Summary

Optisk kvantifisering av intracellulær pH i Drosophila melanogaster Malpighian Tubule Epithelia med fluorescerende genetisk kodet pH indikator

Published: August 11, 2017
doi:

Summary

Mobilnettet ion transport kan ofte vurderes ved å overvåke intracellulær pH (pHjeg). Genetisk gir kodet pH-indikatorer (GEpHIs) optisk kvantifisering av intracellulær pH i intakt celler. Denne protokollen detaljer kvantifisering av intracellulær pH gjennom mobilnettet ex vivo live-avbildning av Malpighian tubules i Drosophila melanogaster med pHerry, en pseudo-ratiometric kodet genetisk pH-indikator.

Abstract

Epitel ion transport er avgjørende for systemisk ion homeostase samt vedlikehold av avgjørende mobilnettet elektrokjemiske graderinger. Intracellulær pH (pHjeg) er påvirket av mange ion transportører og dermed overvåking pHjeg er et nyttig verktøy for å vurdere transporter aktivitet. Moderne genetisk kodet pH-indikatorer (GEpHIs) gir optisk kvantifisering av pHjeg i intakt celler i mobilnettet og subcellular skala. Denne protokollen beskriver sanntid kvantifisering av mobilnettet pHjeg regulering i Malpighian Tubules (MTs) av Drosophila melanogaster gjennom ex vivo live-avbildning av pHerry, en pseudo-ratiometric GEpHI med en pKen velegnet spore pH endringer i stoffer. Utdraget voksen fly MTs består av morphologically og funksjonelt forskjellige deler av encellede lag epithelia, og kan fungere som en tilgjengelig og genetisk medgjørlig modell for undersøkelse av epitelial transport. GEpHIs tilbyr flere fordeler sammenlignet med konvensjonelle pH-sensitive fluorescerende fargestoffer og ion-selektiv elektroder. GEpHIs kan merke ulike celle populasjoner forutsatt riktig promoter elementer finnes. Denne merking er spesielt nyttig i ex vivo, vivoog i situ preparater, som er iboende heterogene. GEpHIs også tillater kvantifisering av pHi intakt vev over tid uten behovet for gjentatt fargestoff behandling eller vev eksternalisering. Den viktigste ulempen av gjeldende GEpHIs er tendensen å samle i cytosolic Inneslutninger svar vevsskade og konstruere over uttrykk. Disse svakhetene, sine løsninger og de iboende fordelene med GEpHIs er vist i denne protokollen gjennom vurdering av basolateral proton (H+) transport i funksjonelt forskjellige rektor og stellate celler av utdraget fly MTs. Teknikker og analyse beskrevet er lett tilpasses en rekke vertebrate og invertebrate forberedelser, og raffinementet til analysen kan skaleres fra undervisningen labs til intrikate fastsettelse av ion flux via bestemte transportører.

Introduction

Målet med denne protokollen er å beskrive kvantifisering av intracellulær pH (pHi) bruker en genetisk kodet pH-indikator (GEpHI) og demonstrere hvordan denne metoden kan brukes til å vurdere basolateral H+ transport i en modell insekt (D. melanogaster) nyre struktur, Malpighian tubule (MT). MTs tjene som frukt fly excretory organer og ligner funksjonelt på pattedyr nyre i flere viktige henseender1. MTs er arrangert som 2 par av tubules (fremre og bakre) i thorax og buk fly. Encellede epithelial tube hver MT består av metabolsk aktive viktigste celler med forskjellige apikale (luminal) og basolateral (hemocoel) polaritet samt under Sommer stellate celler. Fremre MTs består av 3 morphologically, funksjonelt, og developmentally forskjellige segmenter, spesielt første dilated segmentet, overgangsreglene segmentet og sekretoriske hovedavdeling avsnitt, som kobles til ureter2. I cellular skala trans-epitelial ion transport i lumen oppnås ved en apikale plasma membran V-ATPase3 og en alkali-metall/H+ exchanger, samt en basolateral Na+-K+-ATPase4, innover-likeretter K+ kanaler5, Na+-drevet Cl/HCO3 exchanger (NDAE1)6og Na+-K+-2 Cl cotransporter (NKCC; Ncc69)7, mens stellate celler megle Cl og vann transport8,9. Dette komplekse, men tilgjengelig fysiologiske systemet gir gode muligheter for undersøkelse av endogene ion transportmekanismer kombinert med de ulike genetiske og atferdsmessige verktøysett av Drosophila.

Begrunnelsen for denne protokollen var å beskrive et genetisk formbare system for å studere epithelial ion transport med potensial for integrasjon fra cellen til oppførsel og eksport av verktøy for andre modellsystemer. Uttrykk for pHerry10, en GEpHI avledet fra en blanding av grønn pH-sensitive super ekliptikken pHluorin11,12 (SEpH) og røde pH-ufølsom mCherry13, i MTs tillater kvantifisering av H+ transport i MT enkeltceller gjennom de høye K+/nigericin kalibrering teknikk14. Som mange ion transportører flytte H+ -ekvivalenter, serverer kvantifisering av intracellulær pHjeg som en funksjonell representasjon av ion bevegelse via en rekke transportører. Drosophila MT modell systemet tilbyr også kraftig genetisk verktøy i vev-spesifikke transgene15 og RNA forstyrrelser (RNAi)16 uttrykk som kan kombineres med mobil bildebehandling og hele-orgel analyser17 , 18 , 19 av tubule-funksjonen til å opprette et solid verktøysett med vertikal integrasjon fra molekyler virkemåten. Dette står i kontrast til mange andre protokoller for å vurdere epithelial biologi, som historisk slike målinger har stolt på intrikate og skremmende mikro-disseksjon, sofistikerte ion-selektiv elektroder20,21, og dyre pH-sensitive fargestoffer22 med restriktiv lasting krav og dårlig mobilnettet spesifisitet heterogen vev. GEpHIs har blitt brukt mye måle pHjeg i en rekke cellen typer23. Tidlige arbeid utnyttet iboende pH-følsomheten av Green fluorescerende Protein (GFP) å overvåke pHjeg kulturperler epitelceller24 men de siste to tiårene har sett GEpHIs brukes i neurons25, glia26, sopp27 , og plant celler28. Kombinasjonen av potensialet for mobilnettet målretting av genetisk konstruksjoner gjennom GAL4/UAS uttrykk systemet15 og fysiologiske tilgjengelighet av Drosophila MT gjør dette til en ideell forberedelse til undersøkelser av pHjeg regulering og epithelial ion transport.

pHjeg regulering har vært studert i flere tiår og er avgjørende for liv. MT utarbeidelse tilbyr en robust modell å lære fysiologi av pHjeg regulering, men også utføre avanserte undersøkelser av pHi regulering ex vivo og i vivo. Denne protokollen beskriver kvantifisering av H+ bevegelse over basolateral membran av epitelceller av Drosophila MT bruker NH4Cl puls syre lasting teknikk21, men som pH-indikatoren er genetisk kodet, kan disse metodene og teoretisk struktur brukes på noen forberedelser mottakelig for transgenesis og live-imaging.

Protocol

Alle trinn i denne protokollen overholde Mayo Clinic (Rochester, MN) dyr bruk retningslinjene. 1. fly dyrehold Raise fluer og sett krysser etter standard dyrehold29.Merk: Fluorescerende reporter uttrykket av GAL4/UAS systemet er proporsjonal med temperaturen og dermed oppdrett temperatur kan justeres for å endre uttrykket nivå. Mens høy uttrykk nivåer ofte føre til en bedre signal-til-støy-forhold er denne tilstanden også forbundet med økt cytosoli…

Representative Results

Sunt vev og korrekt identifisering av fremre MTs er avgjørende for suksessen til denne protokollen. Under disseksjon, bør man være forsiktig å ikke direkte berøring MTs og skal bare dem ved ureter så gripende MTs direkte fører til brudd (figur 4A- B). Når MTs er feid flatt inn i lysbildet, på tubuli må bli rørt mulig og overflødig bevegelse unngått som dette vil skade encellede epiteliale lag (<strong class="xfi…

Discussion

Suksessen til kvantifisering av pHjeg i Drosophila MTs avhenger helt helse utdraget MTs og kvaliteten på montering og disseksjon (Figur A C). Således, forsiktig håndtering av vev som beskrevet er viktig. Lysbilder fersk belagt i PLL vesentlig hjelpemiddel MT montering som de pleier å være mye mer lim enn lysbilder som tidligere har vært utsatt til løsning. Forsiktig montering vil også hjelpe i identifikasjon av forskjellige MT segmenter (<…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH DK092408 og DK100227 å MFR. AJR ble støttet av T32-DK007013. Forfatterne vil takke Dr. Julian A.T. Dow for CapaR-GAL4 og c724-GAL4 Drosophila aksjer. Vi takker også Jacob B. Anderson for hjelp opprettholde eksperimentelle fly kors.

Materials

Poly-L-Lysine Solution Sigma-Aldrich P4832 Store at 4 °C, can be reused.
Nigericin Sodium Salt Sigma-Aldrich N7143 CAUTION: Handle with gloves. Store as aliquots of 20 mM stock solution in DMSO at 4 °C.
Adhesive Perfusion Chamber Covers, adhesive size 1 mm, chamber diameter × thickness 9 mm × 0.9 mm, ports diameter 1.5 mm Sigma-Aldrich GBL622105 Can be substituted as needed to match perfusion system.
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Ellsworth Adhesives 184 SIL ELAST KIT 0.5KG Available from multiple vendors.
Helping Hands Soldering Stands Harbor Freight Tools 60501 Available from multiple vendors.
Open Gravity-fed Perfusion System with Valve Controller, 8 to 1 Manifold and Reserviors Bioscience Tools PS-8S Any comparable perfusion system can be used.
Flow Regulator Warner Instruments 64-0221 Can be substituted as needed to match perfusion system.
Schneider's Medium Fisher Scientific 21720024 Store at 4 °C in sterile aliquots.
#5 Inox Steel Forceps Fine Science Tools 11252-20 Can be substituted based on experimenter comfort.
35 mm x 10 mm polystyrene Petri dish Corning Life Sciences Fisher Scientific 08-757-100A Exact brand and size are unimportant.
75 x 25 mm Microscope Slides Corning Life Sciences 2949-75X25 Exact brand and size can vary as long as perfusion wells are compatible.
Filimented Borosilicate Capillary Glass, ID 1.5 mm, OD 0.86 mm, thickness 0.32 mm Warner Instruments 64-0796 Filiment not necessary, glass can be substituted to match perfusion tubing and perfusion wells.
Tygon Tubing, ID 1/16 inch, OD 1/8 inch, thickness 1/32 inch Fisher Scientific 14-171-129 Available from multiple vendors, can be substituted to match perfusion system.
Vacuum Silicone Grease Sigma-Aldrich Z273554 Available from multiple vendors.
Plastic Flow Control Clamp Fisher Scientific 05-869 Available from multiple vendors, sterility not required
Glass rods, 5 mm diameter delphiglass.com 9198 Exact size is personal preference, multiple vendors available
PAP Hydrophobic Pen Sigma-Aldrich Z377821 Available from multiple vendors.
Sealing Film Sigma-Aldrich P7668 Available from multiple vendors.
15 mL Falcon tube BD Falcon 352096 Available from multiple vendors.
50 mL Falcon tube BD Falcon 352070 Available from multiple vendors.
HEPES; 4-(2-Hydroxyethyl)piperazine-1-ethanesulfonic acid Sigma-Aldrich H3375 Available from multiple vendors.
MES; 4-Morpholineethanesulfonic acid monohydrate Sigma-Aldrich 69892 Available from multiple vendors.
TAPS; N-[Tris(hydroxymethyl)methyl]-3-aminopropanesulfonic acid Sigma-Aldrich T5130 Available from multiple vendors.
10x/0.45 Air Objective Zeiss 000000-1063-139 Comparable objectives can be substituted. 40x objectives can be used for single cell imaging.
Dissecting Stereoscope Zeiss Discovery.V8 Any dissecting stereoscope can be used.
UAS-pHerry transgenic Drosophila melagnogaster Available from Romero Lab First published: Citation 10
capaR-GAL4 driver line Drosophila melagnogaster Available from Romero Lab First published: Citation 32
c724-GAL4 driver line Drosophila melagnogaster Available from Romero Lab First published: Citation 2
Monochromatic High Sensitivity Digital Camera Zeiss Axiocam 506 mono Exact brand and model can vary, can be replaced with any monochromatic high-sensitivity camera suited to live cellular imaging.
GFP/FITC filter set, 470/40 nm ex., 515 nm longpass em., 500 nm dichroic Chroma CZ909 Any GFP/FITC filer set can be substituted.
RFP/TRITC filter set, 546/10 nm ex., 590 nm longpass em., 565 nm dichroic Chroma CZ915 Any GFP/FITC filer set can be substituted.
Inverted Epifluoescent Microscope Zeiss Axio Observer Z.1 Any comparable microscope with motorized filter switching can be used. Upright microscopes can be used with open perfusion baths and water-immersion objectives.
Statistical Analysis Software Microcal Origin 6.0 Any software with comparable functionality can be substituted
Image Analysis Software National Institutes of Health ImageJ 1.50i Any software with comparable functionality can be substituted
Image Acquisition Software Zeiss Zen 1.1.2.0 Any software with comparable functionality can be substituted
Single-edged Carbon Steel Razor Blade Electron Microscopy Sciences 71960 Available from multiple vendors.
Microscopy Slide Folder Fisher Scientific 16-04 Available from multiple vendors.
Bunsen Burner Fisher Scientific 50-110-1231 Available from multiple vendors.
Polystrene Drosophila Rearing Vials with Flugs Genesee Scientific 32-109BF Comparable items can be substituted.
2.5 L Laboratory Ice Bucket Fisher Scientific 07-210-129 Available from multiple vendors.
NMDG; N-Methyl-D-glucamine Sigma-Aldrich M2004 Available from multiple vendors.
200 uL barrier pipette tips MidSci AV200 Available from multiple vendors.
200 uL variable volume pipette Gilson Incorporated PIPETMAN P200 Available from multiple vendors.

Riferimenti

  1. Dow, J. A. T., Romero, M. F. Drosophila provides rapid modeling of renal development, function, and disease. Am J Physiol Renal Physiol. 299 (6), F1237-F1244 (2010).
  2. Sozen, M. A., Armstrong, J. D., Yang, M., Kaiser, K., Dow, J. A. Functional domains are specified to single-cell resolution in a Drosophila epithelium. P Natl Acad Sci USA. 94 (10), 5207-5212 (1997).
  3. Davies, S. A., et al. Analysis and inactivation of vha55, the gene encoding the vacuolar ATPase B-subunit in Drosophila melanogaster reveals a larval lethal phenotype. J Biol Chem. 271 (48), 30677-30684 (1996).
  4. Torrie, L. S., et al. Resolution of the insect ouabain paradox. P Natl Acad Sci USA. 101 (37), 13689-13693 (2004).
  5. Evans, J. M., Allan, A. K., Davies, S. A., Dow, J. A. Sulphonylurea sensitivity and enriched expression implicate inward rectifier K+ channels in Drosophila melanogaster renal function. J Exp Biol. 208 (Pt 19), 3771-3783 (2005).
  6. Sciortino, C. M., Shrode, L. D., Fletcher, B. R., Harte, P. J., Romero, M. F. Localization of endogenous and recombinant Na(+)-driven anion exchanger protein NDAE1 from Drosophila melanogaster. Am J Physiol Cell Physiol. 281 (2), C449-C463 (2001).
  7. Ianowski, J. P., O’Donnell, M. J. Basolateral ion transport mechanisms during fluid secretion by Drosophila Malpighian tubules: Na+ recycling, Na+:K+:2Cl- cotransport and Cl- conductance. J Exp Biol. 207 (Pt 15), 2599-2609 (2004).
  8. O’Donnell, M. J., et al. Hormonally controlled chloride movement across Drosophila tubules is via ion channels in stellate cells. Am J Physiol. 274 (4 Pt 2), R1039-R1049 (1998).
  9. Cabrero, P., et al. Chloride channels in stellate cells are essential for uniquely high secretion rates in neuropeptide-stimulated Drosophila diuresis. P Natl Acad Sci USA. 111 (39), 14301-14306 (2014).
  10. Rossano, A. J., Kato, A., Minard, K. I., Romero, M. F., Macleod, G. T. Na+ /H+ -exchange via the Drosophila vesicular glutamate transporter (DVGLUT) mediates activity-induced acid efflux from presynaptic terminals. J Physiol. 595 (3), 805-824 (2017).
  11. Sankaranarayanan, S., De Angelis, D., Rothman, J. E., Ryan, T. A. The use of pHluorins for optical measurements of presynaptic activity. Biophys J. 79 (4), 2199-2208 (2000).
  12. Miesenbock, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).
  13. Shaner, N. C., et al. Improved monomeric red, orange and yellow fluorescent proteins derived from Discosoma sp. red fluorescent protein. Nat biotechnol. 22 (12), 1567-1572 (2004).
  14. Thomas, J. A., Buchsbaum, R. N., Zimniak, A., Racker, E. Intracellular pH measurements in Ehrlich ascites tumor cells utilizing spectroscopic probes generated in situ. Biochimica. 18 (11), 2210-2218 (1979).
  15. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  16. Dietzl, G., et al. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448 (7150), 151 (2007).
  17. Dow, J. A., et al. The malpighian tubules of Drosophila melanogaster: a novel phenotype for studies of fluid secretion and its control. J Exp Biol. 197, 421-428 (1994).
  18. Hirata, T., et al. In vivo Drosophilia genetic model for calcium oxalate nephrolithiasis. Am J Physiol Renal Physiol. 303 (11), F1555-F1562 (2012).
  19. Schellinger, J. N., Rodan, A. R. Use of the Ramsay Assay to Measure Fluid Secretion and Ion Flux Rates in the Drosophila melanogaster Malpighian Tubule. J Vis Exp. (105), (2015).
  20. Caldwell, P. C. An investigation of the intracellular pH of crab muscle fibres by means of micro-glass and micro-tungsten electrodes. J Physiol. 126 (1), 169-180 (1954).
  21. Boron, W. F., De Weer, P. Intracellular pH transients in squid giant axons caused by CO2, NH3, and metabolic inhibitors. J Gen Physiol. 67 (1), 91-112 (1976).
  22. Rink, T. J., Tsien, R. Y., Pozzan, T. Cytoplasmic pH and free Mg2+ in lymphocytes. J Cell Biol. 95 (1), 189-196 (1982).
  23. Bizzarri, R., Serresi, M., Luin, S., Beltram, F. Green fluorescent protein based pH indicators for in vivo use: a review. Anal Bioanal Chem. 393 (4), 1107-1122 (2009).
  24. Kneen, M., Farinas, J., Li, Y., Verkman, A. S. Green fluorescent protein as a noninvasive intracellular pH indicator. Biophys J. 74 (3), 1591-1599 (1998).
  25. Raimondo, J. V., Irkle, A., Wefelmeyer, W., Newey, S. E., Akerman, C. J. Genetically encoded proton sensors reveal activity-dependent pH changes in neurons. Front Mol Neurosci. 5, 68 (2012).
  26. Raimondo, J. V., et al. Tight Coupling of Astrocyte pH Dynamics to Epileptiform Activity Revealed by Genetically Encoded pH Sensors. J Neurosci. 36 (26), 7002-7013 (2016).
  27. Bagar, T., Altenbach, K., Read, N. D., Bencina, M. Live-Cell imaging and measurement of intracellular pH in filamentous fungi using a genetically encoded ratiometric probe. Eukaryot Cell. 8 (5), 703-712 (2009).
  28. Gjetting, K. S., Ytting, C. K., Schulz, A., Fuglsang, A. T. Live imaging of intra- and extracellular pH in plants using pHusion, a novel genetically encoded biosensor. J Exp Bot. 63 (8), 3207-3218 (2012).
  29. Greenspan, R. J. . Fly pushing: the theory and practice of Drosophila genetics. , (2004).
  30. Raimondo, J. V., et al. A genetically-encoded chloride and pH sensor for dissociating ion dynamics in the nervous system. Front Cell Neurosci. 7, 202 (2013).
  31. Koivusalo, M., et al. Amiloride inhibits macropinocytosis by lowering submembranous pH and preventing Rac1 and Cdc42 signaling. J Cell Biol. 188 (4), 547-563 (2010).
  32. Terhzaz, S., et al. Mechanism and function of Drosophila capa GPCR: a desiccation stress-responsive receptor with functional homology to human neuromedinU receptor. PloS one. 7 (1), e29897 (2012).
  33. Boyarsky, G., Ganz, M. B., Sterzel, R. B., Boron, W. F. pH regulation in single glomerular mesangial cells. I. Acid extrusion in absence and presence of HCO3. Am J Physiol. 255 (6 Pt 1), C844-C856 (1988).
  34. Chesler, M. The regulation and modulation of pH in the nervous system. Prog Neurobiol. 34 (5), 401-427 (1990).
  35. Rossano, A. J., Chouhan, A. K., Macleod, G. T. Genetically encoded pH-indicators reveal activity-dependent cytosolic acidification of Drosophila motor nerve termini in vivo. J Physiol. 591 (7), 1691-1706 (2013).
  36. Roos, A., Boron, W. F. Intracellular pH. Physiol Rev. 61 (2), 296-434 (1981).
  37. Vaughan-Jones, R. D., Wu, M. L. pH dependence of intrinsic H+ buffering power in the sheep cardiac Purkinje fibre. J Physiol. 425, 429-448 (1990).
  38. Buckler, K. J., Vaughan-Jones, R. D., Peers, C., Nye, P. C. Intracellular pH and its regulation in isolated type I carotid body cells of the neonatal rat. J Physiol. 436, 107-129 (1991).
  39. Bevensee, M. O., Schwiening, C. J., Boron, W. F. Use of BCECF and propidium iodide to assess membrane integrity of acutely isolated CA1 neurons from rat hippocampus. J Neurosci Methods. 58 (1-2), 61-75 (1995).
  40. Arosio, D., et al. Simultaneous intracellular chloride and pH measurements using a GFP-based sensor. Nat Methods. 7 (7), 516-518 (2010).
  41. Wu, Y., Baum, M., Huang, C. L., Rodan, A. R. Two inwardly rectifying potassium channels, Irk1 and Irk2, play redundant roles in Drosophila renal tubule function. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 309 (7), R747-R756 (2015).
  42. Schulte, A., Lorenzen, I., Bottcher, M., Plieth, C. A novel fluorescent pH probe for expression in plants. Plant Methods. 2, 7 (2006).
  43. Shen, Y., Rosendale, M., Campbell, R. E., Perrais, D. pHuji, a pH-sensitive red fluorescent protein for imaging of exo- and endocytosis. J Cell Biol. 207 (3), 419-432 (2014).
  44. Johnson, D. E., et al. Red fluorescent protein pH biosensor to detect concentrative nucleoside transport. J Biol Chem. 284 (31), 20499-20511 (2009).
  45. Mahon, M. J. pHluorin2: an enhanced, ratiometric, pH-sensitive green florescent protein. Adv Biosci Biotechnol. 2 (3), 132-137 (2011).
  46. Li, Y., Tsien, R. W. pHTomato, a red, genetically encoded indicator that enables multiplex interrogation of synaptic activity. Nat Neurosci. 15 (7), 1047-1053 (2012).
  47. Tantama, M., Hung, Y. P., Yellen, G. Imaging intracellular pH in live cells with a genetically encoded red fluorescent protein sensor. J Am Chem Soc. 133 (26), 10034-10037 (2011).
  48. Matlashov, M. E., et al. Fluorescent ratiometric pH indicator SypHer2: Applications in neuroscience and regenerative biology. Biochimica et biophysica acta. 1850 (11), 2318-2328 (2015).
  49. Kogure, T., et al. A fluorescent variant of a protein from the stony coral Montipora facilitates dual-color single-laser fluorescence cross-correlation spectroscopy. Nat biotechnol. 24 (5), 577-581 (2006).
  50. Llopis, J., McCaffery, J. M., Miyawaki, A., Farquhar, M. G., Tsien, R. Y. Measurement of cytosolic, mitochondrial, and Golgi pH in single living cells with green fluorescent proteins. P Natl Acad Sci USA. 95 (12), 6803-6808 (1998).
  51. Poburko, D., Santo-Domingo, J., Demaurex, N. Dynamic regulation of the mitochondrial proton gradient during cytosolic calcium elevations. J Biol Chem. 286 (13), 11672-11684 (2011).
  52. Stornaiuolo, M., et al. KDEL and KKXX retrieval signals appended to the same reporter protein determine different trafficking between endoplasmic reticulum, intermediate compartment, and Golgi complex. Mol Biol Cell. 14 (3), 889-902 (2003).
  53. Makkerh, J. P., Dingwall, C., Laskey, R. A. Comparative mutagenesis of nuclear localization signals reveals the importance of neutral and acidic amino acids. Curr Biol. 6 (8), 1025-1027 (1996).
  54. Zacharias, D. A., Violin, J. D., Newton, A. C., Tsien, R. Y. Partitioning of lipid-modified monomeric GFPs into membrane microdomains of live cells. Science. 296 (5569), 913-916 (2002).
  55. McGuire, R. M., Silberg, J. J., Pereira, F. A., Raphael, R. M. Selective cell-surface labeling of the molecular motor protein prestin. Biochem Biophys Res Comm. 410 (1), 134-139 (2011).

Play Video

Citazione di questo articolo
Rossano, A. J., Romero, M. F. Optical Quantification of Intracellular pH in Drosophila melanogaster Malpighian Tubule Epithelia with a Fluorescent Genetically-encoded pH Indicator. J. Vis. Exp. (126), e55698, doi:10.3791/55698 (2017).

View Video