Aquí se describe un protocolo para la extracción de metabolitos a partir de Staphylococcus aureus y su posterior análisis por cromatografía de líquidos y espectrometría de masas.
En un esfuerzo para frustrar los patógenos bacterianos, anfitriones a menudo limitan la disponibilidad de nutrientes en el sitio de la infección. Esta limitación puede alterar las abundancias de metabolitos clave a los que factores reguladores responden, ajustando el metabolismo celular. En los últimos años, un número de proteínas y ARN han surgido como importantes reguladores de la expresión del gen de virulencia. Por ejemplo, la proteína CodY responde a niveles de aminoácidos de cadena ramificada y GTP y es ampliamente conservada en bajo de G + C bacterias Gram-positivas. Como un regulador global en Staphylococcus aureus, Cody controla la expresión de la virulencia y de genes metabólicos decenas. Se postula que el S. aureus utiliza Cody, en parte, para alterar su estado metabólico en un esfuerzo para adaptarse a las condiciones de nutrientes limitantes potencialmente encontradas en el entorno de acogida. Este manuscrito describe un método para la extracción y el análisis de metabolitos a partir de S. aureus utilizando cromatografía líquida acoplada con espectrometría de masastrometry, un protocolo que fue desarrollado para probar esta hipótesis. El método también destaca las mejores prácticas que garanticen el rigor y la reproducibilidad, tales como mantener el estado de equilibrio biológico y aireación constante y sin el uso de cultivos continuos quimiostato. Con relación a la USA200 susceptibles a la meticilina de S. aureus aislar UAMS-1 cepa parental, la isogénica mutante Cody exhibió incrementos significativos en aminoácidos derivados de aspartato (por ejemplo, treonina e isoleucina) y disminuye en sus precursores (por ejemplo, aspartato y O -acetilhomoserina ). Estos hallazgos se correlacionan bien con los datos de la transcripción obtenidos con el análisis de RNA-seq: genes en estas vías fueron reguladas entre 10 y 800 veces en el mutante nulo Cody. El acoplamiento de los análisis globales del transcriptoma y el metaboloma puede revelar cómo las bacterias alteran su metabolismo cuando se enfrentan a estrés ambiental o nutricional, proporcionando una visión potencial en los Physcambios IOLÓGICA asociados con el agotamiento de nutrientes experimentaron durante la infección. Tales descubrimientos pueden allanar el camino para el desarrollo de nuevos agentes antiinfecciosos y la terapéutica.
Los patógenos bacterianos deben enfrentarse a muchos desafíos en el entorno de acogida. Además de ataque directo por las células inmunes, el anfitrión también secuestra nutrientes esenciales para la supervivencia y replicación bacteriana, generando inmunidad nutricional 1, 2. Para sobrevivir a estos ambientes hostiles, los patógenos bacterianos se despliegan factores de virulencia. Algunos de estos factores permiten que las bacterias para evadir la respuesta inmune; Otros factores incluyen las enzimas digestivas, tales como hialuronidasa, termonucleasa, y lipasa, que pueden permitir a las bacterias para reponer los nutrientes que faltan por el consumo de constituyentes derivadas de tejido 3, 4, 5 secretadas. De hecho, las bacterias han evolucionado los sistemas de regulación que atan el estado fisiológico de la célula para la producción de factores de virulencia 6, 7, <s hasta class = "xref"> 8, 9, 10.
Un cuerpo creciente de evidencia apunta a Cody como un regulador crítico que une el metabolismo y la virulencia. Aunque primero descubierto en Bacillus subtilis como un represor del gen dipéptido permeasa (dpp) 11, Cody ahora se sabe que se produce en casi todas las bacterias G + C Gram-positivos bajos 12, 13 y regula docenas de genes implicados en carbono y nitrógeno metabolismo 14, 15, 16, 17, 18, 19. En las especies patógenas, Cody también controla la expresión de algunos de los genes de virulencia más importantes 20, 21,. ef "> 22, 23, 24, 25, 26, 27 CodY se activa como una proteína de unión a ADN por dos clases de ligandos: aminoácidos de cadena ramificada (BCAA; isoleucina, leucina, y valina [ILV]) y GTP . Cuando estos nutrientes son abundantes, Cody reprime (o en algunos casos, estimula) la transcripción. Como estos nutrientes se vuelven limitado, se reduce progresivamente la actividad Cody, que resulta en una respuesta transcripcional graduada que rutas de re precursores a través de diversas vías metabólicas conectados a metabolismo central 28, 29, 30.
Cromatografía líquida de Tandem acoplada a espectrometría de masas (LC-MS) es una técnica poderosa que puede identificar con precisión y cuantificar de molécula pequeña metabolitos intracelulares 31. Cuando se combina con transcriptasaanálisis riptome (por ejemplo, RNA-Seq), este flujo de trabajo analítico puede dar una idea de los cambios fisiológicos que se producen en respuesta al estrés ambiental o nutricional. A continuación, presentamos un método para la extracción de metabolitos a partir de células de Staphylococcus aureus y el análisis posterior mediante LC-MS. Este enfoque ha sido utilizado para demostrar los efectos pleiotrópicos de CodY en S. aureus fisiología.
Todos los metabolitos de molécula pequeña se conectan entre sí a través de sus orígenes comunes en las vías metabólicas centrales. Durante el crecimiento exponencial, las células bacterianas están en el estado de equilibrio biológico y metabólica, proporcionando una instantánea del estado fisiológico en condiciones específicas. CodY supervisa la suficiencia de nutrientes al responder a ILV y GTP. Como ILV y GTP piscinas gota, la actividad Cody es probable reduce progresivamente, el ajuste de la expresión …
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue financiado en parte por un NIH Camino a la concesión de la Independencia (GM conceder 099.893) y los fondos de inicio facultad de SRB, así como un proyecto de investigación de Grant (subvención GM 042219). Los proveedores de fondos no tuvieron ningún papel en el diseño del estudio, la recogida de datos e interpretación, o la decisión de presentar el trabajo para su publicación.
Material/Equipmenta | |||
DeLong Culture Flask (250 ml) | Belco | 2510-00250 | |
Sidearm Flask, 500 ml | Pyrex | 5340 | |
3-hole Rubber Stopper, #7 | Fisher | 14-131E | |
Stainless Steel Filter holder/frit | VWR | 89428-936 | |
Petri Dish, 35 mm | Corning | 430588 | Not tissue culture treated |
Mixed cellulose ester membrane, 0.22 μm pore size | Millipore | GSWP02500 | |
Impact-resistant tubes, 2 ml | USA Scientific | 1420-9600 | |
Silica Beads, 0.1 mm | Biospec Products Inc | 11079101Z | |
Precellys 24 homogenizer | Bertin Instruments | EQ03119-200-RD000.0 | |
Micro BCA Protein Assay Kit | Pierce (Thermo Scientific) | 23235 | |
Cogent Diamond hydride type C column | Agilent | 70000-15P-2 | |
Accurate-Mass Time-of-Flight (TOF) LC-MS, 6200 Series | Agilent | G6230B | |
Quat Pump, 1290 Series | Agilent | G4204A | |
Bin Pump, 1290 Series | Agilent | G4220A | |
Valve Drive, 1290 Series | Agilent | G1107A | |
Isocratic Pump, 1290 Series | Agilent | G1310B | |
TCC, 1290 Series | Agilent | G1316C | |
Sampler, 1290 Series | Agilent | G4226A | |
Thermostat, 1290 Series | Agilent | G1330B | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Chemical | |||
Tryptic Soy Broth | Becton Dickinson | 211825 | |
Difco Agar, Granulated | Becton Dickinson | 214530 | Solid media contains 1.5% [w/v] agar |
Phosphate-buffered saline (pH 7.4) 10X | Ambion | AM9624 | Dilute fresh to 1X with ultra-pure water |
Acetonitrile | Fisher Scientific | A955-500 | Optima LC-MS |
Methanol | Fisher Scientific | A456-500 | Optima LC-MS; toxic |
Formic Acid | Sigma Aldrich | 94318 | For mass spectrometry, 98% |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
MassHunter | Agilent | G3337AA | |
Bacterial Strain | Species | Strain | Genotype |
SRB 337 | Staphylococcus aureus | USA200 MSSA UAMS-1 | wild type |
SRB 372 | Staphylococcus aureus | USA200 MSSA UAMS-1 | ΔcodY::erm |
aChemicals and materials listed are specific to the method described and do not include standard laboratory chemicals or supplies. |