Summary

Analyse af protein-proteininteraktioner og co-lokalisering mellem komponenter af gap-, stram- og adherensforbindelser i murine mammakirtler

Published: May 30, 2017
doi:

Summary

Intercellulære kryds er krav til brystkirtelspecifikke funktioner og udvikling. Dette manuskript giver en detaljeret protokol til undersøgelsen af ​​protein-protein-interaktioner (PPI'er) og co-lokalisering ved anvendelse af murine brystkirtler. Disse teknikker tillader undersøgelse af dynamikken i den fysiske forbindelse mellem intercellulære krydsninger på forskellige udviklingsstadier.

Abstract

Cellecelleinteraktioner spiller en afgørende rolle for bevarelse af vævsintegriteten og barrieren mellem de forskellige rum i brystkirtlen. Disse interaktioner tilvejebringes af forbindelsesproteiner, der danner sammenfald mellem tilstødende celler. Junctional protein mislokalisering og reducerede fysiske associationer med deres bindende partnere kan resultere i tab af funktion og følgelig til organ dysfunktion. Identifikation af proteinlokalisering og protein-protein-interaktioner (PPI'er) i normale og sygdomsrelaterede væv er således afgørende for at finde nye beviser og mekanismer, der fører til udviklingen af ​​sygdomme eller ændringer i udviklingsstatus. Dette manuskript præsenterer en to-trins metode til evaluering af PPI'er i murine brystkirtler. I protokolafsnit 1 beskrives en fremgangsmåde til at udføre co-immunofluorescens (co-IF) ved anvendelse af antistoffer hævet mod proteiner af interesse efterfulgt af sekundære antistoffer mærket med fluorochromer. Selvom co-IF alleOws til demonstration af nærhed af proteinerne, gør det muligt at studere deres fysiske interaktioner. Derfor gives en detaljeret protokol for co-immunopræcipitation (co-IP) i protokolafsnit 2. Denne metode anvendes til at bestemme de fysiske interaktioner mellem proteiner uden at bekræfte, om disse interaktioner er direkte eller indirekte. I de sidste par år har co-IF og co-IP teknikker vist, at visse komponenter i intercellulære krydsninger samlokaliserer og interagerer sammen, hvilket skaber trinafhængige knudepunkter, der varierer under udvikling af brystkirtlen.

Introduction

Mammekirtlen vokser og udvikler sig primært efter fødslen. Dette organ ombygger sig selv hele tiden i et pattedyr 1 's reproduktive liv. Det voksne brystkirtleepitel består af et indre lag af luminale epithelceller og et ydre lag af basale celler, hovedsageligt sammensat af myopiteliale celler omgivet af en kældermembran 2 . For en god gennemgang af brystkirtels struktur og udvikling kan læseren henvise til Sternlicht 1 . Cellecelleinteraktioner via mellemrum (GJ), stramme (TJ) og adherens (AJ) krydsninger er nødvendige for den normale udvikling og funktion af kirtlen 1 , 3 , 4 , 5 , 6 . Hovedkomponenterne i disse kryds i den murine brystkirtlen er Cx26, Cx30, Cx32 og Cx43 (GJ); Claudin-1, -3, -4 og -7 ogZO-1 (TJ); Og E-cadherin, P-cadherin og β-catenin (AJ) 7 , 8 . Ekspressionsniveauerne af disse forskellige forbindelsesproteiner varierer på en trinafhængig måde under udvikling af brystkirtler, hvilket foreslår differentialcellecelleinteraktionskrav 9 . GJ, TJ og AJ er strukturelt og funktionelt forbundet og sammenkobler andre strukturelle eller regulatoriske proteiner til de tilstødende steder i tilstødende celler og derved skaber en forbindelsesnekke 10 . Sammensætningen af ​​den forbindelsesmæssige nexus kan påvirke brodannelsen med det underliggende cytoskelet såvel som nexuspermeabilitet og stabilitet og kan følgelig påvirke funktionen af ​​kirtlen 8 , 9 , 10 , 11 . Komponenterne i intercellulære krydsninger, der befinder sig i krydsede nexuser eller interagerer med hinanden ved difHjerteudviklingsstadier af udvikling af brystkirtler blev analyseret for nylig ved anvendelse af co-immunofluorescens (co-IF) og co-immunpræcipitation (co-IP) 9 . Mens andre teknikker tillader evaluering af den funktionelle association mellem proteiner, er disse metoder ikke præsenteret i dette manuskript.

Da proteiner kun virker alene for at fungere, er det vigtigt for mange forskere at studere protein-protein-interaktioner (PPI'er), såsom signaltransduceringer og biokemiske kaskader, og kan give væsentlig information om proteinernes funktion. Co-IF og mikroskopisk analyse hjælper med at evaluere et par proteiner, der deler det samme subcellulære rum. Antallet af mål er imidlertid begrænset af antistofferne, som skal opdrættes i forskellige dyr og ved adgangen til et konfokalt mikroskop udstyret med forskellige bølgelængderlasere og en spektral detektor til multiplexering. Co-IP bekræfter eller afslører høj affinitet fysiske interaktioner betwEn to eller flere proteiner, der ligger inden for et proteinkompleks. På trods af udviklingen af ​​nye teknikker, såsom fluorescensresonansenergioverførsel (FRET) 12 og nærhedsligeringsassay (PLA) 13 , som samtidig kan detektere lokalisering og interaktioner af proteiner, forbliver co-IP en passende og overkommelig teknik til undersøgelse af interaktioner mellem Endogene proteiner.

Den trinvise fremgangsmåde beskrevet i dette manuskript vil lette undersøgelsen af ​​proteinlokalisering og PPI'er og påpege faldgruber for at undgå, når man studerer endogene PPI'er i brystkirtlerne. Metoden starter med præsentationen af ​​de forskellige bevarelsesprocedurer for de krævede væv til hver teknik. Del 1 præsenterer, hvordan man studerer protein co-lokalisering i tre trin: i) snittet af brystkirtler, ii) dobbelt- eller tredobbelt mærkning af forskellige proteiner ved hjælp af co-IF-teknikken, og iii) billeddannelsen afProtein lokalisering. Del 2 viser, hvordan man udfælder et endogent protein og identificerer dets interagerende proteiner i tre trin: i) lysatpræparation, ii) indirekte proteinimmunpræcipitation og iii) bindingspartneridentifikation ved SDS-PAGE og Western blot. Hvert trin i denne protokol er optimeret til gnavere af brystkirtler og genererer højkvalitetsspecifikke og reproducerbare resultater. Denne protokol kan også bruges som udgangspunkt for PPI-studier i andre væv eller cellelinier.

Protocol

Alle dyreprotokoller anvendt i denne undersøgelse blev godkendt af University Animal Care Committee (INRS-Institut Armand-Frappier, Laval, Canada). 1. Identifikation af Protein Co-lokalisering Fra væv til mikroskopiske dias BEMÆRK: Væv og sektioner skal håndteres på tøris. Punk kødkirtlen fra et dyr (for en fuldstændig beskrivelse af denne procedure henvises til Plante et al. ) 14 . Embed det udsk…

Representative Results

For at bestemme, om GJ, AJ og TJ komponenter kan interagere sammen i brystkirtlen, blev co-IF assays først udført. Cx26, et GJ-protein og β-Catenin, et AJ-protein, blev probet med specifikke antistoffer og blev afsløret ved henholdsvis henholdsvis fluorofore-konjugerede mus-647 (grøn, pseudocolor) og gede-568 (rød) antistoffer ( figur 1B og C ) . Data viste, at de co-lokaliserer ved cellemembranen af ​​epithelceller i muskirtlen på laktationsd…

Discussion

Cell-celle interaktioner via kryds er nødvendige for den korrekte funktion og udvikling af mange organer, såsom brystkirtlen. Undersøgelser har vist, at forbindelsesproteiner kan regulere funktionen og stabiliteten af ​​hinanden og aktivere signaltransduktion ved at tinde hinanden ved cellemembranen 10 . De protokoller, der er præsenteret i det nuværende manuskript, har givet interessante fund om sammenfaldende protein-differentialekspression, lokalisering og interaktion under normal udv…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

IP finansieres af et stipendium fra naturvidenskab og ingeniørforskning fra Canada (NSERC # 418233-2012); Et Fonds de Recherche du Québec-Santé (FRQS), en Quebec Breast Cancer Foundation karrierepris og et Leader Founds-tilskud fra Canadian Foundation for Innovation grant. ED modtog et stipendium fra Fondation Universitaire Armand-Frappier.

Materials

Mice strain and stage  St. Constant, Quebec, Canada C57BL/6 Femals; pregnancy day 18 (P18) and lactation day 14 (L14), Charles River Canada 
PBS 10X (stock) 1)      Dissolve 80g NaCl (F.W.: 58.44), 2g KCl (F.W. 74.55), 26.8g Na2HPO4•7H2O (F.W. 268.07) and 2.4g KH2PO4 (F.W.:136.09) in 800ml distilled water. 
2)      Adjust the PH to 7.4 
3)      Add water to reach to the 1 litre final volume. 
TBS 10X (stock) 1)      Dissolve 60.5g TRIS, 87.6g NaCl in 800ml distilled water. 
2)      Adjust the PH to 7.5 
3)      Add water to reach to the 1 litre final volume. 
Name Company Catalog Number Comments
Part 1-Immunofluorescence
Freezing media VWR International, Ville Mont-Royal, QC, Canada 95067-840 VMR frozen sections compound 
Microtome Mississauga, ON, Canada 956640 Microm HM525, Thermo fisher scientific HM525 NX Cryostat 115V 60Hz
Blades C.L. Sturkey, Inc. Les Produits Scientifiques ESBE St-Laurent, QC, Canada  BLM1001C High profile gold coated blades
Pap pen Cedarlane, Burlington, ON, Canada 8899 Super PAP Pen, Thermo fisher scientific
Microscopic slides Fisher Scientific, Burlington, ON, Canada 12-550-15 Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides
Formaldehyde BioShop Canada Inc, Burlington, ON, Canada FOR201.1 Forlmadehyde
Bovine Serum Albumin (BSA) Santa Cruz Biotechnology, Inc, California, USA
Blocking solution 3% BSA in TBS
Wash solution TBS-Tween 20 0.1%
Polysorbate 20 Oakville, ON, Canada P 9416 Tween 20, Sigma-Aldrich
Mounting media Cedarlane, Burlington, ON 17984-25(EM) Fluoromount-G
First & secondary antibodies  Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in Column D E-Cadherin (4A2) Mouse mAb (#14472s) 1/50 (Cell Signaling) with anti-mouse IgG Fab2 Alexa Fluor 555 (#4409s), Cell Signaling 
First & secondary antibodies  Life technologies, Waltham, MA, USA & Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in Column D Claudin-7 (#34-9100) 1/100 (Life Technologies) with anti-rabbit IgG Fab2 Alexa Fluor 488 (#4412s) (Cell Signaling) 
First & secondary antibodies  Santa Cruz Biotechnology, Inc, California, USA; Fischer Scientific, Burlington, ON, Canada  Mentioned in Column D β-Catenin Antibody (C-18): sc-1496 (SANTA CRUZ) with anti-Goat IgG (H+L) Alexa Fluor 568 (#A11057), Molecular Probe (Fisher Scientific)
First & secondary antibodies  Life technologies, Waltham, MA, USA & Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in Column D Connexin26  (#33-5800) 1/75 (Life Technologies) with anti-mouse IgG Fab2 Alexa Fluor 647 (#4410s) 
Nuclei stain Fisher Scientific, Burlington, ON, Canada D1306 DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) 1/1000 in PBS
Fluorescent microscope Nikon Canada, Mississauga, On, Canada Nikon A1R+ confocal microscopic laser equipped with a spectral detector 
Software of IF images analysis Nikon Canada, Mississauga, On, Canada NIS-elements software (version 4)
Name Company Catalog Number Comments
Part 2-Immunoprecipitation
Triple-detergent Lysis buffer (100ml) pH=8.0  1) Mix 50mM TRIS (F.W. :121.14), 150mM NaCl (F.W. :58.44), 0.02% Sodium Azide, 0.1% SDS, 1% NONIdET P40, 0.5% Sodium Deoxycholate in 80ml distilled H2O. 
2) Adjust the PH to 8.0 with HCl 6N (~0.5ml).
3) Adjust the volume to 100ml. Keep it in fridge. 
At the day of protein extraction, use 1/100 NaVo3, 1/100 protease/phosphatase inhibitor and 1/25 NAF in calculated amount of Triple detergent lysis buffer:
Sodium Fluorid (stock) solution 1.25M (F.W. 41.98), Sodium Orthovanadate (stock) Solution 1M (F.W.: 183.9)
Protease/phosphatase inhibitor Fisher Scientific, Burlington, ON 78441 Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail, EDTA-free (100X)
Protein dosage Thermo Scientific, Rockford, Illinois, USA 23225 Pierce BCA protein assay kit 
Tissue grinder Fisher Scientific, Burlington, ON FTH-115 Power 125, Model FTH-115
Magnetic beads and stand Millipore, Etobicoke, ON, Canada PureProteome Protein G Magnetic Bead System (LSKMAGG02)
Wash solution for IP PBS or PBS-Tween20 0.1% depending to the step
Primary antibodies for immunoprecipitation Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in coulmn D IgG Rabbit (rabbit (DA1E) mAb IgG Isotype control (#3900s) (Cell Signaling) 0.5 µl/200 µl
Primary antibodies for immunoprecipitation Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in coulmn D IgG Mouse mouse (G3A1) mAb IgG Isotype control (#5415s) (Cell Signaling) 0.5 µl/200 µl 
Primary antibodies for immunoprecipitation Sigma-Aldrich, Oakville, ON, Canada Mentioned in coulmn D Connexin43 (#C6219) (Sigma-Aldrich) 4 µl/200 µl 
Primary antibodies for immunoprecipitation Cell Signaling, Beverly, MA, USA Mentioned in coulmn D E-cadherin (4A2) Mouse mAb (#14472s) (Cell Signaling) 1 µl/200 µl 
Laemmli buffer  BIO-RAD, Mississauga, Ontario, Canada 1610747 4x Laemmli Sample Buffer (Add β-mercaptoethanol following manufacturer recommendation)
Acidic glycine  Fisher Scientific, Burlington, ON PB381-5 0.2 M glycine; adjust pH=2.5 with HCl 
Tris  Fisher Scientific, Burlington, ON BP152-1 1 M (pH=8) 
SDS-PAGE acrylamide gels  BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1610180 -5 TGX Stain-Free FastCast Acrylamide Solutionss (7.8%, 10%, 12%)
Running buffer 10x  BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1704272 Tris 30.3g/glycine 144.1g /SDS 10g in 1 litre distilled water
Membranes BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1704272 PVDF membranes, Trans-Blot Turbo RTA Mini PVDF Transfer Kit
Transfer method BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1704155 Trans-Blot Turbo Transfer System
Dry Milk Smucker Food of Canada Co, Markham, ON, Canada Fat Free Instant Skim Milk Powder, Carnation
Blocking solution for blots 5% dry milk in TBS-Tween 20 0.1%
Washing solutions for blots TBS-Tween 20 0.1%
Primary and secondary antibodies for blots (10ml) Sigma-Aldrich, Oakville, Ontario & Abcam, Toronto, ON, Canada Mentioned in column D Connexin43 (#C6219) (Sigma-Aldrich) 1/2500 with HRP-conjugated Veriblot for IP secondary antibody (ab131366) 1/5000 (Abcam, Toronto, ON, Canada)
Primary and secondary antibodies for blots (10ml) Cell Signaling, Beverly, MA, USA & Abcam, Toronto, ON, Canada Mentioned in column D E-cadherin (24E10) rabbit mAb 1/1000 (#3195s) (Cell Signaling) 1/1000 with HRP-conjugated Veriblot for IP secondary antibody  (ab131366) 1/5000 (Abcam, Toronto, ON, Canada)
Primary and secondary antibodies for blots (10ml) Life technologies, Waltham, MA, USA & Abcam, Toronto, ON, Canada Mentioned in column D Claudin-7 (#34-9100) (Life technologies) 1/1000 with HRP-conjugated Veriblot for IP secondary antibody (ab131366)  1/5000 (Abcam, Toronto, ON, Canada)
Primary and secondary antibodies for blots (10ml) Life technologies, Waltham, MA, USA & Abcam, Toronto, ON, Canada Mentioned in column D Claudin3  (#34-1700) (Life technologies) 1/1000 with HRP-conjugated Veriblot for IP secondary antibody  (ab131366) 1/5000 (Abcam, Toronto, ON, Canada)
Luminol solution for signal detection on blots BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1705061  Clarity Western ECL Blotting Substrate 
Imaging blots BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada 1708280 ChemiDoc MP imaging system
Analayzing blots BIO-RAD, Mississauga, ON, Canada ImageLab 5.2 software 

Riferimenti

  1. Sternlicht, M. D. Key stages in mammary gland development: the cues that regulate ductal branching morphogenesis. Breast Cancer Res. 8 (1), 201 (2006).
  2. Oakes, S. R., Hilton, H. N., Ormandy, C. J. The alveolar switch: coordinating the proliferative cues and cell fate decisions that drive the formation of lobuloalveoli from ductal epithelium. Breast Cancer Res. 8 (2), 207 (2006).
  3. Stein, T., Hilton, H. N., Ormandy, C. J. The alveolar switch: coordinating the proliferative cues and cell fate decisions that drive the formation of lobuloalveoli from ductal epithelium. Breast Cancer Res. 8 (2), 207 (2006).
  4. El-Sabban, M. E., Abi-Mosleh, L. F., Talhouk, R. S. Developmental regulation of gap junctions and their role in mammary epithelial cell differentiation. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 8 (4), 463-473 (2003).
  5. Hennighausen, L., Robinson, G. W. Information networks in the mammary gland. Nat Rev Mol Cell Biol. 6 (9), 715-725 (2005).
  6. Gudjonsson, T., Adriance, M. C., Sternlicht, M. D., Petersen, O. W., Bissell, M. J. Myoepithelial cells: their origin and function in breast morphogenesis and neoplasia. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 10 (3), 261-272 (2005).
  7. Nguyen, D. A., Neville, M. C. Tight junction regulation in the mammary gland. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 3 (3), 233-246 (1998).
  8. Stewart, M. K., Simek, J., Laird, D. W. Insights into the role of connexins in mammary gland morphogenesis and function. Reproduction. 149 (6), R279-R290 (2015).
  9. Dianati, E., Poiraud, J., Weber-Ouellette, A., Connexins Plante, I., E-cadherin, Claudin-7 and beta-catenin transiently form junctional nexuses during the post-natal mammary gland development. Dev Biol. 416 (1), 52-68 (2016).
  10. Derangeon, M., Spray, D. C., Bourmeyster, N., Sarrouilhe, D., Herve, J. C. Reciprocal influence of connexins and apical junction proteins on their expressions and functions. Biochim Biophys Acta. 1788 (4), 768-778 (2009).
  11. Hernandez-Blazquez, F. J., Joazeiro, P. P., Omori, Y., Yamasaki, H. Control of intracellular movement of connexins by E-cadherin in murine skin papilloma cells. Exp Cell Res. 270 (2), 235-247 (2001).
  12. Kiyokawa, E., Hara, S., Nakamura, T., Matsuda, M. Fluorescence (Forster) resonance energy transfer imaging of oncogene activity in living cells. Cancer Sci. 97 (1), 8-15 (2006).
  13. Gustafsdottir, S. M., et al. Proximity ligation assays for sensitive and specific protein analyses. Anal Biochem. 345 (1), 2-9 (2005).
  14. Plante, I., Stewart, M. K., Laird, D. W. Evaluation of mammary gland development and function in mouse models. J Vis Exp. (53), (2011).
  15. Green, M. R., Sambrook, J., Sambrook, J. . Molecular cloning: a laboratory manual. , (2012).
  16. Taylor, S. C., Berkelman, T., Yadav, G., Hammond, M. A defined methodology for reliable quantification of Western blot data. Mol Biotechnol. 55 (3), 217-226 (2013).
  17. Oxford, E. M., et al. Molecular composition of the intercalated disc in a spontaneous canine animal model of arrhythmogenic right ventricular dysplasia/cardiomyopathy. Heart Rhythm. 4 (9), 1196-1205 (2007).
  18. Wang, X., Li, S. Protein mislocalization: mechanisms, functions and clinical applications in cancer. Biochim Biophys Acta. 1846 (1), 13-25 (2014).
  19. Bertocchi, C., et al. Nanoscale architecture of cadherin-based cell adhesions. Nat Cell Biol. 19 (1), 28-37 (2017).
  20. Bajar, B. T., Wang, E. S., Zhang, S., Lin, M. Z., Chu, J. A Guide to Fluorescent Protein FRET Pairs. Sensors (Basel). 16 (9), (2016).
  21. Fredriksson, K., et al. Proteomic analysis of proteins surrounding occludin and claudin-4 reveals their proximity to signaling and trafficking networks. PLoS One. 10 (3), e0117074 (2015).
  22. Weibrecht, I., et al. Proximity ligation assays: a recent addition to the proteomics toolbox. Expert Rev Proteomics. 7 (3), 401-409 (2010).
  23. Malovannaya, A., et al. Streamlined analysis schema for high-throughput identification of endogenous protein complexes. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (6), 2431-2436 (2010).
check_url/it/55772?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dianati, E., Plante, I. Analysis of Protein-protein Interactions and Co-localization Between Components of Gap, Tight, and Adherens Junctions in Murine Mammary Glands. J. Vis. Exp. (123), e55772, doi:10.3791/55772 (2017).

View Video