Summary

Intranasal levering av terapeutiske stamceller til glioblastom i en musemodell

Published: June 04, 2017
doi:

Summary

Stamceller er lovende terapeutiske bærere til å behandle hjernesvulster på grunn av deres egen tumor-tropisme. Ikke-invasiv intranasal stamcelleavlevering omgår blodhjernebarrieren og viser sterkt potensial for klinisk oversettelse. Denne artikkelen oppsummerer de grunnleggende prinsippene for intranasal stamcelle levering i en musemodell av gliom.

Abstract

Den egentlige tropismen mot maligniteter i hjernen gjør stamceller som lovende bærere av terapeutiske midler mot maligne tumorer. Leveransen av terapeutiske stamceller via den intranasale ruten er en nylig oppdaget alternativ strategi, med sterkt potensial for klinisk oversettelse, på grunn av sin ikke-invasive natur sammenlignet med intrakranial implantasjon eller levering via systemiske veier. Mangelen på blodhjernebarriere styrker det terapeutiske potensialet til stamceller som undergår intranasal hjerneoppføring. Denne artikkelen oppsummerer de grunnleggende teknikkene som brukes i våre studier, og skisserer de grunnleggende prinsippene for intranasal strategi for stamcelleavlasting ved hjelp av en musemodell av intrakraniell gliomentral. Vi demonstrerer de optimaliserte prosedyrene som genererer konsistente og reproducerbare resultater med bestemte forhåndsbestemte eksperimentelle parametere og gir retningslinjer for strømlinjeformet arbeidsflyt som sikrer effektiv utførelse og pålitelig eksperimentNtal utfall. Artikkelen er utformet for å fungere som en basislinje for videre eksperimentell tilpasning basert på hypotese, stamcelletyper eller svittspesifikasjoner.

Introduction

Lav toksisitet, lav immunogenicitet og egenartet hjerne-tumor-tropisme av menneskelige stamceller er attraktive egenskaper for levering av terapeutiske kjøretøy 1 . Nye stamceller-baserte terapeutiske midler for ondartede hjernesvulster er lovende innovasjoner utviklet de siste årene, og den intranasale tilpasningen av denne terapeutiske strategien representerer et skritt mot klinisk oversettelse, fordi ikke-invasiv og gjentatt administrasjon kan dramatisk redusere barrieren for pasientapplikasjoner og Kan være tilpasningsdyktig for pasientrelaterte tjenester uten generell bedøvelse eller langvarig pasientstjeneste i forbindelse med invasive kirurgiske prosedyrer 1 , 2 , 3 , 4 .

Vi og andre har pioneret den intranasale ruten for stamcelleavlasting til hjernesvulster og har lagt grunnarbeidet for noen av de grunnleggende prinsippeneAv translasjonsforskning ved hjelp av musen xenograft-modeller 2 , 3 , 4 , samt undersøkte migrering av stamceller in vivo via magnetisk resonans imaging (MR) reagensbærere 2 . Gjennom disse pilotundersøkelsene har vi samlet stor erfaring og fått innsikt i hvordan man best kan konstruere en robust preklinisk evalueringsstrategi ved å bruke veletablerte pasient-avledede xenograft (PDX) musemodeller av ondartet gliom, samtidig som undersøkelsesoppløsningen ble holdt for å undersøke Nyanserte mekaniske detaljer om de sofistikerte biologiske fenomenene av den intranasale hjernen oppføring av terapeutiske stamceller levert til nesehulen. Her beskriver vi prinsippene for en standardisert driftsprotokoll for å demonstrere den nåværende tilstanden for eksperimentelle undersøkelser ved å bruke en veletablert human neural stamcellelinje HB1.F3.CD 5 <sup>, 6 , 7 , 8 , som lett kan modifiseres til å tilpasse seg bestemte tumormodeller eller strategier ved bruk av humane stamceller som terapeutiske bærere.

Protocol

Alle dyreprosedyrer må godkjennes av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) eller tilsvarende. Hvis det er noen usikkerhet om de spesifikke prosedyrene beskrevet her, fortsett ikke. Avklare med institusjonens IACUC og et utpekt veterinærmedarbeider. 1. Sikre sterilitet av dyrkede celler og følg prinsippene for aseptiske teknikker Følg standard god laboratorieøvelse i alle cellekulturprosedyrer og IACUC-krav for celleprøving og patogenfri statusbekreftelse før a…

Representative Results

Både hypoksisk forbehandling ( Figur 4A ) 4 og CXCR4-overekspresjon ( figur 4B og 4C ) 4 oppregner signifikant cellemembran-nærværet av CXCR4-reseptorer som vist ved strømningscytometri. Tumor tropismen demonstrert av NSCs (blå piler), er vist i tumorvevshistologi (rød sirkel). Tilstedeværelsen av MPIO-merkede ( Figur 4D ) stamceller i svuls…

Discussion

Selv om den intranasale ruten for legemiddellevering er blitt utbredt for små molekyler, nanomedisiner og proteinforbindelser likt 18 , er anvendelsen av terapeutiske stamceller for intranasal hjernesvulster-måling meget ny i spekteret av hjernetumorbehandlingene under utvikling 2 , 3 , 4 . Det er inneboende kompleksiteter involvert angående betegnelsen av stamceller i neshulen, og molekylære detalje…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av NIH R01NS087990 (MSL, IVB).

Materials

Stereotaxic frame Kopf Instruments Model 900
Hypoxic Cell Culture Incubator ThermoFisher Scientific VIOS 160i
Cell culture supplies (Plastics) ThermoFisher Scientific Varies Replaceable with any source
Legend Micro 21R Refrigerated Microcentrifuge ThermoFisher Scientific 75002490 Replaceable with any source
Bench centrifuge Sorvall ST16R  ThermoFisher Scientific 75004240 Replaceable with any source
Micro syringe 702N 25µl (22S/2"/2) Hamilton Company 80400 Flat tip
Sample Tray for Irradiator Best Theratronics A13826 To set up mice protection with lead shield
Leica DMi8 Microscope Leica Microsystem Custom setup
Leica CM1860 UV cryostat Leica Microsystem Custom setup
Exel International Insulin Syringe ThermoFisher Scientific 14-841-31
Corning Phosphate Buffer Saline Corning Cellgro/ThermoFisher 21-031-CV
Dulbecco's Modified Eagle Medium  Corning Cellgro/ThermoFisher 11965-084
Trypsin 0.05% Corning Cellgro/ThermoFisher 25300054
Hyaluronidase from bovine testes MilliporeSigma H3506

Riferimenti

  1. Shah, K. Stem cell-based therapies for tumors in the brain: are we there yet?. Neuro Oncol. 18 (8), 1066-1078 (2016).
  2. Balyasnikova, I. V., et al. Intranasal delivery of mesenchymal stem cells significantly extends survival of irradiated mice with experimental brain tumors. Mol Ther. 22 (1), 140-148 (2014).
  3. Reitz, M., et al. Intranasal delivery of neural stem/progenitor cells: a noninvasive passage to target intracerebral glioma. Stem Cells Transl Med. 1 (12), 866-873 (2012).
  4. Dey, M., et al. Intranasal Oncolytic Virotherapy with CXCR4-Enhanced Stem Cells Extends Survival in Mouse Model of Glioma. Stem Cell Reports. 7 (3), 471-482 (2016).
  5. Ahmed, A. U., et al. A preclinical evaluation of neural stem cell-based cell carrier for targeted antiglioma oncolytic virotherapy. J Natl Cancer Inst. 105 (13), 968-977 (2013).
  6. Kim, S. K., et al. Human neural stem cells target experimental intracranial medulloblastoma and deliver a therapeutic gene leading to tumor regression. Clin Cancer Res. 12 (18), 5550-5556 (2006).
  7. Lee, D. H., et al. Targeting rat brainstem glioma using human neural stem cells and human mesenchymal stem cells. Clin Cancer Res. 15 (15), 4925-4934 (2009).
  8. Lesniak, M. S. Targeted therapy for malignant glioma: neural stem cells. Expert Rev Neurother. 6 (1), 1-3 (2006).
  9. Robinson, K. GLPs and the Importance of Standard Operating Procedures. BioPharm International. 16 (8), (2003).
  10. World Health Organization on behalf of the Special Programme for Research and Training in Tropical Diseases. . Handbook: Good Laboratory Practice (GLP). , (2009).
  11. NIH. . Number: NOT-OD-16-011. Implementing Rigor and Transparency) in NIH & AHRQ Research Grant Applications. , (2015).
  12. Wakimoto, H., et al. Maintenance of primary tumor phenotype and genotype in glioblastoma stem cells. Neuro Oncol. 14 (2), 132-144 (2012).
  13. Cheng, S. H., et al. Dynamic In Vivo SPECT Imaging of Neural Stem Cells Functionalized with Radiolabeled Nanoparticles for Tracking of Glioblastoma. J Nucl Med. 57 (2), 279-284 (2016).
  14. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  15. Clark, A. J., Fakurnejad, S., Ma, Q., Hashizume, R. Bioluminescence Imaging of an Immunocompetent Animal Model for Glioblastoma. J Vis Exp. (107), (2016).
  16. Ulasov, I. V., et al. Survivin-driven and fiber-modified oncolytic adenovirus exhibits potent antitumor activity in established intracranial glioma. Hum Gene Ther. 18 (7), 589-602 (2007).
  17. Danielyan, L., et al. Intranasal delivery of cells to the brain. Eur J Cell Biol. 88 (6), 315-324 (2009).
  18. Dhuria, S. V., Hanson, L. R., Frey, W. H. Intranasal delivery to the central nervous system: mechanisms and experimental considerations. J Pharm Sci. 99 (4), 1654-1673 (2010).
  19. Gross, E. A., Swenberg, J. A., Fields, S., Popp, J. A. Comparative morphometry of the nasal cavity in rats and mice. J Anat. 135 (Pt 1), 83-88 (1982).
  20. Marieb, E. N., Hoehn, K. . Human Anatomy & Physiology. , (2007).
check_url/it/55845?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Yu, D., Li, G., Lesniak, M. S., Balyasnikova, I. V. Intranasal Delivery of Therapeutic Stem Cells to Glioblastoma in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (124), e55845, doi:10.3791/55845 (2017).

View Video