Summary

血液脳関門メッシュ様血管形成および崩壊を評価するためのインビトロアッセイ

Published: June 20, 2017
doi:

Summary

血液脳関門のカバレッジを維持することは、中枢神経系の恒常性にとって重要である。このプロトコルは血液脳関門のカバレッジを調節する基本的および病理学的プロセスを描写するためのインビトロ技術を記載する

Abstract

血液脳関門(BBB)の適用範囲は、中枢神経系(CNS)の恒常性において中心的な役割を果たす。 BBBは、星状細胞、周皮細胞および脳内皮細胞(BEC)によって動的に維持される。ここでは、不死化ヒトBECの単一培養、初代マウスBECの単一培養、およびBBBのヒト化三重培養モデル(BEC、星状細胞および周皮細胞)を使用して、BBBカバレッジを評価する方法を詳述する。疾患状態に対するアッセイの適用性を強調するために、我々は、BBB適用範囲におけるアルツハイマー病(AD)進行の重要な要因であるオリゴマーアミロイドβ(oAβ)の効果を記載する。さらに、本発明者らは、この技術の薬物スクリーニング能力を明らかにするために、上皮増殖因子(EGF)を利用する。本発明者らの結果は、単一および三重培養BECが基底条件下で網目様構造を形成し、oAβがこの細胞網形成を破壊し、予備形成された網構造を変性させ、EGFはこの中断を阻止します。したがって、記載された技術は、BBBカバレッジを調節する基本的かつ疾患関連プロセスを解剖するために重要である。

Introduction

脳毛細血管の血液脳関門(BBB)は、血液と脳の接触の最大の界面であり、中枢神経系(CNS) 1,2の恒常性において中心的な役割を果たす。 BBBでのダイナミックなプロセスは、血液からの不要な分子の取り込みを防ぎ、中枢神経系からの老廃物を除去し、必須の栄養素とシグナル伝達分子をCNSに供給し、神経炎症を調節する1,2,3,4,5。 BBB損傷は、加齢およびアルツハイマー病(AD)、多発性硬化症および脳卒中1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13,14 ass = "xref"> 6。したがって、BBB機能不全は、治療標的を含む神経変性疾患において重要な役割を果たす可能性がある。

船舶のカバレッジを維持することは、BBBの恒常性機能にとって重要である。しかし、 インビボおよびインビトロでのデータ衝突は、神経変性疾患に関与するプロセスが、特にADにおいて、BBB適用範囲を6,7,8,9,10,11,12,13より高くまたは低くするかどうかについて競合する。したがって、BBBカバレッジのダイナミクスを評価し、より包括的に理解するために、関連する細胞タイプを使用したインビトロモデルの開発には強い根拠があります。脳毛細血管は、星状細胞、周皮細胞および脳内皮細胞(BEC)から構成され、 <sup class = "xref"> 3。全ての細胞型は、構造支持体を介して、パラクリンおよびオートクリン様様式で作用する血管新生増殖因子、サイトカインおよびケモカインなどのエフェクター分子の分泌を介して、BBBの機能に寄与する。しかし、BBBの主要エフェクター細胞はBECである3 。一般に、BBB機能を評価するための細胞培養技術は、ストレッサー14,15,16の添加後の両方において、フィルターインサート上で増殖させた細胞、または重要なBECタンパク質のレベルを評価する浸透性アッセイである。重要ではあるが、これらのアッセイは脳血管カバレッジに焦点を当てていない。

ここで、我々の以前の方法17は、不死化ヒトBECの単一培養、初代マウスBECの単一培養、およびヒト化三重培養を使用して、BEC適用範囲および網状様構造を評価するために詳述されているBBBのモデル(BEC、星状細胞および周皮細胞)を同定した。目標は、AECがAD進展の重要な要因であると考えられている有害作用がBECの対象範囲に及ぼす影響を実証することでした。表皮成長因子(EGF)の保護効果は、治療スクリーニングツールとしてのこの技術の可能性を強調している。この技術は、1)血管新生および血管カバレッジにおける特定の経路の役割の描写、2)血管新生および血管カバレージに対する疾患および加齢関連因子の影響の評価、および3)薬理学的目標。

Protocol

すべての実験は、イリノイ大学シカゴ研究所の動物用ケアおよび使用委員会のプロトコールに従う。 1.一般的な準備注:脳微小血管内皮細胞系(hCMEC / D3)は、広範に特徴付けられた不死化ヒトBEC系統14,15,16,18,19である。基底内皮成長基質培地中のコラーゲンタイプI(子牛皮膚、Ca 2+およびMg 2+を含有するハンクス平衡塩類溶液(HBSS)?…

Representative Results

単一培養では、hCMEC / D3細胞( 図3A )および初代マウスBEC( 図3B )の両方が、ウェル全体にわたって網目状の構造を形成する。構造は、相互リンクされたノードの網目構造によって特徴付けられます ( 図3 )。記載されたすべてのパラダイム( 図1 )にお…

Discussion

記載された方法は、脳血管カバレッジを取り巻くいくつかの基本的な生物学的問題に対処するために利用することができる24 。具体的には、どの受容体およびシグナル伝達経路が、血管新生、癌組織における血管カバレッジ、および脳に関連する末梢内皮細胞において役割を果たすかを同定することができる。例としては、血管新生増殖因子受容体、酸化窒素、マイトジェ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

レオン・タイは、イリノイ大学シカゴの創業資金によって資金提供を受けています。

Materials

hCMEC/D3 cells Milipore SCC066
EBM-2 basal media  Lonza CC-3156
Collagen Type 1 ThermoFisher A1064401 
HBSS, calcium, magnesium, no phenol red ThermoFisher 14025092
HBSS, no calcium, no magnesium, no phenol red ThermoFisher 14175095
Trypsin-EDTA (0.25%) ThermoFisher 25200056
Final concentrations of the SingleQuot growth factor supplements for EBM2 media Lonza CC-4147
5% FBS Lonza CC-4147
10% Ascorbic acid Lonza CC-4147
10% Gentamycin sulphate Lonza CC-4147
25% Hydrocortisone Lonza CC-4147
1/4 volume of the supplied growth factors: fibroblast growth factor, epidermal growth factor, insulin-like growth factor, vascular endothelial growth factor Lonza CC-4147
Puromycin hydrochloride VWR 80503-312
MEM-HEPES  Thermo Scientific  12360-038
Papain cell dissociation system (papain and DNase1) Worthington Biochemical LK003150
Human pericytes Sciencell 1200
Pericyte basal media Sciencell 1201
Pericyte growth supplement Sciencell 1252
Human Astrocytes Sciencell 1800
Astrocyte media Sciencell 1801
Astrocyte growth supplement Sciencell 1852
Basement membrane (Matrigel Growth Factor Reduced)  Corning 356231
Angiogenesis m-plates (96-well) ibidi 89646
Human Epidermal growth factor  Shenendoah Biotechnology 100-26
CellTracker green  ThermoFisher C7025
CellTracker orange ThermoFisher C34551
CellTracker blue  ThermoFisher C2110
Poly-l-lysine Sciencell 0403
10% Neutral Buffered Formalin Sigma-Aldrich HT5012-60ML
C57BL mice Jackson Laboratory na
PCR tube strips GeneMate T-3014-2
Zeiss stereo discover v.8 dissecting microscope Zeiss na

Riferimenti

  1. Abbott, N. J. Blood-brain barrier structure and function and the challenges for CNS drug delivery. J Inherit Metab Dis. 36 (3), 437-449 (2013).
  2. Engelhardt, B., Liebner, S. Novel insights into the development and maintenance of the blood-brain barrier. Cell Tissue Res. 355 (3), 687-699 (2014).
  3. Abbott, N. J., Patabendige, A. A., Dolman, D. E., Yusof, S. R., Begley, D. J. Structure and function of the blood-brain barrier. Neurobiol Dis. 37 (1), 13-25 (2010).
  4. Zlokovic, B. V. Neurovascular pathways to neurodegeneration in Alzheimer’s disease and other disorders. Nat Rev Neurosci. 12 (12), 723-738 (2011).
  5. Pardridge, W. Targeted delivery of protein and gene medicines through the blood-brain barrier. Clin Pharmacol Ther. 97 (4), 347-361 (2014).
  6. Tai, L. M., et al. The role of APOE in cerebrovascular dysfunction. Acta Neuropathol. 131 (5), 709-723 (2016).
  7. Biron, K. E., Dickstein, D. L., Gopaul, R., Jefferies, W. A. Amyloid triggers extensive cerebral angiogenesis causing blood brain barrier permeability and hypervascularity in Alzheimer’s disease. PLoS One. 6 (8), e23789 (2011).
  8. Cameron, D. J., et al. Alzheimer’s-related peptide amyloid-beta plays a conserved role in angiogenesis. PLoS One. 7 (7), e39598 (2012).
  9. Boscolo, E., et al. Beta amyloid angiogenic activity in vitro and in vivo. Int J Mol Med. 19 (4), 581-587 (2007).
  10. Paris, D., et al. Impaired angiogenesis in a transgenic mouse model of cerebral amyloidosis. Neurosci Lett. 366 (1), 80-85 (2004).
  11. Kitaguchi, H., Ihara, M., Saiki, H., Takahashi, R., Tomimoto, H. Capillary beds are decreased in Alzheimer’s disease, but not in Binswanger’s disease. Neurosci Lett. 417 (2), 128-131 (2007).
  12. Jantaratnotai, N., Ryu, J. K., Schwab, C., McGeer, P. L., McLarnon, J. G. Comparison of Vascular Perturbations in an Abeta-Injected Animal Model and in AD Brain. Int J Alzheimers Dis. 2011, 918280 (2011).
  13. Donnini, S., et al. Abeta peptides accelerate the senescence of endothelial cells in vitro and in vivo, impairing angiogenesis. FASEB J. 24 (7), 2385-2395 (2010).
  14. Tai, L. M., Holloway, K. A., Male, D. K., Loughlin, A. J., Romero, I. A. Amyloid-beta-induced occludin down-regulation and increased permeability in human brain endothelial cells is mediated by MAPK activation. J Cell Mol Med. 14 (5), 1101-1112 (2010).
  15. Tai, L. M., Loughlin, A. J., Male, D. K., Romero, I. A. P-glycoprotein and breast cancer resistance protein restrict apical-to-basolateral permeability of human brain endothelium to amyloid-beta. J Cereb Blood Flow Metab. 29 (6), 1079-1083 (2009).
  16. Tai, L. M., et al. Polarized P-glycoprotein expression by the immortalised human brain endothelial cell line, hCMEC/D3, restricts apical-to-basolateral permeability to rhodamine 123. Brain Res. 1292, 14-24 (2009).
  17. Koster, K. P., Thomas, R., Morris, A. W., Tai, L. M. Epidermal growth factor prevents oligomeric amyloid-beta induced angiogenesis deficits in vitro. J Cereb Blood Flow Metab. 36 (11), 1865-1871 (2016).
  18. Weksler, B., Romero, I. A., Couraud, P. O. The hCMEC/D3 cell line as a model of the human blood brain barrier. Fluids Barriers CNS. 10 (1), 16 (2013).
  19. Weksler, B. B., et al. Blood-brain barrier-specific properties of a human adult brain endothelial cell line. FASEB J. 19 (13), 1872-1874 (2005).
  20. Welser-Alves, J. V., Boroujerdi, A., Milner, R. Isolation and culture of primary mouse brain endothelial cells. Methods Mol Biol. 1135, 345-356 (2014).
  21. Dahlgren, K. N., et al. Oligomeric and fibrillar species of amyloid-beta peptides differentially affect neuronal viability. J Biol Chem. 277 (35), 32046-32053 (2002).
  22. Carpentier, G. Angiogenesis Analyzer. ImageJ News. , (2012).
  23. Thomas, R., et al. Epidermal growth factor prevents APOE4 and amyloid-beta-induced cognitive and cerebrovascular deficits in female mice. Acta Neuropathol Commun. 4 (1), 111 (2016).
  24. Tai, L. M., et al. The role of APOE in cerebrovascular dysfunction. Acta Neuropathol. 131 (5), 709-723 (2016).
  25. Ambrose, C. T. Neuroangiogenesis: a vascular basis for Alzheimer’s disease and cognitive decline during aging. J Alzheimers Dis. 32 (3), 773-788 (2012).
  26. Ambrose, C. T. A therapeutic approach for senile dementias: neuroangiogenesis. J Alzheimers Dis. 43 (1), 1-17 (2015).
  27. Ambrose, C. T. The Role of Capillaries in the Lesser Ailments of Old Age and in Alzheimer’s Disease and Vascular Dementia: The Potential of Pro-Therapeutic Angiogenesis. J Alzheimers Dis. 54 (1), 31-43 (2016).

Play Video

Citazione di questo articolo
Thomas, R., Diaz, K., Koster, K. P., Tai, L. M. In Vitro Assays to Assess Blood-brain Barrier Mesh-like Vessel Formation and Disruption. J. Vis. Exp. (124), e55846, doi:10.3791/55846 (2017).

View Video