Summary

Retroviral skanning: Mapping MLV Integrering Sites for å definere Cell-spesifikke Regulatory Regioner

Published: May 28, 2017
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokoll for genomgående bred kartlegging av integrasjonssteder for Moloney murine leukemi virusbaserte retrovirale vektorer i humane celler.

Abstract

Moloney-murine leukemi (MLV) virusbaserte retrovirale vektorer integreres overveiende i acetylerte forsterkere og promotorer. Av denne grunn kan mLV integrasjonssteder brukes som funksjonelle markører av aktive regulatoriske elementer. Her presenterer vi et retroviralt skanningsverktøy, som muliggjør genomsøkende identifikasjon av celle-spesifikke forsterkere og promotorer. Kort fortalt blir målcellepopulasjonen transdusert med en mLV-avledet vektor, og genomisk DNA blir spaltet med et ofte kuttende restriksjonsenzym. Etter ligering av genomiske fragmenter med en kompatibel DNA-linker tillater linker-mediert polymerasekjedereaksjon (LM-PCR) amplifikasjonen av virus-vert-genom-krysset. Massiv sekvensering av amplikonene brukes til å definere mLV-integrasjonsprofilen genom-bred. Endelig defineres klynger av tilbakevendende integrasjoner for å identifisere celle-spesifikke regulatoriske regioner, som er ansvarlige for aktiveringen av spesifikke transkripsjonsprogrammer av celletype.

<p class= "Jove_content"> Det retrovirale skanningsverktøyet tillater genomspennende identifisering av celle-spesifikke promotorer og forsterkere i prospektive isolerte målcellepopulasjoner. Spesielt representerer retroviral skanning en instrumentteknikk for retrospektiv identifisering av sjeldne populasjoner ( f.eks . Somatiske stamceller) som mangler robuste markører for fremtidig isolasjon.

Introduction

Cellidentitet bestemmes av uttrykket av spesifikke sett av gener. Rollen av cis-regulatoriske elementer, som for eksempel promotorer og forsterkere, er avgjørende for aktiveringen av spesifikke transkripsjonelle programmer av celletypen. Disse regulatoriske områdene kjennetegnes av spesifikke kromatinfunksjoner, som for eksempel spesielle histon-modifikasjoner, transkripsjonsfaktorer og ko-faktorbindinger, og kromatintilgjengelighet, som har vært mye brukt for deres genom-breddeidentifikasjon i flere celletyper 1 , 2 , 3 . Spesielt benyttes den genomgående profilen for acetylering av histon H3-lysin 27 (H3K27ac) vanligvis for å definere aktive promotorer, forsterkere og superforsterkere 4 , 5 , 6 .

Moloney murine leukemi virus (MLV) er et gamma retrovirus som er mye brukt for genOverføring i pattedyrceller. Etter infeksjon av en målcelle blir det retrovirale RNA-genomet retro transkribert i et dobbeltstrenget DNA-molekyl som binder virale og cellulære proteiner for å samle preintegrasjonskomplekset (PIC). PIC går inn i kjernen og binder vertscellekromatinet. Her medierer viral integrasen, en nøkkel PIC-komponent, integrering av det provirale DNA i vertscellegenomet. MlV-integrasjon i det genomiske DNA er ikke tilfeldig, men forekommer i aktive cis-regulatoriske elementer, slik som promotorer og forsterkere, på en celle-spesifikk måte 7 , 8 , 9 , 10 . Denne spesielle integrasjonsprofilen formidles av en direkte interaksjon mellom mLV integrasen og de cellulære bromodomain og extraterminalt domene (BET) proteiner 11 , 12 , 13 . BET-proteiner (BRD2, BRD3 ogBRD4) virker som en bro mellom vertschromatin og mLV PIC: Gjennom bromodomene anerkjenner de høyt acetylerte cis-regulatoriske regioner, mens extraterminalt domene interagerer med mLV integrase 11 , 12 , 13 .

Her beskriver vi retroviral skanning, et nytt verktøy for å kartlegge aktive cis-regulatoriske regioner basert på integrasjonsegenskapene til mLV. Kort fortalt blir celler transdusert med mLV-avledet retroviral vektor som uttrykker det forsterkede grønne fluorescerende protein (eGFP) reportergenet. Etter genomisk DNA-ekstraksjon forsterkes kryssene mellom den 3 'lange terminalrepetisjonen (LTR) av mlV-vektoren og det genomiske DNA ved hjelp av linker-mediert PCR (LM-PCR) og massivt sekvensert. MLV-integrasjonssteder er kartlagt til det humane genom og genomiske regioner som er svært målrettet av mLV, defineres som klynger av mLV-integrasjonssteder.

Retroviral skanningNing ble brukt til å definere celle-spesifikke aktive regulatoriske elementer i flere humane primære celler 14 , 15 . MLV-klynger samkartet med epigenetisk definerte promotorer og forsterkere, hvorav de fleste inneholdt aktive histon-merker, slik som H3K27ac, og var celle-spesifikke. Retroviral skanning tillater genomsøkende identifisering av DNA-regulatoriske elementer i prospektive rensede cellepopulasjoner 7 , 14 , så vel som i tilbakevendende definerte cellepopulasjoner, slik som keratinocytstamceller, som mangler effektive markører for fremtidig isolasjon 15 .

Protocol

1. MLV-transduksjon av humane celler Isolere målceller og transdudere dem med en mLV-avledet retroviral vektor som inneholder eGFP-reportergenet og pseudotypes med Vesicular Stomatitis Virus G (VSV-G) eller det amfotrope konvoluttglykoproteinet 16 . Hold mock-transduced celler som en negativ kontroll for følgende analyser. Siden mLV-baserte retrovirale vektorer kan transdusere effektivt delende celler, kultur målcellepopulasjonen i forhold som stimulerer ce…

Representative Results

Arbeidsflyt av den retrovirale skanningsprosedyren Arbeidsflyten for retroviral skanning er skematisert i figur 1 . Målcellepopulasjonen blir renset og transdusert med en mLV-avledet retroviral vektor som uttrykker et eGFP-reportergen. Transgenet flankeres av de to identiske lange terminale repetisjonene (5 'og 3' LTR), som sikrer syntese, revers transkripsjon og integrasjon av det virale ge…

Discussion

Her beskrev vi en protokoll for genomsøkende kartlegging av integrasjonsstedene for mLV, et retrovirus som målretter kromatinregioner, epigenetisk merket som aktive promotorer og forsterkere. Kritiske trinn og / eller begrensninger av protokollen inkluderer: (i) mLV-transduksjon av målcellepopulasjonen; (Ii) amplifisering av virus-vert-kryssinger av LM-PCR; (Iii) gjenfinning av en høy andel av integrasjonssteder. MLV-baserte retrovirale vektorer overfører effektivt delende celler. Den lave effektiviteten ved transd…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra Det europeiske forskningsrådet (ERC-2010-AdG, GT-SKIN), Det italienske ministeriet for utdanning, universiteter og forskning (FIRB-Futuro i Ricerca 2010-RBFR10OS4G, FIRB-Futuro i Ricerca 2012-RBFR126B8I_003 , EPIGEN Epigenomics Flagship Project), Det italienske Helsedepartementet (Unge forskere Ring 2011 GR-2011-02352026) og Imagine Institute Foundation (Paris, Frankrike).

Materials

PBS, pH 7.4 ThermoScientific 10010031 or equivalent
Fetal Bovine Serum ThermoScientific 16000044 or equivalent
0.2 ml tubes general lab supplier
1.5 ml tubes general lab supplier
QIAGEN QIAmp DNA mini Kit  QIAGEN 51306 or equivalent
T4 DNA ligase  New England BioLabs M0202T
T4 DNA Ligase Reaction buffer New England BioLabs M0202T
Linker Plus Strand oligonucleotide general lab supplier 5’-PO4-TAGTCCCTTAAGCGGAG-3’  (Purification grade: SDS-PAGE)
Linker Minus Strand oligonucleotide general lab supplier 5’-GTAATACGACTCACTATAGGGCTCCGCTTAAGGGAC-3’ (Purification grade: SDS-PAGE)
Tru9I Roche-Sigma-Aldrich 11464825001
SuRE/Cut Buffer M Roche-Sigma-Aldrich 11417983001
PstI  Roche-Sigma-Aldrich 10798991001
SuRE/Cut Buffer H Roche-Sigma-Aldrich 11417991001
Platinum Taq DNA Polimerase High Fidelity  Invitrogen 11304011
10mM dNTP Mix Invitrogen 18427013 or equivalent
PCR grade water general lab supplier
96-well thermal cycler (with heated lid) general lab supplier
linker primer general lab supplier 5’-GTAATACGACTCACTATAGGGC-3’ (Purification grade: PCR grade)
MLV-3’ LTR primer general lab supplier 5’-GACTTGTGGTCTCGCTGTTCCTTGG-3’ (Purification grade: PCR grade)
linker nested primer 454 general lab supplier 5’-GCCTTGCCAGCCCGCTCAG[AGGGCTCCGCTTAAGGGAC](Purification grade: SDS-PAGE)
MLV-3’ LTR nested primer 454 general lab supplier 5’-GCCTCCCTCGCGCCATCAGTAGC[GGTCTCCTCTGAGTGATTGACTACC](Purification grade: SDS-PAGE)
linker nested primer Illumina general lab supplier 5'-TCGTCGGCAGCGTCAGATGTGTATAAGAGACAG-[AGGGCTCCGCTTAAGGGAC](Purification grade: SDS-PAGE)
MLV-3’ LTR nested primer Illumina general lab supplier 5'-GTCTCGTGGGCTCGGAGATGTGTATAAGAGACAG-[GGTCTCCTCTGAGTGATTGACTACC](Purification grade: SDS-PAGE)
Sodium Acetate Solution (3M) pH 5.2 general lab supplier
Ethanol (absolute) for molecular biology Sigma-Aldrich E7023 or equivalent
Topo TA Cloning kit (with pCR2.1-TOPO vector) Invitrogen K4500-01
QIAquick Gel Extraction kit QIAGEN 28704
Agarose Sigma-Aldrich A9539 or equivalent
Ethidium bromide  Sigma-Aldrich E1510 or equivalent
100 bp DNA ladder Invitrogen 15628019 or equivalent
6X Loading Buffer ThermoScientific R0611 or equivalent
NanoDrop 2000 UV-Vis Spectrophotometer ThermoScientific ND-2000
Nextera XT Index kit Illumina FC-131-1001 or FC-131-1002
2x KAPA HiFi Hot Start Ready Mix  KAPA Biosystems KK2601
Dynal magnetic stand for 2 ml tubes Invitrogen 12321D or equivalent
Agencourt AMPure XP 60 ml kit Beckman Coulter Genomics A63881
Tris-HCl 10 mM, pH 8.5 general lab supplier
Agilent 2200 TapeStation system Agilent Technologies G2964AA or equivalent
D1000 ScreenTape Agilent Technologies 5067-5582 or equivalent
D1000 Reagents Agilent Technologies 5067-5583 or equivalent
KAPA Library Quantification Kit for Illumina platforms (ABI Prism) KAPA Biosystems KK4835
ABI Prism 7900HT Fast Real-Time PCR System Applied Biosystems 4329003
NaOH 1.0 N, molecular biology-grade general lab supplier
HT1 (Hybridization Buffer) Illumina  Provided in the MiSeq Reagent Kit
MiSeq Reagent Kit v3 (150 cycles) Illumina MS-102-3001
MiSeq System Illumina SY-410-1003
PhiX Control v3 Illumina FC-110-3001

Riferimenti

  1. Ernst, J., et al. Mapping and analysis of chromatin state dynamics in nine human cell types. Nature. 473 (7345), 43-49 (2011).
  2. Shlyueva, D., Stampfel, G., Stark, A. Transcriptional enhancers: from properties to genome-wide predictions. Nat Rev Genet. 15 (4), 272-286 (2014).
  3. Roadmap Epigenomics Consortium. Integrative analysis of 111 reference human epigenomes. Nature. 518 (7539), 317-330 (2015).
  4. Heintzman, N. D., et al. Histone modifications at human enhancers reflect global cell-type-specific gene expression. Nature. 459 (7243), 108-112 (2009).
  5. Creyghton, M. P., et al. Histone H3K27ac separates active from poised enhancers and predicts developmental state. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (50), 21931-21936 (2010).
  6. Hnisz, D., et al. Super-enhancers in the control of cell identity and disease. Cell. 155 (4), 934-947 (2013).
  7. Cattoglio, C., et al. High-definition mapping of retroviral integration sites identifies active regulatory elements in human multipotent hematopoietic progenitors. Blood. 116 (25), 5507-5517 (2010).
  8. Biasco, L., et al. Integration profile of retroviral vector in gene therapy treated patients is cell-specific according to gene expression and chromatin conformation of target cell. EMBO Mol Med. 3 (2), 89-101 (2011).
  9. De Ravin, S. S., et al. Enhancers are major targets for murine leukemia virus vector integration. J Virol. 88 (8), 4504-4513 (2014).
  10. LaFave, M. C., et al. mLV integration site selection is driven by strong enhancers and active promoters. Nucleic Acids Res. 42 (7), 4257-4269 (2014).
  11. Gupta, S. S., et al. Bromo- and extraterminal domain chromatin regulators serve as cofactors for murine leukemia virus integration. J Virol. 87 (23), 12721-12736 (2013).
  12. Sharma, A., et al. BET proteins promote efficient murine leukemia virus integration at transcription start sites. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (29), 12036-12041 (2013).
  13. De Rijck, J., et al. The BET family of proteins targets moloney murine leukemia virus integration near transcription start sites. Cell reports. 5 (4), 886-894 (2013).
  14. Romano, O., et al. Transcriptional, epigenetic and retroviral signatures identify regulatory regions involved in hematopoietic lineage commitment. Sci Rep. 6, 24724 (2016).
  15. Cavazza, A., et al. Dynamic Transcriptional and Epigenetic Regulation of Human Epidermal Keratinocyte Differentiation. Stem Cell Reports. 6 (4), 618-632 (2016).
  16. Miller, A. D., Law, M. F., Verma, I. M. Generation of helper-free amphotropic retroviruses that transduce a dominant-acting, methotrexate-resistant dihydrofolate reductase gene. Mol Cell Biol. 5 (3), 431-437 (1985).
  17. Cattoglio, C., et al. High-definition mapping of retroviral integration sites defines the fate of allogeneic T cells after donor lymphocyte infusion. PLoS One. 5 (12), e15688 (2010).
  18. Aiuti, A., et al. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy in patients with Wiskott-Aldrich syndrome. Science. 341 (6148), 1233151 (2013).
  19. Biffi, A., et al. Lentiviral hematopoietic stem cell gene therapy benefits metachromatic leukodystrophy. Science. 341 (6148), 1233158 (2013).
  20. Gabriel, R., et al. Comprehensive genomic access to vector integration in clinical gene therapy. Nat Med. 15 (12), 1431-1436 (2009).
  21. Gillet, N. A., et al. The host genomic environment of the provirus determines the abundance of HTLV-1-infected T-cell clones. Blood. 117 (11), 3113-3122 (2011).
check_url/it/55919?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Romano, O., Cifola, I., Poletti, V., Severgnini, M., Peano, C., De Bellis, G., Mavilio, F., Miccio, A. Retroviral Scanning: Mapping MLV Integration Sites to Define Cell-specific Regulatory Regions. J. Vis. Exp. (123), e55919, doi:10.3791/55919 (2017).

View Video