Summary

Единая методологическая основа для исследования везикулярной шванномы

Published: June 20, 2017
doi:

Summary

Цель этого протокола состоит в том, чтобы наметить сбор и обработку человеческих хирургических образцов для нескольких нисходящих приложений в вестибулярной шванноме и исследованиях клеток Шванна.

Abstract

Вестибулярные шванномы являются наиболее распространенными новообразованиями угла мозжечка, составляя 6-8% всех интракраниальных ростков. Хотя эти опухоли вызывают сенсорную потерю слуха у 95% пациентов, молекулярные механизмы, лежащие в основе этой потери слуха, остаются неуловимыми. В этой статье описываются этапы, установленные в нашей лаборатории для облегчения сбора и обработки различных первичных образцов тканей человека для последующих исследований, интегральных для изучения вестибулярных шванномов. В частности, эта работа описывает унифицированную методологическую основу для сбора, обработки и культивирования клеток Шванна и шванномы из хирургических образцов. Это интегрировано с параллельными этапами обработки, которые сейчас считаются необходимыми для текущих исследований: сбор опухолей и нервных секретов, сохранение РНК и экстракция белка из собранных тканей, фиксация ткани для подготовки секций,D воздействие первичных клеток человека на адено-ассоциированные вирусы для применения в генной терапии. Кроме того, в этой работе подчеркивается трансбрабиринтный хирургический подход, чтобы собрать эту опухоль как уникальную возможность получить сенсорный эпителий человека из внутреннего уха и перилимфа. Предусмотрены советы по улучшению качества эксперимента и выделены общие проблемы.

Introduction

Vestibular schwannomas (VS) являются наиболее распространенными новообразованиями угла мозжечка, диагностированными в 1 из каждых 100 000 особей. Хотя они и не являются метастатическими, эти опухоли серьезно влияют на качество жизни пациента 1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 . Пострадавшие люди обычно живут с потерей слуха, тиннитусом и чувством слуховой полноты. Симптомы становятся все более истощающими, когда опухоль растет, вызывая проблемы с балансом, лицевой паралич и ухудшение функций других черепных нервов. Также могут возникнуть опасные для жизни осложнения, связанные с компрессией мозга.

Варианты управления для ВС в основном ограничены внимательным ожиданием статических опухолей и стереотаксической лучевой терапии или хирургической резекцией для роста опухолей <sUp class = "xref"> 8. Хирургическое удаление этих опухолей в научно-исследовательских больницах дает возможность приобретать и анализировать свежую опухолевую ткань, собранную во время операций пациента. Один конкретный хирургический подход к ВС, трансабиринтная резекция, может даже предложить доступ к ценному человеческому сенсорному эпителию из внутреннего уха и перилимфа.

Поскольку VS возникают из периферического сенсорного нерва ( т. Е. Вестибулярного нерва), важно сравнить VS-ассоциированные наблюдения с данными, полученными из соответствующего контрольного нерва, например, у человека с большим аурикулярным нервом (GAN). Здоровые ГАН регулярно жертвуют при паротидэктомии или диссекции шеи и могут использоваться в качестве надежных моделей для здоровой физиологии клеток Шванна 9 .

Поскольку нет лекарств, одобренных FDA для лечения или профилактики спорадических ВС, крайне важно, чтобы исследователи выяснили основные молекулярные мехиЧтобы определить терапевтические цели. Белки, которые, как было показано, играют роль в патогенезе VS, включают в себя мерлин, фактор роста эндотелия сосудов (VEGF), циклооксигеназу 2 (COX-2), ядерный фактор каппа B (NF-κB), фактор некроза опухолей альфа (TNF-альфа) , Рецептор эпидермального фактора роста (EGFR) и связанные сигнальные молекулы 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 .

Недавние достижения расширили и улучшили протоколы сбора, обработки, культивирования и последующего исследования первичных вестибулярных шванномов человека и здоровых нервных тканей 18 , 19 . Однако большинство существующих протоколов предназначены для( Например, только клеточная культура). В этой статье представлена ​​унифицированная методологическая основа для одновременной обработки одного первичного человеческого VS или образца GAN для нескольких последующих приложений: клеточная специфическая культура, экстракция белка, сохранение РНК, сбор опухолевых секретов и фиксация тканей. В этой работе также подробно описывается хирургический сбор и обработка спинномозговой жидкости человека (CSF) и перилимф во время трансабиринтной VS-резекции, поскольку эти тесно связанные ткани могут служить важными источниками биомаркеров для VS. Наконец, этот протокол представляет собой шаги для вирусной трансдукции первичных человеческих VS-клеток в культуре в качестве нового применения этой ткани для использования в генной терапии.

Protocol

Письменное информированное согласие на сбор всех образцов было получено до операции, и эксперименты проводились в соответствии с Кодексом этики Всемирной медицинской ассоциации (Хельсинская декларация). Все разделы протокола исследования были одобрены Управлением по надзору за исс?…

Representative Results

Первичные человеческие ВС-клетки в культуре, как установлено в разделе 5, можно рассматривать как информативные модели связанных с болезнями процессов во многих последующих исследовательских приложениях ( рисунок 1 ). Здоровые клетки Шванна, культивир…

Discussion

В этой рукописи описывается унифицированная методологическая основа исследования VS, в которой описывается одновременная обработка образцов VS и GAN человека для последующих исследований. Поскольку исследование VS входит в эпоху прецизионной медицины, подготовка одного и того же образц…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным институтом глухоты и других расстройств связи грантов R01DC015824 (KMS) и T32DC00038 (поддержка JES и SD), грант Министерства обороны W81XWH-14-1-0091 (KMS), Фонд Bertarelli (KMS) , Фонд Нэнси Сэйлса (KMS), Исследовательский центр Lauer Tinnitus Research (KMS) и Фонд Барнса (KMS).

Materials

BioCoat Poly-D-Lysine/Laminin 12mm #1 German Glass Coverslip Corning 354087 Or prepare coverslips with Corning Laminin (CB-40232) and Cultrex Poly-L-Lysine (3438-100-01)
CELLSTAR 15 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile Greiner Bio-One 188161
CELLSTAR 50 ml Centrifuge Tubes, Conical bottom, Graduation, Sterile Greiner Bio-One 227261
CELLSTAR Cell Culture Dish, 60 mm Greiner Bio-One 628160
Collagenase from Clostridium histolyticum, Sterile-filtered Sigma-Aldrich C1639
Costar 24 Well Clear TC-Treated Multiple Well Plates, Sterile Corning 3526
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phenylindole, Dihydrochloride) Thermo Fisher Scientific D1306
DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine, 500 ml Thermo Fisher Scientific 10313-039
DMEM/F-12, 500 ml Thermo Fisher Scientific 11320-033
Dumont #3 Forceps, Dumoxel Fine Science Tools 11231-30 Autoclave prior to use
Dumont #5 Forceps, Standard tip, Inox Fine Science Tools 11251-20 Autoclave prior to use
Fetal Bovine Serum, qualified, USDA-approved regions, 500 ml Thermo Fisher Scientific 10437-028  Aliquot in 50 ml tubes and store in -20°C freezer
Hyaluronidase from Bovine Testes, Type I-S, Lyophilized Powder Sigma-Aldrich H3506
Millex-GP Syringe Filter Unit, 0.22 µm, polyethersulfone, 33 mm, sterile EMD Millipore SLGP033RS
Paraformaldehyde, Reagent Grade, Crystalline Sigma-Aldrich P6148 Prior to use: Establish Standard Operating Procedures based on protocols available online
PBS, pH 7.4, 500 ml Thermo Fisher Scientific 10010-023  Autoclave prior to use
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/ml), 100 ml Thermo Fisher Scientific 15140-122
PhosSTOP Phosphatase Inhibitor Tablets Roche 04906845001
Pierce Protease Inhibitor Tablets Thermo Fisher Scientific 88666
Pipettes and pipette tips, 5/10/25 ml Variable Variable
Plastic Homogenization Pestle for 1.5/2.0ml Microtubes E&K Scientific EK-10539
PrecisionGlide Needles, 27 G x 1 1/2 in  BD 301629
RIPA Buffer Boston BioProducts BP-115
RNAlater (RNA stabilization solution) Thermo Fisher Scientific AM7021
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 0.5 ml Eppendorf 022363719 Autoclave prior to use
Safe-Lock Microcentrifuge Tubes, Polypropylene, 1.5 ml Eppendorf 022363204 Autoclave prior to use
Saline – 0.9% Sodium Chloride Injection, bacteriostatic, 20 ml Hospira 0409-1966-05
Scalpel Blades – #15 Fine Science Tools 10015-00
Schuknecht Suction Tube 24 gauge Bausch + Lomb N1698 42 Useful for the surgical approach (in addition to common otologic surgical instruments) and e.g. a blue surgical marker
Specimen Container, OR sterile, 4OZ  Medline DYND30331H
Stemi 2000-C Stereo Microscope Zeiss 000000-1106-133
Syringe/Needle Combination, Luer-Lok Tip, 5 ml, 22 G x 1 in. BD 309630
Tuberculin Syringe Only, Slip tip, 1 ml BD 309659
Tuberculin Syringe Only, Slip tip, 3 ml BD 309656
Ultrasonic homogenizer, 4710 Series, CV18 probe Cole-Parmer CP25013

Riferimenti

  1. Babu, R., et al. Vestibular schwannomas in the modern era: epidemiology, treatment trends, and disparities in management. J Neurosurg. 119 (1), 121-130 (2013).
  2. Gal, T. J., Shinn, J., Huang, B. Current epidemiology and management trends in acoustic neuroma. Otolaryngol Head Neck Surg. 142 (5), 677-681 (2010).
  3. Propp, J. M., McCarthy, B. J., Davis, F. G., Preston-Martin, S. Descriptive epidemiology of vestibular schwannomas. Neuro Oncol. 8 (1), 1-11 (2006).
  4. Stangerup, S. E., Tos, M., Thomsen, J., Caye-Thomasen, P. True incidence of vestibular schwannoma?. Neurosurgery. 67 (5), 1335-1340 (2010).
  5. Tos, M., Stangerup, S. E., Caye-Thomasen, P., Tos, T., Thomsen, J. What is the real incidence of vestibular schwannoma?. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 130 (2), 216-220 (2004).
  6. Stangerup, S. E., Caye-Thomasen, P. Epidemiology and natural history of vestibular schwannomas. Otolaryngol Clin North Am. 45 (2), 257-268 (2012).
  7. Mahaley, M. S., Mettlin, C., Natarajan, N., Laws, E. R., Peace, B. B. Analysis of patterns of care of brain tumor patients in the United States: a study of the Brain Tumor Section of the AANS and the CNS and the Commission on Cancer of the ACS. Clin Neurosurg. 36, 347-352 (1990).
  8. Carlson, M. L., Link, M. J., Wanna, G. B., Driscoll, C. L. Management of sporadic vestibular schwannoma. Otolaryngol Clin North Am. 48 (3), 407-422 (2015).
  9. Dilwali, S., et al. Sporadic vestibular schwannomas associated with good hearing secrete higher levels of fibroblast growth factor 2 than those associated with poor hearing irrespective of tumor size. Otol Neurotol. 34 (4), 748-754 (2013).
  10. Caye-Thomasen, P., et al. VEGF and VEGF receptor-1 concentration in vestibular schwannoma homogenates correlates to tumor growth rate. Otol Neurotol. 26 (1), 98-101 (2005).
  11. Koutsimpelas, D., et al. The VEGF/VEGF-R axis in sporadic vestibular schwannomas correlates with irradiation and disease recurrence. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec. 74 (6), 330-338 (2012).
  12. Dilwali, S., Roberts, D., Stankovic, K. M. Interplay between VEGF-A and cMET signaling in human vestibular schwannomas and schwann cells. Cancer Biol Ther. 16 (1), 170-175 (2015).
  13. Dilwali, S., Kao, S. Y., Fujita, T., Landegger, L. D., Stankovic, K. M. Nonsteroidal anti-inflammatory medications are cytostatic against human vestibular schwannomas. Transl Res. 166 (1), 1-11 (2015).
  14. Dilwali, S., et al. Preclinical validation of anti-nuclear factor-kappa B therapy to inhibit human vestibular schwannoma growth. Mol Oncol. 9 (7), 1359-1370 (2015).
  15. Dilwali, S., Landegger, L. D., Soares, V. Y., Deschler, D. G., Stankovic, K. M. Secreted Factors from Human Vestibular Schwannomas Can Cause Cochlear Damage. Sci Rep. 5, 18599 (2015).
  16. Blakeley, J. Development of drug treatments for neurofibromatosis type 2-associated vestibular schwannoma. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 20 (5), 372-379 (2012).
  17. Schroeder, R. D., Angelo, L. S., Kurzrock, R. NF2/merlin in hereditary neurofibromatosis 2 versus cancer: biologic mechanisms and clinical associations. Oncotarget. 5 (1), 67-77 (2014).
  18. Schularick, N. M., Clark, J. J., Hansen, M. R. Primary culture of human vestibular schwannomas. J Vis Exp. (89), (2014).
  19. Dilwali, S., et al. Primary culture of human Schwann and schwannoma cells: improved and simplified protocol. Hear Res. , 25-33 (2014).
  20. Brown, C. M., Ahmad, Z. K., Ryan, A. F., Doherty, J. K. Estrogen receptor expression in sporadic vestibular schwannomas. Otol Neurotol. 32 (1), 158-162 (2011).
  21. Cioffi, J. A., et al. MicroRNA-21 overexpression contributes to vestibular schwannoma cell proliferation and survival. Otol Neurotol. 31 (9), 1455-1462 (2010).
  22. Doherty, J. K., Ongkeko, W., Crawley, B., Andalibi, A., Ryan, A. F. ErbB and Nrg: potential molecular targets for vestibular schwannoma pharmacotherapy. Otol Neurotol. 29 (1), 50-57 (2008).
  23. Aguiar, P. H., Tatagiba, M., Samii, M., Dankoweit-Timpe, E., Ostertag, H. The comparison between the growth fraction of bilateral vestibular schwannomas in neurofibromatosis 2 (NF2) and unilateral vestibular schwannomas using the monoclonal antibody MIB 1. Acta Neurochir (Wien). 134 (1-2), 40-45 (1995).
  24. Cattoretti, G., et al. Monoclonal antibodies against recombinant parts of the Ki-67 antigen (MIB 1 and MIB 3) detect proliferating cells in microwave-processed formalin-fixed paraffin sections. J Pathol. 168 (4), 357-363 (1992).
  25. Hung, G., et al. Immunohistochemistry study of human vestibular nerve schwannoma differentiation. Glia. 38 (4), 363-370 (2002).
  26. Archibald, D. J., et al. B7-H1 expression in vestibular schwannomas. Otol Neurotol. 31 (6), 991-997 (2010).
  27. Landegger, L. D., et al. A synthetic AAV vector enables safe and efficient gene transfer to the mammalian inner ear. Nat Biotechnol. 35 (3), 280-284 (2017).
  28. Zinn, E., et al. In Silico Reconstruction of the Viral Evolutionary Lineage Yields a Potent Gene Therapy Vector. Cell Rep. 12 (6), 1056-1068 (2015).
  29. Kim, B. G., et al. Sulforaphane, a natural component of broccoli, inhibits vestibular schwannoma growth in vitro and in vivo. Sci Rep. 6, 36215 (2016).
  30. Soares, V. Y., et al. Extracellular vesicles derived from human vestibular schwannomas associated with poor hearing damage cochlear cells. Neuro Oncol. 18 (11), 1498-1507 (2016).
  31. Lysaght, A. C., et al. Proteome of human perilymph. J Proteome Res. 10 (9), 3845-3851 (2011).
  32. Caye-Thomasen, P., Borup, R., Stangerup, S. E., Thomsen, J., Nielsen, F. C. Deregulated genes in sporadic vestibular schwannomas. Otol Neurotol. 31 (2), 256-266 (2010).
  33. Schulz, A., et al. The importance of nerve microenvironment for schwannoma development. Acta Neuropathol. 132 (2), 289-307 (2016).
  34. Torres-Martin, M., et al. Global profiling in vestibular schwannomas shows critical deregulation of microRNAs and upregulation in those included in chromosomal region 14q32. PLoS One. 8 (6), e65868 (2013).

Play Video

Citazione di questo articolo
Landegger, L. D., Sagers, J. E., Dilwali, S., Fujita, T., Sahin, M. I., Stankovic, K. M. A Unified Methodological Framework for Vestibular Schwannoma Research. J. Vis. Exp. (124), e55827, doi:10.3791/55827 (2017).

View Video