Summary

Intranasal leverans av terapeutiska stamceller till glioblastom i en musmodell

Published: June 04, 2017
doi:

Summary

Stamceller är lovande terapeutiska bärare för att behandla hjärntumörer på grund av deras inneboende tumör tropism. Icke-invasiv intranasal stamceller levererar ombi blodhjärnbarriären och visar stark potential för klinisk översättning. Denna artikel sammanfattar de grundläggande principerna för intranasal stamcellsleverans i en musmodell av gliom.

Abstract

Den inhemska tropismen mot hjärnans maligniteter gör stamceller som lovande bärare av terapeutiska medel mot maligna tumörer. Leveransen av terapeutiska stamceller via den intranasala vägen är en nyligen upptäckt alternativ strategi med stark potential för klinisk översättning på grund av dess icke-invasiva natur jämfört med intrakranial implantation eller leverans via systemiska vägar. Bristen på blodhjärnbarriär stärker ytterligare den terapeutiska potentialen hos stamceller som genomgår intranasal hjärninfångning. Denna artikel sammanfattar de väsentliga tekniker som används i våra studier och skisserar de grundläggande principerna för intranasal strategi för stamcellsleverans med hjälp av en musmodell av intrakraniella gliomentraler. Vi demonstrerar de optimerade procedurerna som genererar konsekventa och reproducerbara resultat med specifika förutbestämda experimentella parametrar och ger riktlinjer för effektiviserat arbetsflöde som säkerställer effektiv körning och pålitlig experimentNtal utfall. Artikeln är utformad för att fungera som en grundlinje för ytterligare experimentell anpassning baserad på hypotes, stamcellstyper eller tumörspecifika.

Introduction

Låg toxicitet, låg immunogenicitet och inneboende hjärntumör-tropism hos humana stamceller är attraktiva drag för leveransen av terapeutiska vehiklar 1 . Nya stamcellsbaserade läkemedel för maligna hjärntumörer är lovande innovationer utvecklade de senaste åren och den intranasala anpassningen av denna terapeutiska strategi utgör ett steg mot klinisk översättning, eftersom icke-invasiv och upprepad administrering dramatiskt kan minska barriären för patientapplikationer och Kan vara anpassningsbar för outpatienttjänster utan allmänbedövning eller långvarig in-patient service i samband med invasiva kirurgiska ingrepp 1 , 2 , 3 , 4 .

Vi och andra har banat på den intranasala vägen för stamcellsleverans till hjärntumörer och har lagt grundarbetet för några av de grundläggande principernaAv translationell forskning med användning av mus xenograftmodeller 2 , 3 , 4 , samt undersökt migrering av stamceller in vivo via magnetisk resonansbildningsreagens (MRI) reagensbärare 2 . Genom dessa pilotutredningar har vi samlat stor erfarenhet och fått insikt om hur man bäst kan konstruera en robust preklinisk utvärderingsstrategi med hjälp av väletablerade patientbaserade xenograft (PDX) musmodeller av malignt gliom, samtidigt som undersökningsupplösningen upprätthålls för att undersöka Nyanserade mekaniska detaljer av de sofistikerade biologiska fenomenen av den intranasala hjärnanpassningen av terapeutiska stamceller som levereras till näshålan. Här beskriver vi principerna för ett standardiserat operationsprotokoll för att visa det aktuella tillståndet för experimentella undersökningar med användning av en väletablerad human neural stamcellslinje HB1.F3.CD 5 <sup>, 6 , 7 , 8 , som lätt modifieras för att anpassa sig till specifika tumormodeller eller strategier med användning av humana stamceller som terapeutiska bärare.

Protocol

Alla djurförfaranden måste godkännas av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) eller motsvarande. Om det råder någon osäkerhet angående de specifika procedurer som beskrivs häri, fortsätt inte. Förtydligas med institutionens IACUC och en utsedd veterinärmedlem. 1. Säkerställa steriliteten hos odlade celler och följa principerna om aseptiska tekniker Följ standard god laboratoriepraxis i alla cellkulturprocedurer och IACUC-krav för celltestning och pato…

Representative Results

Både hypoxisk förbehandling ( Figur 4A ) 4 och CXCR4-överuttryck (Figurerna 4B och 4C ) 4 uppskattar signifikant cellemembran närvaron av CXCR4-receptorer som demonstreras genom flödescytometri. Tumör tropismen demonstrerad av NSC (blå pilar), visas i tumörvävnadshistologi (röd cirkel). Närvaron av MPIO-märkta ( Figur 4D ) stamceller i …

Discussion

Även om den intranasala vägen för läkemedelsleverans har undersökts allmänt för små molekyler, nanomedicin och proteinföreningar lika 18 , är tillämpningen av terapeutiska stamceller för intranasal hjärntumörinriktning väldigt ny i spektret av hjärntumörterapeutik under utveckling 2 , 3 , 4 . Det finns inneboende komplexiteter involverade beträffande beteenden av stamceller i näshålan…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH R01NS087990 (MSL, IVB).

Materials

Stereotaxic frame Kopf Instruments Model 900
Hypoxic Cell Culture Incubator ThermoFisher Scientific VIOS 160i
Cell culture supplies (Plastics) ThermoFisher Scientific Varies Replaceable with any source
Legend Micro 21R Refrigerated Microcentrifuge ThermoFisher Scientific 75002490 Replaceable with any source
Bench centrifuge Sorvall ST16R  ThermoFisher Scientific 75004240 Replaceable with any source
Micro syringe 702N 25µl (22S/2"/2) Hamilton Company 80400 Flat tip
Sample Tray for Irradiator Best Theratronics A13826 To set up mice protection with lead shield
Leica DMi8 Microscope Leica Microsystem Custom setup
Leica CM1860 UV cryostat Leica Microsystem Custom setup
Exel International Insulin Syringe ThermoFisher Scientific 14-841-31
Corning Phosphate Buffer Saline Corning Cellgro/ThermoFisher 21-031-CV
Dulbecco's Modified Eagle Medium  Corning Cellgro/ThermoFisher 11965-084
Trypsin 0.05% Corning Cellgro/ThermoFisher 25300054
Hyaluronidase from bovine testes MilliporeSigma H3506

Riferimenti

  1. Shah, K. Stem cell-based therapies for tumors in the brain: are we there yet?. Neuro Oncol. 18 (8), 1066-1078 (2016).
  2. Balyasnikova, I. V., et al. Intranasal delivery of mesenchymal stem cells significantly extends survival of irradiated mice with experimental brain tumors. Mol Ther. 22 (1), 140-148 (2014).
  3. Reitz, M., et al. Intranasal delivery of neural stem/progenitor cells: a noninvasive passage to target intracerebral glioma. Stem Cells Transl Med. 1 (12), 866-873 (2012).
  4. Dey, M., et al. Intranasal Oncolytic Virotherapy with CXCR4-Enhanced Stem Cells Extends Survival in Mouse Model of Glioma. Stem Cell Reports. 7 (3), 471-482 (2016).
  5. Ahmed, A. U., et al. A preclinical evaluation of neural stem cell-based cell carrier for targeted antiglioma oncolytic virotherapy. J Natl Cancer Inst. 105 (13), 968-977 (2013).
  6. Kim, S. K., et al. Human neural stem cells target experimental intracranial medulloblastoma and deliver a therapeutic gene leading to tumor regression. Clin Cancer Res. 12 (18), 5550-5556 (2006).
  7. Lee, D. H., et al. Targeting rat brainstem glioma using human neural stem cells and human mesenchymal stem cells. Clin Cancer Res. 15 (15), 4925-4934 (2009).
  8. Lesniak, M. S. Targeted therapy for malignant glioma: neural stem cells. Expert Rev Neurother. 6 (1), 1-3 (2006).
  9. Robinson, K. GLPs and the Importance of Standard Operating Procedures. BioPharm International. 16 (8), (2003).
  10. World Health Organization on behalf of the Special Programme for Research and Training in Tropical Diseases. . Handbook: Good Laboratory Practice (GLP). , (2009).
  11. NIH. . Number: NOT-OD-16-011. Implementing Rigor and Transparency) in NIH & AHRQ Research Grant Applications. , (2015).
  12. Wakimoto, H., et al. Maintenance of primary tumor phenotype and genotype in glioblastoma stem cells. Neuro Oncol. 14 (2), 132-144 (2012).
  13. Cheng, S. H., et al. Dynamic In Vivo SPECT Imaging of Neural Stem Cells Functionalized with Radiolabeled Nanoparticles for Tracking of Glioblastoma. J Nucl Med. 57 (2), 279-284 (2016).
  14. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J Vis Exp. (47), (2011).
  15. Clark, A. J., Fakurnejad, S., Ma, Q., Hashizume, R. Bioluminescence Imaging of an Immunocompetent Animal Model for Glioblastoma. J Vis Exp. (107), (2016).
  16. Ulasov, I. V., et al. Survivin-driven and fiber-modified oncolytic adenovirus exhibits potent antitumor activity in established intracranial glioma. Hum Gene Ther. 18 (7), 589-602 (2007).
  17. Danielyan, L., et al. Intranasal delivery of cells to the brain. Eur J Cell Biol. 88 (6), 315-324 (2009).
  18. Dhuria, S. V., Hanson, L. R., Frey, W. H. Intranasal delivery to the central nervous system: mechanisms and experimental considerations. J Pharm Sci. 99 (4), 1654-1673 (2010).
  19. Gross, E. A., Swenberg, J. A., Fields, S., Popp, J. A. Comparative morphometry of the nasal cavity in rats and mice. J Anat. 135 (Pt 1), 83-88 (1982).
  20. Marieb, E. N., Hoehn, K. . Human Anatomy & Physiology. , (2007).

Play Video

Citazione di questo articolo
Yu, D., Li, G., Lesniak, M. S., Balyasnikova, I. V. Intranasal Delivery of Therapeutic Stem Cells to Glioblastoma in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (124), e55845, doi:10.3791/55845 (2017).

View Video