor, er vi i stand til å lokalisere dynamiske egenskaper ved peptidet nivå. I denne studien, tidsoppløst elektrospray-ionisering Massespektrometri (Tresi-MS) som er koplet til HDX was brukes til å gi et detaljert bilde av gjenværende struktur i tau-protein, så vel som konformasjonelle endringer indusert ved hyperfosforylering.

Introduction

I løpet av de siste tiårene, har betydelige fremskritt er gjort i utviklingen av analytiske teknikker utformet for å måle proteinstruktur og dynamikk 1, 2, 3, 4. Mens Røntgenkrystallografi forblir prinsippet verktøy for bestemmelse av proteinstruktur, blir høye konsentrasjoner av protein nødvendig, og omfattende optimalisering er nødvendig for å produsere diffraksjon kvalitet krystaller. Proteiner som er vanskelig å krystallisere, slik som membranbundne og egen uordnede proteiner er klassisk blitt studert ved hjelp av hydrogen-deuterium-utveksling (HDX) NMR 5. Men i de siste tiårene, kobling av elektrospray-ionisering massespektrometri (ESI-MS) for å HDX har raskt vunnet popularitet 6, 7.

Massespektrometri tilbyr en løsningtil mange av de begrensninger som følger av røntgenkrystallografi og NMR. Spesielt er svært følsom MS (nM til pM nødvendige konsentrasjoner), og det er praktisk talt ingen begrensning på proteinstørrelse. I tillegg er den høye driftssyklus av MS-analyse åpner for muligheten av å studere proteiner som de gjennomgår enzymatisk omsetning, misfolding, kompleksdannelse og andre biologisk relevante prosesser. Disse prosessene ofte forekommer på den andre millisekund til tidsskalaen og krever hurtig blanding av reagenser før analyse.

Utviklingen av Time-Løst elektrospray-ionisering (Tresi) av Wilson og Konermann i 2003 tillatt reaksjoner som skal overvåkes i pseudo-sanntid ved ESI-MS. Oppsettet deres innlemmet et kapillar-blander med en trinnløst innstillbar reaksjonskammer volum 8. Anordningen består av to konsentriske kapillærer, med den indre kapillær forseglet og et hakk skåret i dens side til å tillate blanding innenfor det smale inter-kapillærtey plass fra innsnittet til den ende av den indre kapillær (typisk 2 mm). Når det anvendes på HDX eksperimenter, vil det indre kapillarrør bærer for proteinet av interesse, bærer den ytre kapillarrør merkingen D2O løsning, som deretter underkastes blanding med proteinet før inntreden i regulerbar reaksjonskammeret slik at for HDX merking forut for direkte overføring til ESI kilde.

I korthet er avhengig HDX på ryggraden amid-hydrogener som gjennomgår utveksling med deuterium-atomer i oppløsning 9, 10. Utvekslingen er basekatalysert ved fysiologisk pH, sammen med syre-katalyse blir fremherskende ved pH under omkring 2,6. Kursen som er basert på fire hovedfaktorer: pH, temperatur, oppløsningsmiddel tilgjengelighet og intramolekylær hydrogenbinding. Som de tidligere to faktorer holdes konstant gjennom hele forsøket, frekvensen av utveksling, særlig ved peptidryggraden amid-posisjoner, er i første rekke dependent på proteinstruktur 11. Tett foldet regioner med omfattende og stabile hydrogenbindingsnettverk i a-helikser og p-ark vil ta opp deuterium ved vesentlig lavere priser i forhold til løkker og uordnede regioner (og noen ganger ikke i det hele tatt) 12. Dette gjør det mulig for global proteinanalyse, hvor forstyrrelsene i struktur (f.eks., Ved aggregering eller substratbindende) føre til ulik deuterium-opptaket (figur 1).

Den kinetiske kapillære blanderen kan bli inkorporert i et mikrofluidplattformen som inneholder et proteolytisk kammer for lokalisering av deuterium-opptak. Dette proteolytiske kammeret opprettholdes ved lav pH for effektivt å stanse utvekslingsreaksjon, og krever en immobilisert sur protease for å fordøye protein inn i lokaliserte peptider (figur 2). Overvåking ryggrad utveksling på millisekund til andre tidsskalaer er spesielt viktig forKarakteriseringen av konformasjonelle endringer innen vanskelige å karakterisere sløyfeområdene tilgjengelige, smeltet globuler, og egen uordnede proteiner (revet) 13, 14. Alternativt kan Tresi-HDX også benyttes for å karakterisere proteiner som for øyeblikket ikke har et løst atomstrukturen gjennom metoder for røntgen-krystallografi og NMR, ved hjelp av deuterium utveksling koblet til Corex algoritme (DX-Corex) tilnærming 15, 16. Denne detaljert protokoll skal gjelde Tresi-HDX å studere tau, en IDP, både i det opprinnelige form, så vel som det er sykdomsfremkallende hyperfosforylisert tilstand. Mens nativt tau er en av de mest studerte fordrevne, er lite kjent om dets amyloidogen motstykke 13.

Protocol

MERK: Ta kontakt med alle relevante sikkerhetsdatablad (MSDS) før bruk. Dampene som frembringes av laserfjerning av poly (metylmetakrylat) (PMMA) kan være giftig. Vær sikker på at laser gravør er koblet til en fungerende ventilasjonssystem. Bruk alle nødvendige sikkerhetsrutiner ved bygging av microfluidic enhet inkludert bruk av tekniske kontroller (avtrekkshette, beholder for spisse gjenstander) og personlig verneutstyr (vernebriller, ansiktsmaske, hansker, frakk, full lengde bukser, lukket-toe sko). Det er av s…

Representative Results

Fordøyelse profiler av nativt og fosfo-tau var like, noe som gir en sekvens dekning på 77,1 og 71,7% respektivt. Deuterium opptak verdier av hvert peptid ble bestemt ved å tilpasse de observerte isotopiske fordelinger med de teoretiske fordelingene som genereres ved hjelp av en egenutviklet FORTRAN programvare. De best tilpassede fordelinger er vist (figur 3a) sammen med de tilhørende deuterium-opptaksverdier. Opptakskinetiske profiler blir så generert, og ble godt …

Discussion

Mens strukturbiologiske metoder, slik som røntgen-krystallografi og NMR er fordelaktige fordi de gir ekstremt detaljerte strukturer av proteiner, disse bildene er ofte statisk. Karakteriseringen av forbigående art og svakt strukturerte domener fortsetter å være unnvikende når undersøkt ved hjelp av disse konvensjonelle metoder. Derfor, for å få dynamisk innsikt i denne typen systemer er det viktig å arbeide på raske tidsskalaer. Vi har med hell brukt Tresi-HDX-MS for å få detaljert innsikt i de konforme endr…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We gratefully acknowledge Dr. Markus Zweckstetter for providing the pdb coordinate file for the ‘native’ tau ensemble predicted from his NMR work, with contributed analysis tools provided by Dr. Adnan Sljoka. Funding for this work was provided by the Natural Science and Engineering Research Council of Canada (NSERC) ENGAGE Grant program.

Materials

Poly(methyl methacrylate) or PMMA Professional Plastics SACR.250CCP 8.9 cm x 3.8 cm x 0.6 cm
Fused Silica Glass Capillary Polymicro Technologies 106815-0018 ID: 75µm, OD: 150µm
Metal Capillaries McMaster-Carr 28 ga – 89875K97
30 ga  – 89875K99
Fluorinated Ethylene Propylene (FEP) Tubing IDEX 1477
1548
ID: 0.007”, OD: 1/16”
ID: 0.020”, OD: 1/16”
Standard Polymer Tubing Cutter IDEX A-327 for 1/16” and 1/8” OD tubing
Micro Static Mixing Tee IDEX M-540 for 1/16” OD tubing
or
Stainless Steel Tee, 0.25mm Bore Valco Instruments Co., Inc. (VICI) ZT1C for 1/16” OD tubing
PEEK Tee for 1/16” OD Tubing IDEX P-727
10-32 Female to Female Luer IDEX P-659
10-32 PEEK Double-Winged Nut IDEX F-300
Ferrule for 1/16” OD Tubing IDEX F-142
100 Series Rotary Tool Dremel F013010001
Cut-Off Discs Jobmate 1/64” thickness
Stereomaster Digital Zoom Microscope Fisher Scientific 12-563-411
Soldering Iron Mastercraft 58-6301-2
VersaLaser Universal Laser
Syringes Hamilton 81220 500µL capacity
Syringe Pumps Harvard Apparatus 70-4501
Name Company Catalog Number Comments
Reagents
NHS-Activated Agarose Fisher Scientific 26196
Pepsin from Porcine Gastric Mucosa Sigma-Aldrich P6887-250MG
Deuterium Oxide Sigma-Aldrich 151882-10X0.6ML
Acetic Acid Sigma-Aldrich 695092-100ML
HPLC Grade Water Fisher Scientific W5-4
Ammonium Acetate Sigma-Aldrich A7330-500G
Sodium Phosphate Fisher Scientific S369-500
Sodium Chloride Fisher Scientific S671-3
Name Company Catalog Number Comments
Software/Online Tools
CorelDraw X3 Corel
Molecular Weight Calculator Version 6.49 Open Source MS Tool
mMass Version 5.5.0 Open Source MS Tool
ExPASy FindPept Swiss Institute of Bioinformatics
SigmaPlot Systat Software Version 11.0
PyMOL Schrödinger Version 1.5.0.4
Name Company Catalog Number Comments
Instruments
QStar Elite Hybrid Q-TOF Mass Spectrometer AB SCIEX

Riferimenti

  1. Sapienza, P. J., Lee, A. L. Using NMR to study fast dynamics in proteins: methods and applications. Curr. Opin. Pharmacol. 10, 723-730 (2010).
  2. Neira, J. L. NMR as a tool to identify and characterize protein folding intermediates. Arch. Biochem. Biophys. 531, 90-99 (2013).
  3. Xu, A., Li, F., Robinson, H., Yeung, E. S. Can protein conformers be fractionated by crystallization?. Anal. Chem. 85, 6372-6377 (2013).
  4. Keedy, D. A., et al. Mapping the conformational landscape of a dynamic enzyme by multitemperature and XFEL crystallography. eLife. 4, e07574 (2015).
  5. Englander, S. W., Sosnick, T. R., Englander, J. J., Mayne, L. Mechanisms and uses of hydrogen exchange. Curr. Opin. Struct. Biol. 6, 18-23 (1996).
  6. Engen, J. R., Smith, D. L. Investigating protein structure and dynamics by hydrogen exchange MS. Anal. Chem. 73, 256A-265A (2001).
  7. Hoofnagle, A. N., Resing, K. A., Ahn, N. G. Protein analysis by hydrogen exchange mass spectrometry. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 32, 1-25 (2003).
  8. Wilson, D. J., Konermann, L. A Capillary Mixer with Adjustable Reaction Chamber Volume for Millisecond Time-Resolved Studies by Electrospray Mass Spectrometry. Anal. Chem. 75, 6408-6414 (2003).
  9. Wales, T. E., Engen, J. R. Hydrogen exchange mass spectrometry for the analysis of protein dynamics. Mass Spectrom. Rev. 25, 158-170 (2006).
  10. Konermann, L., Pan, J., Liu, Y. H. Hydrogen exchange mass spectrometry for studying protein structure and dynamics. Chem. Soc. Rev. 40, 1224-1234 (2011).
  11. Morgan, C. R., Engen, J. R. Investigating solution-phase protein structure and dynamics by hydrogen exchange mass spectrometry. Curr. Protoc. Protein Sci. Chapter 17, Unit 17.6.1-Unit 17.6.17 (2009).
  12. Katta, V., Chait, B. T. Conformational changes in proteins probed by hydrogen-exchange electrospray-ionization mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. RCM. 5, 214-217 (1991).
  13. Zhu, S., et al. Hyperphosphorylation of intrinsically disordered tau protein induces an amyloidogenic shift in its conformational ensemble. PloS One. 10, e0120416 (2015).
  14. Lento, C., Ferraro, M., Wilson, D., Audette, G. F. HDX-MS and deletion analysis of the type 4 secretion system protein TraF from the Escherichia coli F plasmid. FEBS Lett. 590, 376-386 (2016).
  15. Hilser, V. J., Freire, E. Structure-based calculation of the equilibrium folding pathway of proteins. Correlation with hydrogen exchange protection factors. J. Mol. Biol. 262, 756-772 (1996).
  16. Liu, T., et al. Quantitative Assessment of Protein Structural Models by Comparison of H/D Exchange MS Data with Exchange Behavior Accurately Predicted by DXCOREX. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 23, 43-56 (2012).
  17. Rob, T., Wilson, D. J. A versatile microfluidic chip for millisecond time-scale kinetic studies by electrospray mass spectrometry. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 20, 124-130 (2009).
  18. Liuni, P., Rob, T., Wilson, D. J. A microfluidic reactor for rapid, low-pressure proteolysis with on-chip electrospray ionization. Rapid Commun. Mass Spectrom. 24, 315-320 (2010).
  19. Barghorn, S., Biernat, J., Mandelkow, E. Purification of recombinant tau protein and preparation of Alzheimer-paired helical filaments in vitro. Methods Mol. Biol. Clifton NJ. 299, 35-51 (2005).
  20. Strohalm, M., Kavan, D., Novák, P., Volný, M., Havlícek, V. mMass 3: a cross-platform software environment for precise analysis of mass spectrometric data. Anal. Chem. 82, 4648-4651 (2010).
  21. Gattiker, A., Bienvenut, W. V., Bairoch, A., Gasteiger, E. FindPept, a tool to identify unmatched masses in peptide mass fingerprinting protein identification. PROTEOMICS. 2, 1435-1444 (2002).
  22. Rob, T., et al. Measuring Dynamics in Weakly Structured Regions of Proteins Using Microfluidics-Enabled Subsecond H/D Exchange Mass Spectrometry. Anal. Chem. 84, 3771-3779 (2012).
  23. Ferguson, P. L., et al. Hydrogen/Deuterium Scrambling during Quadrupole Time-of-Flight MS/MS Analysis of a Zinc-Binding Protein Domain. Anal. Chem. 79, 153-160 (2007).
  24. Bai, Y., Milne, J. S., Mayne, L., Englander, S. W. Primary structure effects on peptide group hydrogen exchange. Proteins. 17, 75-86 (1993).
  25. Buée, L., Bussière, T., Buée-Scherrer, V., Delacourte, A., Hof, P. R. Tau protein isoforms, phosphorylation and role in neurodegenerative disorders1. Brain Res. Rev. 33, 95-130 (2000).
  26. Zhang, H. M., et al. Enhanced Digestion Efficiency, Peptide Ionization Efficiency, and Sequence Resolution for Protein Hydrogen/Deuterium Exchange Monitored by FT-ICR Mass Spectrometry. Anal. Chem. 80 (23), 9034-9041 (2008).
  27. Deng, B., Lento, C., Wilson, D. J. Hydrogen deuterium exchange mass spectrometry in biopharmaceutical discovery and development – A review. Anal. Chim. Acta. , (2016).
  28. Pan, L. Y., Salas-Solano, O., Valliere-Douglass, J. F. Conformation and dynamics of interchain cysteine-linked antibody-drug conjugates as revealed by hydrogen/deuterium exchange mass spectrometry. Anal. Chem. 86, 2657-2664 (2014).
  29. Zhang, Q., et al. Epitope mapping of a 95 kDa antigen in complex with antibody by solution-phase amide backbone hydrogen/deuterium exchange monitored by Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry. Anal. Chem. 83, 7129-7136 (2011).
  30. Engen, J. R. Analysis of protein complexes with hydrogen exchange and mass spectrometry. The Analyst. 128, 623-628 (2003).
  31. Lu, J., et al. IL-1beta epitope mapping using site-directed mutagenesis and hydrogen-deuterium exchange mass spectrometry analysis. Biochemistry (Mosc). 44, 11106-11114 (2005).
  32. Konermann, L., Rodriguez, A. D., Sowole, M. A. Type 1 and Type 2 scenarios in hydrogen exchange mass spectrometry studies on protein-ligand complexes. The Analyst. 139, 6078-6087 (2014).
check_url/it/55464?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lento, C., Zhu, S., Brown, K. A., Knox, R., Liuni, P., Wilson, D. J. Time-resolved ElectroSpray Ionization Hydrogen-deuterium Exchange Mass Spectrometry for Studying Protein Structure and Dynamics. J. Vis. Exp. (122), e55464, doi:10.3791/55464 (2017).

View Video