Summary

从多个小鼠组织分离中间丝状蛋白以研究与老化相关的翻译后修饰

Published: May 18, 2017
doi:

Summary

在这种方法中,我们提出了从多个小鼠组织快速高效地分离中间丝(IF)蛋白质的生物化学方法。分离的IF可用于通过质谱法和其他生化测定法研究翻译后修饰的变化。

Abstract

中间丝(IFs)与肌动蛋白丝和微管一起形成细胞骨架 – 每个细胞的关键结构元件。正常功能的IF为细胞提供机械和应激弹性,而功能失调的IF细胞骨架损害细胞健康,并与许多人类疾病相关。翻译后修饰(PTM)对生理变化和应激条件下的IF动力学进行了严格的调节。因此,监测IFM的PTM签名变化的能力可以有助于在细胞损伤期间作为应激反应者的IF系统的更好的功能理解和最终调节。然而,由超过70个个体基因编码并以组织依赖性方式表达的大量IF蛋白质是排除不同PTM相对重要性的主要挑战。为此,可以监测IF蛋白上的PTMs的方法在生物体层面上,而不是孤立的家庭成员,可以加速这一领域的研究进展。在这里,我们提出生物化学方法,从9种不同的小鼠组织(脑,心脏,肺,肝,小肠,大肠,胰腺,肾脏和)分离IF蛋白的总,洗涤剂可溶性和去污剂抗性分数脾)。我们进一步展示了通过使用裂解基质和不同小鼠组织的自动均质化来快速分离IF蛋白的优化方案。自动化方案对于在具有高样品体积的实验中(例如涉及多个动物和实验组的疾病模型)中的IF进行分析是有用的。所得样品可用于各种下游分析,包括基于质谱的PTM分析。利用这些方法,我们提供新的数据,显示不同小鼠组织(脑和肝)中的IF蛋白在其表达方面发生平行变化老龄化期间的PTMs。

Introduction

IF是一系列蛋白质,在人类中由73个基因编码并分为六种主要类型:I-IV型是细胞质( 例如上皮和毛发角蛋白(K),肌细胞结蛋白,神经丝,胶质纤维酸性蛋白(GFAP)和别的); V型是核脂肪;并且VI型是眼镜1中的IF。在其分子组织方面,IF蛋白质具有三个共同的结构域:高度保守的螺旋线圈“棒”结构域,以及球状“头”和“尾”结构域。 IF蛋白质四聚体组装形成短丝前体,其最终并入成熟细丝中,其形成涉及机械保护的动态细胞骨架和核结构结构2 ,应激感测3,4 ,调节转录5和生长以及其他关键细胞功能“> 1,6,7

由IF基因错义突变引起的许多人类疾病的存在突出了IF系统的功能重要性,包括神经病,肌病,皮肤脆性障碍,代谢功能障碍和早衰症候群8 。一些IF基因突变不会引起疾病进展的倾向,如肝脏疾病中的简单上皮角蛋白9 。后者是由于上皮中的IF的临界应力保护功能。一般来说,IF在基础条件下是最丰富的细胞蛋白,但在各种类型的应激10中进一步强烈诱导。例如,最近对线虫线虫的蛋白质组范围变化进行的研究表明,多个IF被高度上调并且易于聚集在有机体老化11,12 。由于维持适当的IF结构对于细胞对各种形式的应力10的抵抗是至关重要的,所以IF聚集也可能导致衰老过程中的功能下降。然而,缺乏在不同组织中进行压力检测多种哺乳动物IF蛋白的有机体水平的研究。

IF是高度动态的结构,可以适应蜂窝需求。例如,角蛋白经历可溶性(非丝状)和不溶性(丝状)蛋白质池13之间的生物合成非依赖性循环。在正常的生理条件下,约5%的K8 / K18总库可以在无洗涤剂的缓冲液中提取,相比之下可以溶解在非离子型洗涤剂Nonidet P-40中的约20%,这是与Triton- X100 14 </s> 15 。在有丝分裂期间,简单型上皮K8和K1814的溶解度显着增加,这在表皮角蛋白中不太明显,但在波形蛋白和其他III型IF蛋白15,16 更为明显。 IF蛋白的溶解性质通过磷酸化来进行严格调控,磷酸化是针对灯丝重排和溶解度的关键的翻译后修饰(PTM)17,18,19,20。大多数IF受到保护地点的多个PTM的广泛监管,导致功能变化17

这种方法的目的是引入新的IF领域的研究人员进行生物化学提取和多个小鼠组织中IF蛋白研究的分析方法。具体盟军,我们专注于使用高盐提取方法分离IF蛋白,并通过质谱法和PTM靶向抗体评估PTMs的变化。这些方法基于以前发布的程序21,但包括用于提取不同IF蛋白类型的修饰,以揭示通过IF家族调节的常见机制。例如,特定赖氨酸残基处的K8乙酰化调节细丝组织,而超乙酰化促进K8不溶性和聚集体形成22 。最近的全球蛋白质组学分析研究还发现,大多数组织特异性IF蛋白质也是乙酰化的靶标,大多数IF乙酰化位点被限制在高度保守的杆结构域。这突出表明需要适合IF系统的全局分析的方法。我们还介绍了使用Opti自动均质化从多组织分离IF蛋白的快速方法大小溶解基质。所得制剂适用于通过质谱法和其他方法进行下游PTM分析。

Protocol

该协议是根据北卡罗来纳大学的机构动物保护和使用委员会(IACUC)批准和执行的。 准备工作制备Triton-X缓冲液(1%Triton X-100,5mM乙二胺四乙酸(EDTA)),在磷酸盐缓冲盐水(PBS),pH 7.4中调高体积)。制成500mL:将Triton X-100和500mM EDTA各5mL搅拌至490mL PBS(pH7.4)中。在4℃下储存Triton-X缓冲溶液。 制备高盐缓冲液(10mM Tris-HCl,pH 7.6,140mM NaCl,1.5M KCl,5mM EDTA,0.5%Triton X-100,在双?…

Representative Results

一种使用裂解基质从多个小鼠组织中高度盐提取IF蛋白的新的快速方法。 在这里修饰了分离大部分中间丝蛋白部分与上皮组织的传统方法25,26以包括9种不同的器官和更快速的组织溶解过程。虽然传统方法需要3个手动均质步骤,但修改过程只有1个手动均质步骤,可以?…

Discussion

使IF蛋白的生物化学表征的方法可用于了解哺乳动物系统中的许多病理生理现象,因为IF蛋白既是细胞和组织应激的标志物和调节剂。目前的方法背后的原理是基于20世纪70年代和80年代开发的初步程序,从细胞和组织中分离,分离和重建IF蛋白,一般采用低盐和高盐溶液和Triton-X100洗涤剂25,30,31,32 33,34,35 。对于支持IF蛋白生化分离的研究的历史见解,请参见最近的评论<su…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到NIH R01 DK110355,DK093776 [NTS],DK102450 [NTS]和P30 DK034987 [向UNC-Chapel Hill]的支持。作者感谢Deekshita Ramanarayanan协助qPCR和免疫印迹实验。

Materials

Dynabeads Protein G ThermoFisher Scientific 10009 immunoprecipitation beads
PBS ThermoFisher Scientific 10010049 for buffers
Purelink RNA mini kit ThermoFisher Scientific 12183018 RNA extraction from tissue
Purelink DNAse set ThermoFisher Scientific 12185010A on column DNA digestion
Dynamag-2 ThermoFisher Scientific 12321D magnet for use with dynabeads
GelCode Blue Stain Reagent ThermoFisher Scientific 24592 mass spectrometry-compatible gel stain
Pierce ECL Western Blotting Substrate ThermoFisher Scientific 32106 for use in western blot
High Capacity cDNA reverse transcription kit ThermoFisher Scientific 4368813 for use in gene expression analysis
Proflex 3×32-well PCR System ThermoFisher Scientific 4484073 PCR system
PVDF transfer membrane  ThermoFisher Scientific 88520 for western blot
Power Up SYBR master mix ThermoFisher Scientific A25778 for qPCR analysis
RNAlater ThermoFisher Scientific AM7020 solution for tissue storage prior to RNA isolation
Novex 4-20% Tris Glycine Gel ThermoFisher Scientific XP04205BOX Precast protein gel
Anti-Keratin 8 antibody (TS1) ThermoFisher Scientific MA514428 for western blot detection of K8
Anti-Vimentin ThermoFisher Scientific MA511883 for western blot detection of vimentin
Tris Glycine Transfer Buffer (25X) ThermoFisher Scientific LC3675 for wet transfer of protein gels
2X SDS Sample Buffer ThermoFisher Scientific LC2676 for preparing protein gel samples
Tris Glycine SDS Running Buffer (10X) ThermoFisher Scientific LC26755 for running protein gels
Lysing beads – Matrix D MP Biomedicals 116913100 Lysis beads and matrix tubes for tissue disruption and RNA extraction
Lysing beads – Matrix SS MP Biomedicals 116921100 Lysis beads and matrix tubes for tissue disruption and protein extraction
NanoDrop Lite Spectrophotometer ThermoFisher Scientific ND-LITE measurement of protein and nucleic acid
Precellys 24 homogenizer Bertin Instruments EQ03119 Automated tissue homogenizer

Riferimenti

  1. Eriksson, J. E., et al. Introducing intermediate filaments: from discovery to disease. J Clin Invest. 119 (7), 1763-1771 (2009).
  2. Lowery, J., Kuczmarski, E. R., Herrmann, H., Goldman, R. D. Intermediate Filaments Play a Pivotal Role in Regulating Cell Architecture and Function. J Biol Chem. 290 (28), 17145-17153 (2015).
  3. Perez-Sala, D., et al. Vimentin filament organization and stress sensing depend on its single cysteine residue and zinc binding. Nat Commun. 6, 7287 (2015).
  4. Dialynas, G., et al. Myopathic lamin mutations cause reductive stress and activate the nrf2/keap-1 pathway. PLoS Genet. 11 (5), e1005231 (2015).
  5. Hobbs, R. P., et al. Keratin-dependent regulation of Aire and gene expression in skin tumor keratinocytes. Nat Genet. , (2015).
  6. Chung, B. M., Rotty, J. D., Coulombe, P. A. Networking galore: intermediate filaments and cell migration. Curr Opin Cell Biol. 25 (5), 600-612 (2013).
  7. Gruenbaum, Y., Aebi, U. Intermediate filaments: a dynamic network that controls cell mechanics. F1000 Prime Rep. 6, (2014).
  8. Omary, M. B. "IF-pathies": a broad spectrum of intermediate filament-associated diseases. J Clin Invest. 119 (7), 1756-1762 (2009).
  9. Omary, M. B., Ku, N. O., Strnad, P., Hanada, S. Toward unraveling the complexity of simple epithelial keratins in human disease. J Clin Invest. 119 (7), 1794-1805 (2009).
  10. Toivola, D. M., Strnad, P., Habtezion, A., Omary, M. B. Intermediate filaments take the heat as stress proteins. Trends Cell Biol. 20 (2), 79-91 (2010).
  11. Walther, D. M., et al. Widespread Proteome Remodeling and Aggregation in Aging. C. elegans. Cell. 161 (4), 919-932 (2015).
  12. David, D. C., et al. Widespread protein aggregation as an inherent part of aging in. C. elegans. PLoS Biol. 8 (8), (2010).
  13. Windoffer, R., Beil, M., Magin, T. M., Leube, R. E. Cytoskeleton in motion: the dynamics of keratin intermediate filaments in epithelia. J Cell Biol. 194 (5), 669-678 (2011).
  14. Chou, C. F., Riopel, C. L., Rott, L. S., Omary, M. B. A significant soluble keratin fraction in ‘simple’ epithelial cells. Lack of an apparent phosphorylation and glycosylation role in keratin solubility. J Cell Sci. 105 ( Pt. 2, 433-444 (1993).
  15. Omary, M. B., Ku, N. O., Liao, J., Price, D. Keratin modifications and solubility properties in epithelial cells and in vitro). Subcell Biochem. 31, 105-140 (1998).
  16. Lowthert, L. A., Ku, N. O., Liao, J., Coulombe, P. A., Omary, M. B. Empigen BB: a useful detergent for solubilization and biochemical analysis of keratins. Biochem Biophys Res Commun. 206 (1), 370-379 (1995).
  17. Snider, N. T., Omary, M. B. Post-translational modifications of intermediate filament proteins: mechanisms and functions. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (3), 163-177 (2014).
  18. Snider, N. T., Weerasinghe, S. V., Iniguez-Lluhi, J. A., Herrmann, H., Omary, M. B. Keratin hypersumoylation alters filament dynamics and is a marker for human liver disease and keratin mutation. J Biol Chem. 286 (3), 2273-2284 (2011).
  19. Eriksson, J. E., et al. Specific in vivo phosphorylation sites determine the assembly dynamics of vimentin intermediate filaments. J Cell Sci. 117 (Pt. 6, 919-932 (2004).
  20. Sahlgren, C. M., et al. Mitotic reorganization of the intermediate filament protein nestin involves phosphorylation by cdc2 kinase). J Biol Chem. 276 (19), 16456-16463 (2001).
  21. Snider, N. T., Omary, M. B. Assays for Posttranslational Modifications of Intermediate Filament Proteins. Methods Enzymol. 568, 113-138 (2016).
  22. Snider, N. T., et al. Glucose and SIRT2 reciprocally mediate the regulation of keratin 8 by lysine acetylation. J Cell Biol. 200 (3), 241-247 (2013).
  23. Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C., Suckow, M. A. . The laboratory mouse. , (2013).
  24. Weiss, W., Weiland, F., Gorg, A. Protein detection and quantitation technologies for gel-based proteome analysis. Methods Mol Biol. 564, 59-82 (2009).
  25. Achtstaetter, T., Hatzfeld, M., Quinlan, R. A., Parmelee, D. C., Franke, W. W. Separation of cytokeratin polypeptides by gel electrophoretic and chromatographic techniques and their identification by immunoblotting. Methods Enzymol. 134, 355-371 (1986).
  26. Ku, N. O., et al. Studying simple epithelial keratins in cells and tissues. Methods Cell Biol. 78, 489-517 (2004).
  27. Julien, J. P., Mushynski, W. E. Multiple phosphorylation sites in mammalian neurofilament polypeptides. J Biol Chem. 257 (17), 10467-10470 (1982).
  28. Hubbard, B. D., Lazarides, E. Copurification of actin and desmin from chicken smooth muscle and their copolymerization in vitro to intermediate filaments. J Cell Biol. 80 (1), 166-182 (1979).
  29. Ku, N. O., Strnad, P., Bantel, H., Omary, M. B. Keratins: Biomarkers and modulators of apoptotic and necrotic cell death in the liver. Hepatology. 64 (3), 966-976 (2016).
  30. Huiatt, T. W., Robson, R. M., Arakawa, N., Stromer, M. H. Desmin from avian smooth muscle. Purification and partial characterization. J Biol Chem. 255 (14), 6981-6989 (1980).
  31. Zackroff, R. V., Goldman, R. D. In vitro assembly of intermediate filaments from baby hamster kidney (BHK-21) cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 76 (12), 6226-6230 (1979).
  32. Franke, W. W., Schmid, E., Osborn, M., Weber, K. The intermediate-sized filaments in rat kangaroo PtK2 cells. II. Structure and composition of isolated filaments. Cytobiologie. 17 (2), 392-411 (1978).
  33. Small, J. V., Sobieszek, A. Studies on the function and composition of the 10-NM(100-A) filaments of vertebrate smooth muscle. J Cell Sci. 23, 243-268 (1977).
  34. Dahl, D., Bignami, A. Glial fibrillary acidic protein from normal human brain. Purification and properties. Brain Res. 57 (2), 343-360 (1973).
  35. Steinert, P. M., Idler, W. W., Zimmerman, S. B. Self-assembly of bovine epidermal keratin filaments in vitro. J Mol Biol. 108 (3), 547-567 (1976).
  36. Goldman, R. D., Cleland, M. M., Murthy, S. N., Mahammad, S., Kuczmarski, E. R. Inroads into the structure and function of intermediate filament networks. J Struct Biol. 177 (1), 14-23 (2012).
  37. Oshima, R. G. Intermediate filaments: a historical perspective. Exp Cell Res. 313 (10), 1981-1994 (2007).
  38. Mashukova, A., Forteza, R., Salas, P. J. Functional Analysis of Keratin-Associated Proteins in Intestinal Epithelia: Heat-Shock Protein Chaperoning and Kinase Rescue. Methods Enzymol. 569, 139-154 (2016).
  39. Schinzel, R., Dillin, A. Endocrine aspects of organelle stress-cell non-autonomous signaling of mitochondria and the ER. Curr Opin Cell Biol. 33, 102-110 (2015).
  40. Taylor, R. C., Berendzen, K. M., Dillin, A. Systemic stress signalling: understanding the cell non-autonomous control of proteostasis. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (3), 211-217 (2014).
  41. Lemieux, G. A., et al. Kynurenic acid is a nutritional cue that enables behavioral plasticity. Cell. 160 (1-2), 119-131 (2015).
  42. Oosten-Hawle, P., Porter, R. S., Morimoto, R. I. Regulation of organismal proteostasis by transcellular chaperone signaling. Cell. 153 (6), 1366-1378 (2013).
  43. Ulgherait, M., Rana, A., Rera, M., Graniel, J., Walker, D. W. AMPK modulates tissue and organismal aging in a non-cell-autonomous manner. Cell Rep. 8 (6), 1767-1780 (2014).
  44. Aynardi, M. W., Steinert, P. M., Goldman, R. D. Human epithelial cell intermediate filaments: isolation, purification, and characterization. J Cell Biol. 98 (4), 1407-1421 (1984).
  45. Shea, J. M., et al. Purification of desmin from adult mammalian skeletal muscle. Biochem J. 195 (2), 345-356 (1981).
  46. Liao, J., Lowthert, L. A., Ghori, N., Omary, M. B. The 70-kDa heat shock proteins associate with glandular intermediate filaments in an ATP-dependent manner. J Biol Chem. 270 (2), 915-922 (1995).
  47. Liao, J., Omary, M. B. 14-3-3 proteins associate with phosphorylated simple epithelial keratins during cell cycle progression and act as a solubility cofactor. J Cell Biol. 133 (2), 345-357 (1996).
  48. Ku, N. O., Fu, H., Omary, M. B. Raf-1 activation disrupts its binding to keratins during cell stress. J Cell Biol. 166 (4), 479-485 (2004).
  49. Hendriks, I. A., Vertegaal, A. C. A comprehensive compilation of SUMO proteomics. Nat Rev Mol Cell Biol. 17 (9), 581-595 (2016).
  50. Agnetti, G., Lindsey, M. L., Foster, D. B. . Manual of cardiovascular proteomics. , (2016).
  51. Choudhary, C., Weinert, B. T., Nishida, Y., Verdin, E., Mann, M. The growing landscape of lysine acetylation links metabolism and cell signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (8), 536-550 (2014).
  52. Herhaus, L., Dikic, I. Expanding the ubiquitin code through post-translational modification. EMBO Rep. 16 (9), 1071-1083 (2015).
  53. Dephoure, N., Gould, K. L., Gygi, S. P., Kellogg, D. R. Mapping and analysis of phosphorylation sites: a quick guide for cell biologists. Mol Biol Cell. 24 (5), 535-542 (2013).
  54. Choudhary, C., Mann, M. Decoding signalling networks by mass spectrometry-based proteomics. Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (6), 427-439 (2010).
  55. Creixell, P., Linding, R. Cells, shared memory and breaking the PTM code. Mol Syst Biol. 8, 598 (2012).
  56. Minguez, P., et al. Deciphering a global network of functionally associated post-translational modifications. Mol Syst Biol. 8, (2012).
  57. Snider, N. T., Park, H., Omary, M. B. A conserved rod domain phosphotyrosine that is targeted by the phosphatase PTP1B promotes keratin 8 protein insolubility and filament organization. J Biol Chem. 288 (43), 31329-31337 (2013).
  58. Gorospe, J. R., et al. Molecular findings in symptomatic and pre-symptomatic Alexander disease patients. Neurology. 58 (10), 1494-1500 (2002).

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Citazione di questo articolo
Battaglia, R. A., Kabiraj, P., Willcockson, H. H., Lian, M., Snider, N. T. Isolation of Intermediate Filament Proteins from Multiple Mouse Tissues to Study Aging-associated Post-translational Modifications. J. Vis. Exp. (123), e55655, doi:10.3791/55655 (2017).

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