Summary

Microscopie photoacoustique à résolution acoustique et optique à commutation commutable pour<em> In vivo</em> Imagerie vasculaire de sang de petit animal

Published: June 26, 2017
doi:

Summary

Ici, on démontre un système de résolution acoustique (AR) et un système de microscopie photoacoustique à résolution optique (OR) (AR-OR-PAM) capable à la fois d'imagerie haute résolution à faible profondeur et d'imagerie tissulaire profonde à faible résolution sur le même échantillon in vivo .

Abstract

La microscopie photoacoustique (PAM) est une modalité d'imagerie invivo à croissance rapide qui combine à la fois l'optique et l'échographie, offrant une pénétration au-delà du chemin libre moyen optique (~ 1 mm de peau) à haute résolution. En combinant le contraste d'absorption optique avec la résolution spatiale élevée de l'échographie en une seule modalité, cette technique peut pénétrer les tissus profonds. Les systèmes de microscopie photoacoustique peuvent avoir une faible résolution acoustique et une sonde profonde ou une résolution optique élevée et une sonde peu profonde. Il est difficile de réaliser une résolution spatiale élevée et une pénétration de grande profondeur avec un système unique. Ce travail présente un système AR-OR-PAM capable à la fois d'imagerie à haute résolution à des profondeurs peu profondes et l'imagerie en tissu profond à faible résolution du même échantillon in vivo . Une résolution latérale de 4 μm avec une profondeur d'image de 1,4 mm utilisant une focalisation optique et une résolution latérale de 45 μm avec une profondeur d'image de 7,8 mm en utilisant la focalisation acoustique ont été couronnées de succèsA démontré l'utilisation du système combiné. Ici, l'imagerie vasculaire de sang de petit animal in vivo est réalisée pour démontrer sa capacité d'imagerie biologique.

Introduction

Les modalités d'imagerie optique haute résolution, telles que la tomographie par cohérence optique, la microscopie confocale et la microscopie multiphotonique, présentent de nombreux avantages. Cependant, la résolution spatiale diminue de manière significative à mesure que la profondeur d'imagerie augmente. Ceci est dû à la nature diffuse du transport de lumière dans les tissus mous 1 , 2 . L'intégration de l'excitation optique et de la détection par ultrasons fournit une solution pour surmonter le défi de l'imagerie optique haute résolution dans les tissus profonds. La microscopie photoacoustique (PAM) est une telle modalité qui peut fournir une image plus profonde que d'autres modalités d'imagerie optique. Il a été appliqué avec succès à des images structurales, fonctionnelles, moléculaires et cellulaires in vivo 3 , 4 , 5 , 6 , 7 , 8 </sup> , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 en combinant le contraste d'absorption optique fort avec la résolution spatiale élevée des ultrasons.

Dans PAM, une impulsion laser courte irradie le tissu / échantillon. L'absorption de la lumière par les chromophores ( par exemple, la mélanine, l'hémoglobine, l'eau, etc. ) entraîne une augmentation de la température, ce qui entraîne la production d'ondes de pression sous forme d'ondes acoustiques (ondes photoacoustiques). Les ondes photoacoustiques générées peuvent être détectées par un transducteur à ultrasons large bande à l'extérieur de la limite tissulaire. En utilisant une faible focalisation acoustique optique et étanche, l'imagerie des tissus profonds peut être obtenue dans la microscopie photoacoustique à résolution acoustique (AR-PAM) 14 , 15 , 16 . En AR-PAM, une résolution latérale de 45 μm et une profondeur d'imagerie jusqu'à 3 mm ont été démontrées 15 . Afin de résoudre des capillaires individuels (~ 5 μm) acoustiquement, des transducteurs à ultrasons fonctionnant à des fréquences centrales de 400 MHz sont requis. À de telles fréquences élevées, la profondeur de pénétration est inférieure à 100 μm. Le problème causé par la mise au point acoustique étroite peut être résolu en utilisant une focalisation optique étanche. La microscopie photoacoustique à résolution optique (OR-PAM) est capable de résoudre des capillaires simples, ou même une seule cellule 17 , et une résolution latérale de 0,5 μm a été réalisée 18 , 19 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24 . L'utilisation d'un nanojet photonique peut aider à obtenir une résolution au-delà de la résolution limitée par diffractionN 25 , 26 . Dans OR-PAM, la profondeur de pénétration est limitée en raison de la focalisation de la lumière, et elle peut image jusqu'à ~ 1,2 mm à l'intérieur du tissu biologique 23 . Par conséquent, AR-PAM peut l'image plus profonde, mais avec une résolution plus basse, et OR-PAM peut image avec une très haute résolution, mais avec une profondeur d'imagerie limitée. La vitesse d'imagerie du système AR et OR-PAM dépend principalement du taux de répétition des impulsions de la source laser 27 .

La combinaison de AR-PAM et de OR-PAM sera d'un grand bénéfice pour les applications nécessitant à la fois une image haute résolution et une image plus profonde. De petits efforts ont été faits pour combiner ces systèmes ensemble. Habituellement, deux scanners d'imagerie différents sont utilisés pour l'imagerie, ce qui nécessite que l'échantillon soit déplacé entre les deux systèmes, ce qui rend difficile l'exécution de l' imagerie in vivo . Cependant, l'imagerie hybride avec AR et OR PAM permet l'imagerie avec des résolutions évolutives aNd profondeur. Dans une approche, un faisceau de fibres optiques est utilisé pour délivrer de la lumière pour les AR et OR PAM. Dans cette approche, deux lasers séparés (un laser à haute énergie à 570 nm pour l'AR et un laser à faible intensité et à répétition élevée à 532 nm pour l'OR) sont utilisés, rendant le système incommode et coûteux 28 . La longueur d'onde laser OR-PAM est fixe, et de nombreuses études, par exemple sur la saturation en oxygène, ne sont pas possibles en utilisant ce système combiné. Des études comparatives entre AR et OR PAM ne sont également pas possibles en raison de la différence de longueur d'onde laser entre l'AR et l'OR. En outre, AR-PAM utilise l'éclairage de champ lumineux; Par conséquent, les signaux photoacoustiques forts de la surface de la peau limitent la qualité de l'image. Pour cette raison, le système ne peut pas être utilisé pour de nombreuses applications de bioimagerie. Dans une autre approche pour exécuter AR et OR PAM, la mise au point optique et ultrason est décalée, ce qui rend la mise au point de la lumière et la focalisation ultrasonore non alignées. Ainsi, la qualité de l'image n'est pas optimale <suP class = "xref"> 29. À l'aide de cette technique, AR-PAM et OR-PAM ne peuvent atteindre que des résolutions de 139 μm et 21 μm, ce qui en fait un système à faible résolution. Une autre approche, qui comprend la modification de la fibre optique et de l'optique collimatante, a été signalée pour basculer entre AR et OR PAM, ce qui rend le processus d'alignement difficile 30 . Dans tous ces cas, AR-PAM n'a pas utilisé d'éclairage de champ sombre. L'utilisation de l'illumination en champ sombre peut réduire la génération de signaux photoacoustiques forts de la surface de la peau. Par conséquent, l'imagerie des tissus profonds peut être réalisée à l'aide d'un éclairage en forme d'anneau, car la sensibilité de détection des signaux photoacoustiques profonds sera plus élevée que celle de l'éclairage de champ lumineux.

Ce travail rapporte un système d'imagerie AR et OR PAM (AR-OR-PAM) commutable capable à la fois d'imagerie haute résolution et d'imagerie en profondeur de faible résolution du même échantillon, en utilisant le même laser et scanner pour les deux systèmesEms. La performance du système AR-OR-PAM a été caractérisée par la détermination de la résolution spatiale et de la profondeur d'imagerie en utilisant des expériences fantômes. L' imagerie vasculaire sanguine in vivo a été effectuée sur une oreille de souris pour démontrer sa capacité d'imagerie biologique.

Protocol

Toutes les expériences sur les animaux ont été effectuées conformément aux règlements et aux lignes directrices approuvés par le Comité institutionnel pour les soins et l'utilisation des animaux de l'Université technologique de Nanyang, Singapour (Numéro de protocole animal ARF-SBS / NIE-A0263). 1. Système AR-OR-PAM ( Figure 1 ) Configuration du système: AR-PAM Utilisez un système laser accordable à la n…

Representative Results

Le schéma du système AR-OR-PAM est illustré à la figure 1 . Dans cette configuration, tous les composants ont été intégrés et assemblés dans une configuration de cage optique. L'utilisation d'un système de cage rend la tête de balayage AR-OR-PAM compacte et facilement assemblée, alignée et intégrée sur une seule étape de balayage. Le balayage en trame continu bidimensionnel…

Discussion

En conclusion, un système commutable AR et OR PAM qui permet d'obtenir à la fois une image haute résolution à des profondeurs d'imagerie inférieures et une imagerie basse résolution à des profondeurs d'imagerie plus élevées a été développé. La résolution latérale et la profondeur d'imagerie du système commutable ont été déterminées. Les avantages de ce système PAM commutable comprennent: (1) l'imagerie haute résolution à l'aide d'une focalisation optique étanche; (2) l…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs souhaitent reconnaître le soutien financier d'une subvention de niveau 2 financée par le ministère de l'Éducation à Singapour (ARC2 / 15: M4020238). Les auteurs souhaiteraient également remercier M. Chow Wai Hoong Bobby pour l'aide de l'atelier de mécanique.

Materials

Q-switched Nd:YAG laser Edgewave BX80-2-L Pump laser 
Credo-High Repetition Rate Dye Laser Spectra physics CREDO-DYE-N Dye laser
Precision Linear Stage Physik Instrumente PLS 85  XY raster scanning stage
Translation stage Physik Instrumente VT 80  Confocal determine
Mounted Silicon photodiode Thorlabs SM05PD1A Triggering/Pulse variation
Motorized continuous Rotational stage  Thorlabs CR1/M-Z7 Diverting laser beam
Mounted Continuously Variable ND Filter Thorlabs NDC-50C-4M Intensity variable
Fiber Patch Cable Thorlabs M29L01 Multimode fiber
Microscope objective Newport M-10X Objective 
XY translating mount Thorlabs CXY1 Translating mount
Plano convex lens Thorlabs LA1951 Collimating lens
Conical lens  Altechna APX-2-B254 Ring shape beam
Translation stage Thorlabs CT1 Translating stage
Optical condenser Home made
Ultrasonic transducer Olympus-NDT V214-BB-RM 50MHz transducer
Plano concave lens Thorlabs LC4573 Acoustic lens
Pulser/Receiver Olympus-NDT 5073PR Pulse echo amplifier 
Mounted standard iris Thorlabs ID12/M Beam shaping
Plano convex lens Thorlabs LA4327 Condenser lens
Mounted precision pinhole Thorlabs P50S Spatial filtering
Single mode fiber patch cable Thorlabs P1-460B-FC-1 Single mode fiber
Fiber coupler Newport F-91-C1 Single mode coupling
Achromatic doublet lens Edmund Optics 32-317 Achromatic doublet
Protected silver elliptical mirror Thorlabs PFE10-P01 Mirror
Right angle kinematic mirror mount Thorlabs KCB1 Mirror mount
Z-Axis Translation Mount Thorlabs SM1Z z translator
Lens tube Thorlabs SM05L10
UV Fused Silica Right-Angle Prism Thorlabs PS615 Right angle prism
Rhomboid prism Edmund Optics 47-214 Shear wave
Dimethylpolysiloxane Sigma Aldrich DMPS1M Silicon oil
Amplifier Mini Circuits ZFL-500LN Amplifier
16 bit high speed digitizer Spectrum M4i.4420 Data acquisition card
Oscilloscope Agilent Technologies DS06014A
Mice  InVivos Pte.Ltd ICR Animal model
Ultrasound gel  Progress/parker acquasonic gel PA-GEL-CLEA-5000 Acoustic coupling
Water tank Home made
Translation stage Homemade Switching AR-OR
Gold nanoparticles Sigma Aldrich 742031 Lateral resolution
Sterile ocular ointment Alcon Duratears Animal imaging
1951 USAF resolution test target Edmund Optics 38257 Confocal alignment
Data acquisition software National Instrument Labview Home made software using Labview
Image Processing software Mathworks Matlab Home made program using Matlab

Riferimenti

  1. Hu, S., Wang, L. V. Photoacoustic imaging and characterization of the microvasculature. J Biomed Opt. 15, 011101-01-011101-15 (2010).
  2. Ntziachristos, V. Going deeper than microscopy: the optical imaging frontier in biology. Nat Methods. 7 (8), 603-614 (2010).
  3. Wang, L. V., Yao, J. A practical guide to photoacoustic tomography in the life sciences. Nat Methods. 13, 627-638 (2016).
  4. Zhou, Y., Yao, J., Wang, L. V. Tutorial on photoacoustic tomography. J Biomed Opt. 21 (6), 061007 (2016).
  5. Upputuri, P. K., Sivasubramanian, K., Mark, C. S. K., Pramanik, M. Recent Developments in Vascular Imaging Techniques in Tissue Engineering and Regenerative Medicine. BioMed Res Intl. 2015, (2015).
  6. Yao, J., Wang, L. V. Photoacoustic Brain Imaging: from Microscopic to Macroscopic Scales. Neurophotonics. 1 (1), 011003-1-011003-13 (2014).
  7. Wang, L. V., Hu, S. Photoacoustic Tomography: In Vivo Imaging from Organelles to Organs. Science. 335 (6075), 1458-1462 (2012).
  8. Beard, P. Biomedical photoacoustic imaging. Interface Focus. 1 (4), 602-631 (2011).
  9. Pan, D. Molecular photoacoustic imaging of angiogenesis with integrin-targeted gold nanobeacons. FASEB J. 25 (3), 875-882 (2011).
  10. Cai, X., Kim, C., Pramanik, M., Wang, L. V. Photoacoustic tomography of foreign bodies in soft biological tissue. J Biomed Opt. 16 (4), 046017 (2011).
  11. Pan, D. Near infrared photoacoustic detection of sentinel lymph nodes with gold nanobeacons. Biomaterials. 31 (14), 4088-4093 (2010).
  12. Wang, L. V. Multiscale photoacoustic microscopy and computed tomography. Nat. Photon. 3 (9), 503-509 (2009).
  13. Zhang, E. Z., Laufer, J. G., Pedley, R. B., Beard, P. C. In vivo high-resolution 3D photoacoustic imaging of superficial vascular anatomy. Phys. Med. Biol. 54 (4), 1035-1046 (2009).
  14. Park, S., Lee, C., Kim, J., Kim, C. Acoustic resolution photoacoustic microscopy. Biomed.l Eng. Lett. 4 (3), 213-222 (2014).
  15. Zhang, H. F., Maslov, K., Stoica, G., Wang, L. V. Functional photoacoustic microscopy for high-resolution and noninvasive in vivo imaging. Nat. Biotechnol. 24 (7), 848-851 (2006).
  16. Maslov, K., Stoica, G., Wang, L. V. In vivo dark-field reflection-mode photoacoustic microscopy. Opt Lett. 30 (6), 625-627 (2005).
  17. Strohm, E. M., Moore, M. J., Kolios, M. C. Single Cell Photoacoustic Microscopy: A Review. IEEE J Sel Top Quantum Electron. 22 (3), 6801215 (2016).
  18. Kim, J. Y., Lee, C., Park, K., Lim, G., Kim, C. Fast optical-resolution photoacoustic microscopy using a 2-axis water-proofing MEMS scanner. Sci Rep. 5, 07932 (2015).
  19. Matthews, T. P., Zhang, C., Yao, D. K., Maslov, K., Wang, L. V. Label-free photoacoustic microscopy of peripheral nerves. J Biomed Opt. 19 (1), 016004 (2014).
  20. Hai, P., Yao, J., Maslov, K. I., Zhou, Y., Wang, L. V. Near-infrared optical-resolution photoacoustic microscopy. Opt Lett. 39 (17), 5192-5195 (2014).
  21. Danielli, A. Label-free photoacoustic nanoscopy. J Biomed Opt. 19 (8), 086006 (2014).
  22. Zhang, C. Reflection-mode submicron-resolution in vivo photoacoustic microscopy. J Biomed Opt. 17 (2), 020501 (2012).
  23. Hu, S., Maslov, K., Wang, L. V. Second-generation optical-resolution photoacoustic microscopy with improved sensitivity and speed. Opt Lett. 36 (7), 1134-1136 (2011).
  24. Maslov, K., Zhang, H. F., Hu, S., Wang, L. V. Optical-resolution photoacoustic microscopy for in vivo imaging of single capillaries. Opt Lett. 33 (9), 929-931 (2008).
  25. Upputuri, P. K., Krishnan, M., Pramanik, M. Microsphere enabled sub-diffraction limited optical resolution photoacoustic microscopy: a simulation study. J Biomed Opt. 22, 045001 (2017).
  26. Upputuri, P. K., Wen, Z. B., Wu, Z., Pramanik, M. Super-resolution photoacoustic microscopy using photonic nanojets: a simulation study. J Biomed Opt. 19 (11), 116003 (2014).
  27. Allen, T. J. Novel fibre lasers as excitation sources for photoacoustic tomography and microscopy et al. Proc SPIE. , 97080W (2016).
  28. Xing, W., Wang, L., Maslov, K., Wang, L. V. Integrated optical-and acoustic-resolution photoacoustic microscopy based on an optical fiber bundle. Opt Lett. 38 (1), 52-54 (2013).
  29. Estrada, H., Turner, J., Kneipp, M., Razansky, D. Real-time optoacoustic brain microscopy with hybrid optical and acoustic resolution. Laser Phys Lett. 11 (4), 045601 (2014).
  30. Jeon, S., Kim, J., Kim, C. In vivo switchable optica- and acoustic – resolution photoacoustic microscopy. Proc SPIE. , 970845 (2016).
  31. Song, W. Fully integrated reflection-mode photoacoustic, two-photon, and second harmonic generation microscopy in vivo. Sci Rep. 6, 32240 (2016).
  32. Park, J., et al. Delay-multiply-and-sum-based synthetic aperture focusing in Photoacoustic microscopy. J Biomed Opt. 21 (3), 036010-10 (2016).
  33. . ANSI Standard Z136.1-2000. American National Standard for Safe Use of Lasers. , (2000).
  34. Moothanchery, M., Pramanik, M. Performance Characterization of a Switchable Acoustic Resolution and Optical Resolution Photoacoustic Microscopy System. Sensors. 17 (2), 357 (2017).
check_url/it/55810?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Moothanchery, M., Sharma, A., Pramanik, M. Switchable Acoustic and Optical Resolution Photoacoustic Microscopy for In Vivo Small-animal Blood Vasculature Imaging. J. Vis. Exp. (124), e55810, doi:10.3791/55810 (2017).

View Video