Summary

In vivo avbildning av Transgena genuttryck i Individuell Retinal stamceller i chimär Zebrafish embryon att studera Cell Nonautonomous Influenser

Published: March 22, 2017
doi:

Summary

Live spårning av enskilda WT retinala stamceller i olika genetiska bakgrunder gör det möjligt att bedöma bidrag cells non-autonom signalerings under neurogenes. Här, var en kombination av gen knockdown, chimär generation via embryotransplantation och in vivo tidsförlopp konfokal avbildning utnyttjas för detta ändamål.

Abstract

De genetiska och tekniska styrka har gjort zebrafisk ryggradsdjur en viktig modellorganism i vilken konsekvenserna av genen manipulationer kan spåras in vivo under den snabba utvecklingstiden. Flera processer kan studeras inklusive celltillväxt, genuttryck, cellmigration och morfogenes. Viktigt kan generering av chimärer genom transplantationer lätt utföras, så att mosaik märkning och spårning av individuella celler under inverkan av den mottagande miljön. Till exempel, genom att kombinera funktionell gen manipulationer av värd embryot (t.ex., genom morfolino mikroinjektion) och levande avbildning, effekterna av yttre, cell nonautonomous signaler (tillhandahålls av genetiskt modifierade miljön) på enskilda transplanterade donatorceller kan bedömas. Här kan vi visa hur denna metod används för att jämföra uppkomsten av fluorescerande transgen expression som en proxy för tidpunkten för cell öde fastställbaraation i olika genetiska värdmiljöer.

I denna artikel ger vi protokollet för microinjecting zebrafisk embryon för att markera givarceller och orsakar gen knockdown i embryon värd, en beskrivning av transplantationsteknik används för att generera chimära embryon, och protokollet för att förbereda och köra in vivo tidsförlopp konfokala avbildning av multipla embryon. I synnerhet utför multiposition avbildning är avgörande när man jämför tidpunkten för händelser såsom starten av genuttryck. Detta kräver insamling av uppgifter från flera kontroll- och experiment embryon behandlas samtidigt. En sådan strategi kan lätt utvidgas för studier av yttre påverkan i något organ eller vävnad av val tillgängliga för bildåtergivning i realtid, under förutsättning att transplantationer kan riktas lätt enligt fastställda embryonala öde kartor.

Introduction

Förmågan att visualisera viktiga utvecklingsprocesser i ett in vivo ryggradsdjur har bidragit till att göra zebrafisk en viktig modell för att studera normala och sjukdomstillstånd (översikt i ett, två). I synnerhet är neurala näthinnan en tillgänglig del av det centrala nervsystemet. Näthinnan lämpar sig för enkelt utföra studier av neurogenes på grund av dess mycket organiserat, men ändå relativt enkel struktur, och dess starkt konserverade neuron typer över ryggradsdjur 3. Dynamisk av cellulära beteenden såsom proliferation, cellcykel exit, asymmetrisk celldelning, öde specifikation, differentiering och neurala kretsar bildning kan följas genom hela processen av retinogenesis, som är klar i den centrala näthinnan av zebrafisk med 3 d postfertilization ( dpf) 4, 5,ref "> 6, 7.

Dessutom kan de funktionella kraven för olika gener i var och en av de ovan nämnda stegen att samtidigt bedömas i zebrafisk näthinnan, vilket ger en fördel jämfört med andra ryggradsdjur modeller där fenotyper i samband med tillämpningen av genen knockout tekniker kan bara bedömas efter obduktion av fast vävnader. I synnerhet, användningen av transgena linjer i vilka vi kan visualisera och övervaka uttrycket av fluorescerande proteiner som reportertransgener i näthinnan, tillåter oss att erhålla tidsupplösning av genuttryck som ligger bakom uppkomsten av en speciell neuronal celltyp. På grund av den snabba utvecklingen av zebrafisk, kan dessa händelser visualiseras under hela utvecklingsperioden, varigenom djupare insikter i den tidsmässiga betydelsen av genuttryck i förhållande till neuronal cellidentiteten förvärv och cellbeteende.

Slutligen kan dessa metoder kombineras på ett effektivt sätt i zebrafisk med genereringen av chimären via transplantationer, vilket resulterar i en inblick i två viktiga aspekter av geners funktion. För det första att undersöka celler transplanterade från en donator embryo, i vilken en särskild gen slogs ned medan de utvecklas i en omärkt vildtyp miljö, tillåter oss att få relevant information om geners funktion i en cell-självständigt sätt. Detta leder till viktiga insikter om funktionen av retinala öde bestämningsfaktorer inom stamceller som normalt uttrycks i. Detta exemplifieras genom undersökning av utvecklings öde resultatet av stamceller som inte längre kan generera funktionellt protein från dessa gener 4, 6, 8, 9. Med hjälp av denna metod, har vi visat att många öde bestämningsfaktorer (t.ex. Vsx1, Atoh7, Ptf1a, Barhl2) agera cell-autonomously att köra specifika retinala neuronala öden; bristen på genexpression leder i första hand till ett öde omkopplare, så att cellerna med genen knockdown förbli livskraftig genom att anta en alternativ cellöde 4, 6, 7, 10. För det andra kan sådana chimära experiment kan användas för att bedöma hur vild typ stamceller beter sig när de utvecklar inom olika genetiska miljöer. Till exempel, genom att jämföra utvecklingen av WT-celler som vanligtvis uttrycker en gen av intresse (och reporter transgen) i en WT kontra manipulerad värdmiljön (t.ex. gen knockout / knockdown), de resulterande effekterna på genuttryck och cell öde kan bedömas . Bristen på vissa neuron typer i värdmiljön, till exempel, har visat sig påverka vildtyp gångarbeteende i en cell icke-självständigt sätt, för att pressa dem mot differentiera till det underrepresenterade or saknas neuron typerna 4, 7, 11, 12. Med tanke på att näthinnans nervceller föds i en konserverad histogenic order av sekventiellt tids uttrycket av specifika neuronala öde bestämnings gener (ödet genuttryck) (översikt i 13), använde vi dessa metoder för att visa hur tidpunkten för ödet genuttryck i vild typ stamceller påverkas när sådana stamceller utvecklas i näthinnan värd miljöer med inducerade avvikande cellulära kompositioner. Här, vi beskriva dessa metoder som bevis för hur kombinationen av relativt vanliga och mest använda tekniker gör det möjligt att undersöka tidpunkten för ödet genuttryck i utvecklingen av retinala stamceller 8, 9.

Detta protokoll beskriver en experimentell metod som kombinerar tidsförlopp avbildning med enkel perbildande transplantation i ex vivo utveckla zebrafisk embryo att följa individuella mosaically märkta celler under hela perioden av utvecklings retinogenesis. Genom att utföra funktionell gen manipulationer antingen i värd embryo, givare embryo, båda eller ingen, kan man bedöma cell autonomi av geners funktion. Detta tillvägagångssätt kan anpassas i stor utsträckning på liknande frågeställningar i något annat system för vilka de enskilda komponenterna som beskrivs här är lämpliga.

Protocol

Alla förfaranden genomfördes i enlighet med bestämmelserna i Australian National Health och Medical Research Council uppförandekod för skötsel och användning av djur och godkändes av institutionella etiska kommittéer. 1. Framställning av Zebrafish Vuxna fiskar parning Inrätta vuxna fiskar som par (eller två par) i lämplig storlek avelstankar kvällen före användning. För att hålla den kvinnliga separeras från den manliga, använda en avdelare f…

Representative Results

Detta arbete presenterar ett experimentellt protokoll för att bedöma förändringar i genuttryck timing när vildtyp retinala stamceller utvecklas inom en morphant värd embryo. De experimentella värd embryon är Ptf1a morphants, som saknar de mellanliggande födda horisontella och amakrina interneuronen av näthinnan 7, 26. Dessa har i jämförelse med kontroll värd embryon som injicerades med en standardkontroll morfolino. …

Discussion

Förstå vilken utsträckning angränsande celler påverkar tidpunkten för uttrycket av avgörande cell öde avgörande faktorer är avgörande när syftet är att på ett effektivt sätt instruera embryonala eller inducerade multi stamceller att differentiera till en specifik post-mitotiska celltyp eller mönstrad vävnad. Dessutom undersöker dessa molekylära händelser i utvecklings cellerna i levande djur dessutom ger relevant dynamiska (tid och rum) information om de särskilda cellulära sammanhang i samband med…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av en ARC DECRA till PRJ (DE120101311) och en Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) forskningsanslag till LP (PO 1440 / 1-1). Den australiska regenerativ medicin Institute stöds av medel från delstatsregeringen i Victoria och den australiska federala regeringen. Vi erkänner Dr Jeremy Ng Chi Kei, som utfört experiment som beskrivs här som publiceras i Kei et al. 2016. Vi är tacksamma för bestämmelserna i transgen fisk från Prof. Higashijima och tack Profs. Turner och Rupp för tillhandahållandet av pCS2 + plasmiden och Dr. Wilkinson för att generera H2B-RFP och H2A-GFP konstruktioner. Vi tackar FishCore anläggning personal (Monash University) för att ta hand om våra djur.

Materials

Agarose Bioline BIO-41025 Agarose coated dishes can be prepared a few days prior, sealed with parafilm to prevent drying and stored at 4C
Agarose low melt Sigma A9414-100G Can be prepared in larger volume, microwaved to liquify and then kept molte in 40C waterbath. 1 ml aliquots can be prepared (one for each group of embryos mounted).
borosillicate glass capillary tube w/o filament SDR Scientfic 30-0035 alternatives with similar diameter can be used 
borosillicate glass capillary tube with filament SDR Scientfic 30-0038 alternatives with similar diameter can be used 
glass petri dishes (60 mm diameter) Science Supply 1070506 any glass alternative of any size
Injection tube (2m) Eppendorf 524616004 This connects the needle holder to the syringe during transplantation
Microinjection mold (plastic mold with wedge-shaped protrusions) Adaptive Science Tools PT-1 alternatives with similar shape can be use
microneedle holder Narishige M-152 any alternative that fits the outside diameter of the injection needles can be used
microinjector Narishige or Eppendorf Femtojet Pneumatic injector using gas pressure
micromanipulator Coherent Scientific M330IR similar alternatives can be used
microloader tip Eppendorf 5242956003
Mineral oil Sigma M5904-500ML
needle puller Sutter Instruments Model P-2000 Settings used for this puller are: H 430, Fil 4, Vel 50, Del 225, Pul 75. Any needle puller can be used if it results in appropriate tip dimension
Parafilm Interpath PM996 any paraffin film
Pasteur pipette plastic Samco Scientific 202
Pasteur pipette glass Hirschmann Laborgeraete 9260101
Pronase Sigma P5942-25MG  Protease Type XIV
N-phenyl thiourea Sigma P7629-25G PTU is toxic and can be prepared as a stock solution to avoid frequent exposure to the powder, consult MSDS before purchase / use.
Qiaquick gel extraction Qiagen 28704 any alternatives to purify DNA can be used
Rneasy Mini kit Qiagen 74104 any alternatives to purify RNA can be used
SP6 mMessage kit Qiagen AM1340 any alternatives to transcribe DNA using SP6

Riferimenti

  1. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nat Rev Genet. 8, 353-367 (2007).
  2. Scholpp, S., Poggi, L., Zigman, M. Brain on the stage – spotlight on nervous system development in zebrafish: EMBO practical course, KIT, Sept. 2013. Neural Dev. 8, 23 (2013).
  3. Cayouette, M., Poggi, L., Harris, W. A. Lineage in the vertebrate retina. Trends Neurosci. 29, 563-570 (2006).
  4. Poggi, L., Vitorino, M., Masai, I., Harris, W. A. Influences on neural lineage and mode of division in the zebrafish retina in vivo. J Cell Biol. 171, 991-999 (2005).
  5. Poggi, L., Zolessi, F. R., Harris, W. A. Time-lapse analysis of retinal differentiation. Curr Opin Cell Biol. 17, 676-681 (2005).
  6. Jusuf, P. R., et al. Biasing amacrine subtypes in the Atoh7 lineage through expression of Barhl2. J Neurosci. 32, 13929-13944 (2012).
  7. Jusuf, P. R., et al. Origin and determination of inhibitory cell lineages in the vertebrate retina. J Neurosci. 31, 2549-2562 (2011).
  8. Jusuf, P., Harris, W. A., Poggi, L. Imaging retinal progenitor lineages in developing zebrafish embryos. Cold Spring Harb Protoc. 2013, (2013).
  9. Jusuf, P., Harris, W. A., Poggi, L. Preparation of transgenic zebrafish embryos for imaging the developing retina. Cold Spring Harb Protoc. 2013, (2013).
  10. Vitorino, M., et al. Vsx2 in the zebrafish retina: restricted lineages through derepression. Neural Dev. 4, 14 (2009).
  11. Reh, T. A. Cell-specific regulation of neuronal production in the larval frog retina. J Neurosci. 7, 3317-3324 (1987).
  12. Reh, T. A., Tully, T. Regulation of tyrosine hydroxylase-containing amacrine cell number in larval frog retina. Dev Biol. 114, 463-469 (1986).
  13. Livesey, F. J., Cepko, C. L. Vertebrate neural cell-fate determination: lessons from the retina. Nature reviews. Neuroscience. 2, 109-118 (2001).
  14. Zolessi, F. R., Poggi, L., Wilkinson, C. J., Chien, C. B., Harris, W. A. Polarization and orientation of retinal ganglion cells in vivo. Neural Dev. 1, 2 (2006).
  15. Kimura, Y., Okamura, Y., Higashijima, S. alx, a zebrafish homolog of Chx10, marks ipsilateral descending excitatory interneurons that participate in the regulation of spinal locomotor circuits. J Neurosci. 26, 5684-5697 (2006).
  16. Kimura, Y., Satou, C., Higashijima, S. V2a and V2b neurons are generated by the final divisions of pair-producing progenitors in the zebrafish spinal cord. Development. 135, 3001-3005 (2008).
  17. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio Rerio). , (2007).
  18. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).
  19. Kei, J. N., Dudczig, S., Currie, P. D., Jusuf, P. R. Feedback from each retinal neuron population drives expression of subsequent fate determinant genes without influencing the cell cycle exit timing. J Comp Neurol. 524, 2553-2566 (2016).
  20. Yuan, S., Sun, Z. Microinjection of mRNA and morpholino antisense oligonucleotides in zebrafish embryos. J Vis Exp. , (2009).
  21. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. J Vis Exp. , (2009).
  22. Zou, J., Wei, X. Transplantation of GFP-expressing blastomeres for live imaging of retinal and brain development in chimeric zebrafish embryos. J Vis Exp. , (2010).
  23. Kemp, H. A., Carmany-Rampey, A., Moens, C. Generating chimeric zebrafish embryos by transplantation. J Vis Exp. , (2009).
  24. Schier, A. F., Talbot, W. S. Molecular genetics of axis formation in zebrafish. Annu Rev Genet. 39, 561-613 (2005).
  25. De Luca, E., et al. ZebraBeat: a flexible platform for the analysis of the cardiac rate in zebrafish embryos. Sci Rep. 4, 4898 (2014).
  26. Lin, J. W., et al. Differential requirement for ptf1a in endocrine and exocrine lineages of developing zebrafish pancreas. Dev Biol. 274, 491-503 (2004).
  27. Hollyfield, J. G. Histogenesis of the retina in the killifish, Fundulus heteroclitus. J Comp Neurol. 144 (3), 373-380 (1972).
  28. La Vail, M. M., Rapaport, D. H., Rakic, P. Cytogenesis in the monkey retina. J Comp Neurol. 309 (1), 86-114 (1991).
  29. Rapaport, D. H., Wong, L. L., Wood, E. D., Yasumura, D., LaVail, M. M. Timing and topography of cell genesis in the rat retina. J Comp Neurol. 474 (2), 304-324 (2004).
  30. Sharma, S. C., Ungar, F. Histogenesis of the goldfish retina. J Comp Neurol. 191 (3), 373-382 (1980).
  31. Stiemke, M. M., Hollyfield, J. G. Cell birthdays in Xenopus laevis retina. Differentiation. 58 (3), 189-193 (1995).
check_url/it/55490?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dudczig, S., Currie, P. D., Poggi, L., Jusuf, P. R. In Vivo Imaging of Transgenic Gene Expression in Individual Retinal Progenitors in Chimeric Zebrafish Embryos to Study Cell Nonautonomous Influences. J. Vis. Exp. (121), e55490, doi:10.3791/55490 (2017).

View Video