Summary

El Modelo Invertido del Corazón para la Colección de Transudado Intersticial del Corazón de la Rata Aislada

Published: June 20, 2017
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Summary

Este protocolo describe un método para recoger fluido intersticial cardíaco del corazón de rata perfundido aislado. Para separar físicamente el transudato intersticial del perfusado de efluente venoso coronario, se invierte el corazón perfundido de Langendorff y se recoge el transudato (líquido intersticial) formado en la superficie cardiaca usando un tapón de látex blando.

Abstract

El presente protocolo describe un enfoque único que permite la recolección de transudado cardíaco (TC) del corazón de rata aislado, con solución salina perfundida. Después del aislamiento y la perfusión retrógrada del corazón de acuerdo con la técnica de Langendorff, el corazón se invierte en una posición invertida y se estabiliza mecánicamente mediante un catéter de balón insertado en el ventrículo izquierdo. Luego, se coloca una tapa delgada de látex – previamente moldeada para que coincida con el tamaño promedio del corazón de la rata – sobre la superficie epicárdica. La salida de la tapa de látex está conectada a tubos de silicio, con la abertura distal 10 cm por debajo del nivel de base del corazón, creando una ligera succión. La TC producida continuamente en la superficie epicárdica se recoge en viales enfriados con hielo para un análisis posterior. La tasa de formación de TC varió de 17 a 147 μL / min (n = 14) en los corazones control y en infarto, lo que representa 0,1-1% del perfusato de efluente venoso coronario. Análisis proteómico y alto perfoLa cromatografía líquida de rmance (HPLC) reveló que la CT recogida contiene un amplio espectro de proteínas y metabolitos purinérgicos.

Introduction

La insuficiencia cardíaca (IC) es la principal causa de muerte en humanos en todo el mundo 1 . La IC suele producirse a causa de miocarditis, inseminación isquémica al miocardio y remodelado ventricular izquierdo, lo que lleva al deterioro progresivo de la función contráctil cardíaca ya la calidad de vida de los pacientes. Aunque los avances en cardiología y cirugía cardíaca han reducido notablemente la mortalidad por HF, sirven meramente como "retardadores" transitorios de un proceso de enfermedad inevitablemente progresivo que tiene una morbilidad significativa. Por lo tanto, la falta actual de tratamiento efectivo subraya la necesidad de identificar nuevos objetivos moleculares que pueden prevenir o incluso revertir la IC. Esto incluye cambios en la matriz extracelular, la respuesta inmune no controlada del corazón, y las interacciones entre las células cardíacas y no cardíacas [ 2] .

Es importante reconocer que el microambiente que las células cardíacas están expuestas a la direcciónTamente la respuesta inmune y regenerativa del corazón lesionado. En el corazón aislado, de perfusión salina, se genera CT en la superficie del corazón en forma de pequeñas gotitas que se derivan del espacio intersticial fluido ( es decir, microambiente), tanto en condiciones fisiológicas como fisiopatológicas 3 , 4 , 5 . Por lo tanto, el análisis de la CT ( es decir, el líquido intersticial) puede ayudar a identificar los factores que regulan el metabolismo cardíaco y la función contráctil 6 o influyen en las funciones de las células inmunes después de la migración en el corazón lesionado. Potencialmente, esto puede conducir al desarrollo de nuevas estrategias terapéuticas para el tratamiento de la IC.

La recolección de TC a partir de corazones murinos es técnicamente difícil. En los corazones normales de Langendorff-perfundidos, la colección exclusiva de CT es difícil debido a que la mezcla de la CT con la coronariaEl perfusato de efluente venoso diluye impredeciblemente cualquier concentración de metabolitos / enzimas liberados del espacio intersticial. Una estrategia posible para superar esta limitación es excluir el efluente venoso mediante la cánula pulmonar y la ligadura simultánea de la vena pulmonar 7 . Sin embargo, este método enfrenta dificultades asociadas con la canulación y la ligadura de la arteria y vena pulmonar, provocando una fuga potencial de efluente venoso en el transudado cardíaco. El concepto de usar un modelo de corazón reverso fue introducido por primera vez por el grupo de Kammermeier, que invirtió el corazón aislado y perfundido en una posición invertida y colocó una delgada capa de látex en la superficie epicárdica para tomar continuamente CT sin la contaminación del efluente venoso 8 , 9 . Usando este procedimiento, se demostró que la TC proporciona una medida muy sensible de los metabolitos liberados desde el corazón 9 ,La transferencia capilar de ácidos grasos 8 , y partículas virales 10 .

Más recientemente, los factores parácrinos que pueden regular la respuesta inmune local y aumentar la angiogénesis cardíaca 11 se han implicado en los efectos beneficiosos de la terapia basada en células madre para la enfermedad cardíaca. El análisis de la TC en el corazón invertido puede ayudar a identificar químicamente estos factores paracrinos individuales. Además, la TC puede ayudar a identificar los factores implicados en la activación in vivo de las células inmunes en el corazón.

La descripción detallada de la colección de CT desde la superficie del corazón, proporcionada aquí, es experimentalmente útil para los investigadores que estudian la interacción de células inmunitarias, fibroblastos, células endoteliales y cardiomiocitos en relación con la función cardíaca global. Como se mencionó anteriormente, el fluido intersticial lleva la información para la comunicación de célula a célula dentro del corazón,Que se puede evaluar convenientemente mediante la recolección de CT. La descripción técnica detallada, incluyendo un protocolo de vídeo de cómo recolectar CT del corazón invertido, debe facilitar la aplicación futura de esta técnica única.

Protocol

Todos los experimentos fueron aprobados por la agencia reguladora local ( LANUV de Nordrhein-Westfalen, Alemania) y se realizaron de acuerdo con las directrices de uso animal. Los animales fueron alimentados con una dieta estándar de chow y recibieron agua del grifo ad libitum . Todos los equipos y productos químicos necesarios para cada paso del experimento están disponibles en la Tabla de Materiales . 1. Preparación de la Caperuza de Látex y del Balón…

Representative Results

El modelo de corazón invertido permite la recolección de transudado intersticial cardíaco en un corazón de rata aislado, retro-perfundido ( Figura 1A- C ). Cuando se perfundía a una presión constante de 100 cmH $ ₂ $ O, la velocidad de formación de líquido intersticial varió entre 17 y 147 μL / min, llegando a 0,1-1% del efluente venoso coronario en el corazón aislado. <p class="jove_content" fo:keep-togethe…

Discussion

El modelo de corazón invertido se basa en la bien establecida técnica de perfusión de corazón de Langendorff 12 y se realiza simplemente invirtiendo el corazón en una posición invertida y manteniendo esta posición usando un catéter de balón intra-ventricular rígido. De esta manera, el transudato intersticial cardíaco puede separarse físicamente del perfusado de efluente venoso coronario, goteando por gravedad desde la base del corazón 9 . El CT se puede recoge…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudio fue financiado por NSFC 81570244, FoKo 23/2013 y SFB 1116 / B01 y por el Instituto de Investigación Cardiovascular de Düsseldorf (CARID).

Materials

Latex Solution ProChemie Z-Latex LA-TZ  http://kautschukgesellschaft.de/%E2%80%A8z-latexla-tz%E2%80%A8
Aluminum Mold Home made Reverse heart model
Universal Ovens Memmert UNB 400 Reverse heart model
Latex Balloon Hugo Sachs Size 4 Reverse heart model
Milling Machine Proxxon MF70 Reverse heart model
Sodium Chloride Sigma SZBD0810V Chemicals
Sodium Hydrogen Carbonate Roth 68852 Chemicals
Potassium Chloride Merck 49361 Chemicals
Magnesium Sulphate Heptahydrate Merck 58861 Chemicals
Potassium Dihydrogen Phosphate Merck 48731 Chemicals
D(+)-Glucose Anhydrous Merck 83371 Chemicals
Calcium Chloride Dihydrate Fluka 21097 Chemicals
Balance VWR SE 1202  Weighing chemicals
Double Distilled Water Millpore Disolving chemicals
Medical Pressure Transducer Gold Langendorff apparatus
Medical Flow Probe Transonic 3PXN Langendorff apparatus
Heating Circulating Bath Haake  B3 ; DC1 Langendorff apparatus
Laboratory and Vaccum Tubing Tygon R-3603 Langendorff apparatus
Animal Research Flowmeters Transonic T206 Langendorff apparatus
PowerLab Data Acquisition Device AD Instruments Chart 7.1 Langendorff apparatus
LabChart Data Acquisition Software AD Instruments Chart 7.1 Langendorff apparatus
Peristaltic Pump Glison MINIPULS 3 Langendorff apparatus
Glass Water Column home made Langendorff apparatus
Water Bath Protective Agent VWR 462-7000 Langendorff apparatus
Sterile Disposable  Filters (0.2µm) Thermo Scientific 595-4520 Langendorff apparatus
Blood gas analyzers Radiometer ABL90 FLEX PLUS Gas analyzer
70% ethanol VWR UN1170 Cleaning  tubings
100% ethanol Merck 64-17-5 Cleaning tubings
Wistar Rats Janvier Animals
Stainless Scissors AESCULAP BC702R Surgical Instruments
Stainless Scissors AESCULAP BC257R Surgical Instruments
Big Forceps  AESCULAP Surgical Instruments
8m/m Stainless Forceps F.S.T 11052-10 Surgical Instruments
superfine (10/0) emery paper 3M 051111-11694 Reverse heart model

Riferimenti

  1. Henkel, D. M., Redfield, M. M., Weston, S. A., Gerber, Y., Roger, V. L. Death in heart failure: a community perspective. Circ Heart Fail. 1 (2), 91-97 (2008).
  2. Limana, F., et al. Myocardial infarction induces embryonic reprogramming of epicardial c-kit(+) cells: role of the pericardial fluid. J Mol Cell Cardiol. 48 (4), 609-618 (2010).
  3. Brunner, F. Cardiac tissue endothelin-1 levels under basal, stimulated, and ischemic conditions. J Cardiovasc Pharmacol. 26, S44-S46 (1995).
  4. de Lannoy, L. M., et al. Renin-angiotensin system components in the interstitial fluid of the isolated perfused rat heart. Local production of angiotensin I. Hypertension. 29 (6), 1240-1251 (1997).
  5. Strupp, M., Kammermeier, H. Interstitial Lactate And Glucose-Concentrations Of the Isolated-Perfused Rat-Heart before, during And after Anoxia. Pflugers Arch. 423 (3-4), 232-237 (1993).
  6. Wienen, W., Jungling, E., Kammermeier, H. Enzyme-Release into the Interstitial Space of the Isolated Rat-Heart Induced by Changes in Contractile Performance. Cardiovasc Res. 28 (8), 1292-1298 (1994).
  7. De Deckere, E. A., Ten Hoor, ., P, A modified Langendorff technique for metabolic investigations. Pflugers Arch. 370 (1), 103-105 (1977).
  8. Tschubar, F., Rose, H., Kammermeier, H. Fatty acid transfer across the myocardial capillary wall. J Mol Cell Cardiol. 25 (4), 355-366 (1993).
  9. Wienen, W., Kammermeier, H. Intra- and extracellular markers in interstitial transudate of perfused rat hearts. Am J Physiol. 254 (4 Pt 2), H785-H794 (1988).
  10. Sasse, A., Ding, Z. P., Wallich, M., Godecke, A., Schrader, J. Vascular transfer of adenovirus is augmented by nitric oxide in the rat heart. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 287 (3), H1362-H1368 (2004).
  11. Gnecchi, M., Zhang, Z., Ni, A., Dzau, V. J. Paracrine mechanisms in adult stem cell signaling and therapy. Circ Res. 103 (11), 1204-1219 (2008).
  12. Herr, D. J., Aune, S. E., Menick, D. R. Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts. J Vis Exp. (101), e52908 (2015).
  13. Ding, Z., et al. Epicardium-Derived Cells Formed After Myocardial Injury Display Phagocytic Activity Permitting In Vivo Labeling and Tracking. Stem Cells Transl Med. 5 (5), 639-650 (2016).
  14. Hartwig, S., et al. Secretome profiling of primary human skeletal muscle cells. Biochim Biophys Acta. 1844 (5), 1011-1017 (2014).
  15. Smolenski, R. T., Lachno, D. R., Ledingham, S. J. M., Yacoub, M. H. Determination of sixteen nucleotides, nucleosides and bases using high-performance liquid chromatography and its application to the study of purine metabolism in hearts for transplantation. J Chromatogr. 527 (2), 414-420 (1990).
  16. Decking, U. K., Juengling, E., Kammermeier, H. Interstitial transudate concentration of adenosine and inosine in rat and guinea pig hearts. Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), H1125-H1132 (1988).
  17. Heller, L. J., Mohrman, D. E. Estimates of interstitial adenosine from surface exudates of isolated rat hearts. J Mol Cell Cardiol. 20 (6), 509-523 (1988).
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Citazione di questo articolo
Tan, K., Ding, Z., Steckel, B., Hartwig, S., Lehr, S., Deng, X., Schrader, J. The Inverted Heart Model for Interstitial Transudate Collection from the Isolated Rat Heart. J. Vis. Exp. (124), e55849, doi:10.3791/55849 (2017).

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