Summary

Kondrogen pelletsdannelse fra Cord Blood-avledede Induced Pluripotent Stamceller

Published: June 19, 2017
doi:

Summary

Her foreslår vi en protokoll for kondrogen differensiering fra blodblodmononukleærcelle-avledede, menneskeskapte pluripotente stamceller.

Abstract

Menneskelig leddbrusk mangler evnen til å reparere seg selv. Bruskdegenerasjon behandles således ikke ved kurativ, men ved konservative behandlinger. For tiden er det gjort anstrengelser for å regenerere ødelagt brusk med eks vivo utvidede kondrocytter eller benmarg-avledede mesenkymale stamceller (BMSCs). Den begrensede levedyktighet og ustabilitet av disse cellene begrenser imidlertid deres anvendelse i bruskutbygging. Menneskeinducerte pluripotente stamceller (hiPSCs) har fått vitenskapelig oppmerksomhet som et nytt alternativ for regenerative applikasjoner. Med ubegrenset selvfornyelsesevne og multipotency har hiPSCs blitt uthevet som en ny erstatningscellekilde for brusk reparasjon. Imidlertid er det en stor utfordring for deres kliniske anvendelse å skaffe en høy mengde chondrogenpellets av høy kvalitet. I denne studien brukte vi embryoidlegemer (EB) -avlede utvoksningsceller for kondrogen differensiering. Vellykket kondrogenese ble bekreftet av PCR anD-farvning med alcianblått, toluidinblått og antistoffer mot henholdsvis kollagentyper I og II (henholdsvis COL1A1 og COL2A1). Vi gir en detaljert metode for differensiering av blodmononukleære celle-avledede iPSCs (CBMC-hiPSCs) i kondrogenpellets.

Introduction

Bruken av hiPSCs representerer en ny strategi for narkotika-screening og mekanistiske studier av ulike sykdommer. Fra et regenerativt perspektiv er hiPSCer også en potensiell kilde for erstatning av skadede vev som har begrenset helbredelsesevne , som leddbrusk 1 , 2 .

Regenerering av innfødt leddbrusk har vært en utfordring i flere tiår. Articular brusk er et mykt, hvitt vev som belegger enden av bein, beskytter dem mot friksjon. Imidlertid har den begrenset regenerativ evne når den er skadet, noe som gjør selvreparasjon nesten umulig. Derfor har forskning fokusert på bruskregenerering vært igangsatt i flere tiår.

Tidligere ble in vitro differensiering i kondrogene linjer vanligvis utført med BMSC'er eller native kondrocytter isolert fra knæleddet 3 . DuettO deres kondrogen potensial, BMSC og nasjonale kondrocytter har mange fordeler som støtter deres bruk i kondrogenese. På grunn av deres begrensede ekspansjon og ustabile fenotype står imidlertid disse cellene overfor flere begrensninger i rekonstruksjonen av leddbruskdefekter. Under in vitro kulturbetingelser har disse cellene en tendens til å miste sine egne egenskaper etter 3-4 passasjer, noe som til slutt påvirker deres differensieringsevner 4 . Også i tilfelle av nasjonale kondrocytter er ytterligere skade på kneleddet uunngåelig ved oppnåelse av disse cellene.

I motsetning til BMSCs eller native kondrocytter, kan hiPSCs utvide ubestemt in vitro . Med de rette kulturbetingelsene har hiPSCs stort potensial som en erstatningskilde for kondrogen differensiering. Imidlertid er det utfordrende å endre hjerteegenskapene til hiPSCs 5 . Videre tar det flere kompliserte in vitro stePs å lede skjebnen til hiPSCs til en bestemt celletype. Til tross for disse komplikasjonene anbefales bruk av hiPSCs fortsatt på grunn av deres høye selvfornyelsesevner og deres evne til å skille seg inn i målrettede celler, inkludert kondrocyter 6 .

Kondrogen differensiering gjøres vanligvis med tredimensjonale kultursystemer, slik som pelletkulturen eller mikromasskulturen, ved bruk av MSC-lignende stamceller. Hvis du bruker hiPSCs, er protokollen for å generere MSC-lignende stamceller forskjellig fra de eksisterende protokollene. Noen grupper bruker monolagskultur av hiPSCs for direkte å konvertere fenotypen til MSC-lignende celler 7 . Imidlertid bruker de fleste studier EBs til å generere vekstceller som ligner MSCs 8 , 9 , 10 , 11 .

Ulike typer vekstfaktorer brukes til å indusere kondomNesis. Vanligvis brukes BMP- og TGFβ-familieproteiner, alene eller i kombinasjon. Differensiering har også blitt indusert med andre faktorer, slik som GDF5, FGF2 og IGF1 12 , 13 , 14 , 15 . TGFβ1 har vist seg å stimulere kondrogenese på en doseavhengig måte i MSCs 16 . Sammenlignet med den andre isotypen, TGFβ3, inducerer TGFβ1 kondrogenese ved å øke pre-brusk mesenkymcellekondensasjon. TGFβ3 inducerer kondrogenese ved betydelig økning av mesenkymcelleproliferasjonen 17 . Imidlertid brukes TGFβ3 oftere av forskere enn TGFβ1 7 , 10 , 18 , 19 . BMP2 øker ekspresjonen av gener relatert til kondrogen-matriks-komponentene i menneskerArtikulære kondrocytter under in vitro betingelser 20 . BMP2 øker ekspresjonen av gener som er kritiske for bruskdannelse i MSCs i kombinasjon med TGFβ-proteiner 21 . Det har også blitt vist at BMP2 synergistisk forbedrer effekten av TGFβ3 gjennom Smad og MAPK-veiene 22 .

I denne studien ble CBMC-hiPSCs aggregert i EB'er ved bruk av EB-medium i en petriskål med lav vedlegg. Utvekstceller ble indusert ved å feste EBsene til en gelatine-belagt parabolen. Kondrogen differensiering ved bruk av utvekstceller ble utført ved pelletkultur. Behandling med både BMP2 og TGFβ3 kondenserte vellykket cellene og indusert ekstracellulær matriks (ECM) proteinakkumulering for kondrogen pelletsdannelse. Denne studien antyder en enkel, men effektiv kronondrogen differensieringsprotokoll ved bruk av CBMC-hiPSCs.

Protocol

Denne protokollen ble godkjent av det institusjonelle gjennomgangskortet til det katolske universitetet i Korea (KC12TISI0861). CBMCs som ble brukt til omprogrammering, ble direkte hentet fra Cord Blood Bank i Seoul St. Marys Hospital. 1. Kondrogen Differensiering fra iPSCs CBMC-iPSC generasjon Generer CBMC-hiPSCs ved hjelp av protokollen vist i vårt tidligere arbeid 23 . Samle blodcellene i et 15 ml konisk rør og telle…

Representative Results

I denne studien genererte vi kondrogenpellets fra CBMC-hiPSCs ved å indusere utvekstceller fra EBs. Kondrogene differensier ble indusert ved bruk av CBMC-hiPSCs med bekreftet høy pluripotens 11 . En enkel ordning av protokollen vår er vist i figur 1A . Før differensiering ble iPSC-kolonier utvidet ( figur 1B ). De utvidede iPSCene ble samlet som EBs for å initiere differensiering ( <strong class="xfi…

Discussion

Denne protokollen har generert hiPSCer fra CBMCs. Vi reprogrammerte CBMCs til hiPSCs ved hjelp av en Sendai viral vektor som inneholder Yamanaka-faktorene 24 . Tre tilfeller ble brukt i differensiering, og alle eksperimenter genererte vellykket kondrogenpellets ved hjelp av denne protokollen. Mange studier har rapportert protokoller for differensiering av hiPSCs i kondrocyter 25 , 26 , 27 , <s…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av et tilskudd fra Korea Healthcare Technology FoU-prosjektet, departementet for helse, velferd og familie, Republikken Korea (HI16C2177).

Materials

Plasticware
100mm Dish TPP 93100
6-well Plate TPP 92006
50 mL Cornical Tube SPL 50050
15 mL Cornical Tube SPL 50015
10 mL Disposable Pipette Falcon 7551
5 mL Disposable Pipette Falcon 7543
12-well Plate TPP 92012
Name Company Catalog Number Description
E8 Medium Materials
DMEM/F12, HEPES Life Technologies 11330-057 E8 Medium (500 mL)
Sodium Bicarbonate Life Technologies 25080-094 E8 Medium (Conc.: 543 μg/mL)
Sodium Selenite Sigma Aldrich S5261 E8 Medium  (Conc.: 14 ng/mL)
Human Transfferin Sigma Aldrich T3705 E8 Medium (Conc.: 10.7 μg/mL)
Basic FGF2 Peprotech 100-18B E8 Medium  (Conc.: 100 ng/mL)
Human Insulin Life Technologies 12585-014 E8 Medium (Conc.: 20 μg/mL)
Human TGFβ1 Peprotech 100-21 E8 Medium (Conc.: 2 ng/mL)
Ascorbic Acid Sigma Aldrich A8960 E8 Medium  (Conc.: 64 μg/mL)
DPBS Life Technologies 14190-144
Vitronectin Life Technologies A14700
ROCK Inhibitor Sigma Aldrich Y0503
Name Company Catalog Number Description
Quality Control Materials
18 mm Cover Glass Superior HSU-0111580
4% Paraformaldyhyde Tech & Innovation BPP-9004
Triton X-100 BIOSESANG 9002-93-1
Bovine Serum Albumin Vector Lab SP-5050
Anti-SSEA4 Antibody Millipore MAB4304
Anti-Oct4 Antibody Santa Cruz SC9081
Anti-TRA-1-60 Antibody Millipore MAB4360
Anti-Sox2 Antibody Biolegend 630801
Anti-TRA-1-81 Antibody Millipore MAB4381
Anti-Klf4 Antibody Abcam ab151733
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11029
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11037
DAPI Molecular Probe D1306
Prolong gold antifade reagent Invitrogen P36934
4% Paraformaldyhyde Tech & Innovation BPP-9004
Tween 20 BIOSESANG T1027
Bovine Serum Albumin Vector Lab SP-5050
Anti-Collagen II antibody abcam  ab34712 1:100
Alcian blue Sigma Aldrich A3157-10G
Fast Green FCF Sigma Aldrich F7252-25G
Safranin O Sigma Aldrich 090m0039v
Nuclear fast red Americanmastertech STNFR100 
xylene Duksan 115 
Ethanol Duksan 64-17-5
Mayer's hematoxylin solution wako pure chemical industries LAK7534
DAP VECTOR LABORATORIES SK-4100
Slide Glass, Coated Hyun Il Lab-Mate HMA-S9914
Trizol Invitrogen 15596-018
Chloroform Sigma Aldrich 366919
Isoprypylalcohol Millipore 109634
Ethanol Duksan 64-17-5
RevertAid First Strand cDNA Synthesis kit Thermo Scientfic K1622
Name Company Catalog Number Description
Chondrogenic Differentiation Materials
DMEM Life Technologies 11885 Chondrogenic media component (500 mL)
Penicilin Streptomycin Life Technologies P4333 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Ascorbic Acid Sigma Aldrich A8960 Chondrogenic media component (Conc.: 64 μg/mL) 
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Life Technologies 11140-050 Chondrogenic media component (Conc.: 100 mM)
rhBMP-2 R&D 355-BM-050 Chondrogenic media component (Conc.:100ng/ml)
Recombinant Hman TGF-beta3 R&D 243-B3-002 Chondrogenic media component (Conc.:10ng/ml)
KnockOut Serum Replacement Life Technologies 10828-028 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
ITS+ Premix BD 354352 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Dexamethasone-Water Soluble  Sigma Aldrich D2915-100MG Chondrogenic media component (Conc.:10-7 M)
GlutaMAX Supplement Life Technologies 35050-061 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Sodium pyruvate solution Sigma Aldrich S8636 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
L-Proline Sigma Aldrich P5607-25G Chondrogenic media component (40μg/ml)

Riferimenti

  1. van Osch, G. J., et al. Cartilage repair: past and future–lessons for regenerative medicine. J Cell Mol Med. 13 (5), 792-810 (2009).
  2. Ahmed, T. A., Hincke, M. T. Strategies for articular cartilage lesion repair and functional restoration. Tissue Eng Part B Rev. 16 (3), 305-329 (2010).
  3. Diekman, B. O., et al. Cartilage tissue engineering using differentiated and purified induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (47), 19172-19177 (2012).
  4. Solchaga, L. A., Penick, K., Goldberg, V. M., Caplan, A. I., Welter, J. F. Fibroblast growth factor-2 enhances proliferation and delays loss of chondrogenic potential in human adult bone-marrow-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 16 (3), 1009-1019 (2010).
  5. Guzzo, R. M., Drissi, H. Differentiation of Human Induced Pluripotent Stem Cells to Chondrocytes. Methods Mol Biol. 1340, 79-95 (2015).
  6. Drissi, H., Gibson, J. D., Guzzo, R. M., Xu, R. H. Derivation and Chondrogenic Commitment of Human Embryonic Stem Cell-Derived Mesenchymal Progenitors. Methods Mol Biol. 1340, 65-78 (2015).
  7. Nejadnik, H., et al. Improved approach for chondrogenic differentiation of human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 11 (2), 242-253 (2015).
  8. Teramura, T., et al. Induction of mesenchymal progenitor cells with chondrogenic property from mouse-induced pluripotent stem cells. Cell Reprogram. 12 (3), 249-261 (2010).
  9. Koyama, N., et al. Human induced pluripotent stem cells differentiated into chondrogenic lineage via generation of mesenchymal progenitor cells. Stem Cells Dev. 22 (1), 102-113 (2013).
  10. Ko, J. Y., Kim, K. I., Park, S., Im, G. I. In vitro chondrogenesis and in vivo repair of osteochondral defect with human induced pluripotent stem cells. Biomaterials. 35 (11), 3571-3581 (2014).
  11. Nam, Y., Rim, Y. A., Jung, S. M., Ju, J. H. Cord blood cell-derived iPSCs as a new candidate for chondrogenic differentiation and cartilage regeneration. Stem Cell Res Ther. 8 (1), 16 (2017).
  12. Hotten, G. C., et al. Recombinant human growth/differentiation factor 5 stimulates mesenchyme aggregation and chondrogenesis responsible for the skeletal development of limbs. Growth Factors. 13 (1-2), 65-74 (1996).
  13. Murphy, M. K., Huey, D. J., Hu, J. C., Athanasiou, K. A. TGF-beta1, GDF-5, and BMP-2 stimulation induces chondrogenesis in expanded human articular chondrocytes and marrow-derived stromal cells. Stem Cells. 33 (3), 762-773 (2015).
  14. Shintani, N., Siebenrock, K. A., Hunziker, E. B. TGF-ss1 enhances the BMP-2-induced chondrogenesis of bovine synovial explants and arrests downstream differentiation at an early stage of hypertrophy. PLoS One. 8 (1), e53086 (2013).
  15. Fukumoto, T., et al. Combined effects of insulin-like growth factor-1 and transforming growth factor-beta1 on periosteal mesenchymal cells during chondrogenesis in vitro. Osteoarthritis Cartilage. 11 (1), 55-64 (2003).
  16. Worster, A. A., Nixon, A. J., Brower-Toland, B. D., Williams, J. Effect of transforming growth factor beta1 on chondrogenic differentiation of cultured equine mesenchymal stem cells. Am J Vet Res. 61 (9), 1003-1010 (2000).
  17. Knippenberg, M., et al. Differential effects of bone morphogenetic protein-2 and transforming growth factor-beta1 on gene expression of collagen-modifying enzymes in human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 15 (8), 2213-2225 (2009).
  18. Jang, Y., et al. Centrifugal gravity-induced BMP4 induces chondrogenic differentiation of adipose-derived stem cells via SOX9 upregulation. Stem Cell Res Ther. 7 (1), 184 (2016).
  19. Kang, R., et al. Mesenchymal stem cells derived from human induced pluripotent stem cells retain adequate osteogenicity and chondrogenicity but less adipogenicity. Stem Cell Res Ther. 6, 144 (2015).
  20. Tao, H., et al. Biological evaluation of human degenerated nucleus pulposus cells in functionalized self-assembling peptide nanofiber hydrogel scaffold. Tissue Eng Part A. 20 (11-12), 1621-1631 (2014).
  21. Sekiya, I., Larson, B. L., Vuoristo, J. T., Reger, R. L., Prockop, D. J. Comparison of effect of BMP-2, -4, and -6 on in vitro cartilage formation of human adult stem cells from bone marrow stroma. Cell Tissue Res. 320 (2), 269-276 (2005).
  22. Shen, B., Wei, A., Tao, H., Diwan, A. D., Ma, D. D. BMP-2 enhances TGF-beta3-mediated chondrogenic differentiation of human bone marrow multipotent mesenchymal stromal cells in alginate bead culture. Tissue Eng Part A. 15 (6), 1311-1320 (2009).
  23. Rim, Y. A., Nam, Y., Ju, J. H. Induced Pluripotent Stem Cell Generation from Blood Cells Using Sendai Virus and Centrifugation. J Vis Exp. (118), (2016).
  24. Kim, Y., et al. The Generation of Human Induced Pluripotent Stem Cells from Blood Cells: An Efficient Protocol Using Serial Plating of Reprogrammed Cells by Centrifugation. Stem Cells Int. 2016, 1329459 (2016).
  25. Oldershaw, R. A., et al. Directed differentiation of human embryonic stem cells toward chondrocytes. Nat Biotechnol. 28 (11), 1187-1194 (2010).
  26. Toh, W. S., et al. Differentiation and enrichment of expandable chondrogenic cells from human embryonic stem cells in vitro. J Cell Mol Med. 13 (9B), 3570-3590 (2009).
  27. Hwang, N. S., Varghese, S., Elisseeff, J. Derivation of chondrogenically-committed cells from human embryonic cells for cartilage tissue regeneration. PLoS One. 3 (6), e2498 (2008).
  28. Nakagawa, T., Lee, S. Y., Reddi, A. H. Induction of chondrogenesis from human embryonic stem cells without embryoid body formation by bone morphogenetic protein 7 and transforming growth factor beta1. Arthritis Rheum. 60 (12), 3686-3692 (2009).
  29. Guzzo, R. M., Scanlon, V., Sanjay, A., Xu, R. H., Drissi, H. Establishment of human cell type-specific iPS cells with enhanced chondrogenic potential. Stem Cell Rev. 10 (6), 820-829 (2014).
  30. Rim, Y. A., Park, N., Nam, Y., Ju, J. H. Generation of Induced-pluripotent Stem Cells Using Fibroblast-like Synoviocytes Isolated from Joints of Rheumatoid Arthritis Patients. J Vis Exp. (116), (2016).
  31. Pfaff, N., et al. Efficient hematopoietic redifferentiation of induced pluripotent stem cells derived from primitive murine bone marrow cells. Stem Cells Dev. 21 (5), 689-701 (2012).
  32. Xu, H., et al. Highly efficient derivation of ventricular cardiomyocytes from induced pluripotent stem cells with a distinct epigenetic signature. Cell Res. 22 (1), 142-154 (2012).
  33. Lee, S. B., et al. Contribution of hepatic lineage stage-specific donor memory to the differential potential of induced mouse pluripotent stem cells. Stem Cells. 30 (5), 997-1007 (2012).
  34. Hu, S., et al. Effects of cellular origin on differentiation of human induced pluripotent stem cell-derived endothelial cells. JCI Insight. 1 (8), 1-12 (2016).
  35. Vonk, L. A., de Windt, T. S., Slaper-Cortenbach, I. C., Saris, D. B. Autologous, allogeneic, induced pluripotent stem cell or a combination stem cell therapy? Where are we headed in cartilage repair and why: a concise review. Stem Cell Res Ther. 6 (94), 1-11 (2015).
  36. Gomez-Leduc, T., et al. Chondrogenic commitment of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in collagen matrices for cartilage engineering. Sci Rep. 6, 32786 (2016).
  37. Mareschi, K., et al. Isolation of human mesenchymal stem cells: bone marrow versus umbilical cord blood. Haematologica. 86 (10), 1099-1100 (2001).
  38. Wexler, S. A., et al. Adult bone marrow is a rich source of human mesenchymal ‘stem’ cells but umbilical cord and mobilized adult blood are not. Br J Haematol. 121 (2), 368-374 (2003).
  39. Zhang, X., et al. Isolation and characterization of mesenchymal stem cells from human umbilical cord blood: reevaluation of critical factors for successful isolation and high ability to proliferate and differentiate to chondrocytes as compared to mesenchymal stem cells from bone marrow and adipose tissue. J Cell Biochem. 112 (4), 1206-1218 (2011).
  40. Wagner, W., et al. Replicative senescence of mesenchymal stem cells: a continuous and organized process. PLoS One. 3 (5), e2213 (2008).
  41. Tarte, K., et al. Clinical-grade production of human mesenchymal stromal cells: occurrence of aneuploidy without transformation. Blood. 115 (8), 1549-1553 (2010).
  42. Chen, W. C., et al. Prediction of poor survival by cyclooxygenase-2 in patients with T4 nasopharyngeal cancer treated by radiation therapy: clinical and in vitro studies. Head Neck. 27 (6), 503-512 (2005).
  43. Guzzo, R. M., Gibson, J., Xu, R. H., Lee, F. Y., Drissi, H. Efficient differentiation of human iPSC-derived mesenchymal stem cells to chondroprogenitor cells. J Cell Biochem. 114 (2), 480-490 (2013).
check_url/it/55988?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Nam, Y., Rim, Y. A., Ju, J. H. Chondrogenic Pellet Formation from Cord Blood-derived Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (124), e55988, doi:10.3791/55988 (2017).

View Video