Summary

Tumor Engraftment i en Xenograft musemodel af menneskelige Mantle celle lymfom

Published: March 30, 2018
doi:

Summary

Mantle celle lymfom (MCL) er en vanskelig at behandle B-celle sygdom og det er lige så vanskeligt at etablere en xenograft musemodel af primære MCL at studere og udvikle therapeutics. Her beskriver vi vellykket etablering af MCL xenografts i mus til at hjælpe med at forstå dens underliggende biologi.

Abstract

B-lymfocytter er centrale aktører i immun celle omsætning og de primært hjem til og opholde sig i lymfoide organer. Mens normale B celler formere kun når stimuleret af T-lymfocytter, muterede B celler overleve og udvide selvstændigt i udefineret orgel nicher. Mantle celle lymfom (MCL) er en sådan lidelse, B-celle, hvor den mediane overlevelse af patienter er 4-5 år. Dette kræver brug af effektive mekanismer, som målsøgende og engraftment af disse celler er blokeret for at øge overlevelse og levetiden af patienter. Derfor, indsatsen for at udvikle en xenograft musemodel for at studere effekten af MCL therapeutics ved at blokere den homing mekanisme i vivo er af allerstørste betydning. Udvikling af animalske modtagere for humane celle xenotransplantation at teste tidlige fase narkotika har længe været forfulgt, som relevante prækliniske musemodeller er afgørende for skærmen nye terapeutiske agenter. Dette dyr model er udviklet til at undgå menneskelig graft afvisning og at etablere en model for menneskelige sygdomme, og det kan være et yderst nyttigt værktøj at studere sygdomsprogression af forskellige lymfom typer og udføre præklinisk afprøvning af kandidat narkotika for maligne hæmatologiske sygdomme som MCL. Vi etablerede en xenograft musemodel, der vil tjene som en fremragende ressource for at studere og udvikle nye terapeutiske tilgange til MCL.

Introduction

Lymfocytter af natur spiller en stor rolle i immunforsvaret overvågning, og lymfocyt handel er et kritisk skridt i montering antigen specifikke immunitet1,2. Denne proces omfatter overførsel af naive T-lymfocytter fra thymus at blodet, og derfra til sekundære lymfoide organer, herunder lymfeknuder, Peyerske plaques eller milten, hvor de mødes beslægtet antigener. B-lymfocytter differentiere i knoglemarven og overflytte som naiv celler i follikler af sekundære lymfoide organer3. Nogle af disse B-celler binder antigen med deres receptor og aktiveres ved specifikke T-celler. Spredning og differentiering af disse B-celler skubber de ikke-aktiveret, naive B-celler i zonen kappe af hårsækken. Aktiverede celler kan derefter differentiere i hukommelse B-celler, som patruljerer kroppen, eller modnes til immunoglobulin secernerende plasmaceller, der vandrer til knoglemarven4.

MCL opstår når naive B-lymfocytter i zonen kappe forvandle sig til en tumor. Disse lymfom celler er placeret i mikromiljø lymfoide organer og formere sig uafhængigt af specifikke T-lymfocytter kontrol. Men på et bestemt tidspunkt af tæthed de flygte fra dette niche og recirkulere i blodbanen i søgen efter nicher i andre organer. I betragtning af kompleksiteten af adhæsionsmolekyler og promiskuitet kemokiner og deres receptorer, mekanismen af dette cellulære menneskehandel i vivo er dårligt forstået og derfor hæmmer terapi. Nye metoder er nødvendige for effektivt blokere denne migration processen for at forhindre lymfom B celler fra at nå nye microenvironments.

MCL er en af de mest vanskelige at behandle B celle maligniteter. Udviklingen af en neoplastiske Fænotypen af MCL er resultatet af en omstændelig kaskade, karakteriseret ved erhvervelse af unikke biologiske egenskaber. På tidspunktet for diagnosen, de fleste patienter (70%) allerede er til stede med en dissemineret sygdom, med et flertal af tilfælde udstiller extranodal inddragelse i milt, knoglemarv og/eller mavetarmkanalen5,6. I behandlede patienter er tilbagefald af resistente tumorer inden for et par år fælles, selvom konventionel kemoterapi inducerer høje remission priser på kort sigt7,8. Her præsenterer vi en ny sygdom model, der kan hjælpe med at forstå MCL formidling og dets underliggende Biologi: vi etableret en menneskelig MCL xenograft musemodel, der stammer fra primær tumorceller af patienter. Vi håber, at denne model vil hjælpe med at udvikle terapeutiske strategier mod MCL formidling, og muligvis give nye kliniske perspektiver for optimal diagnose og behandling af recidiverende patienter.

Protocol

De menneskelige blodprøver blev brugt efter procedurer, der er godkendt af de lokale etiske og menneskelige eksperimenter udvalg af Genève University Hospital. Animalske procedurer blev udført i overensstemmelse med den institutionelle etiske udvalg af Animal Care i Genève, Schweiz og den kantonale Veterinærkontoret (nummer for tilladelsen: 26-GE-15). 1. forberedelse af primære perifert blod mononukleære celler (PBMC) af tæthed Gradient adskillelse <p clas…

Representative Results

Håndskriftet beskriver en optimeret protokol for en vellykket udvikling af en xenograft musemodel for engraftment MCL celler. Forberedelse af en ren celle population (i dette tilfælde MCL celler), er meget kritisk at udvikle vellykkede MCL xenografts. Figur 1 repræsenterer de forberedende skridt for mononukleære celler isolation fra MCL patientens blod af tæthed gradient adskillelse. Mononukleære celler behandles yderligere for at få rene B-celler ved …

Discussion

Kliniske forsøg er muligt for lægemidler, der er på et avanceret udviklingstrin, men kan ikke anvendes for drug discovery. Bestræbelser på at udvikle animalske modtagere for humane celle xenotransplantation for at teste tidlige fase medicin har længe været forfulgt. Her præsenterer vi en dyremodel, der undgår menneskelige graft afvisning og kan etablere en model for menneskelige sygdomme, såsom MCL. Dette er i øjeblikket en topmoderne xenograft model til at studere mekanismerne af menneskelige tumor engraftmen…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Ligue Genevoise contre le Cancer, Fondation Dr. Dubois Ferriere Dinu-Lipatti, Oncosuisse KPS-OCS, OCS-02260-08-2008-2914-02-2012, og Swiss National Science Foundation Grant 31003A_156760 og 310030-153456.

Materials

Ficoll-paque media GE Healthcare 17-1440-02 for separation of mononuclear cells
RPMI Medium 1640 Gibco-Life technologies 61870-010 for dilution of blood sample
Phosphate Buffered Saline (PBS) Sigma-Aldrich D8537 washing of cells
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A8412 for preparation of PBS with 1% BSA used in washing cells during isolation
CD19-APC700 Beckman Coulter B49212 human pan-B cell marker
CD20-APC Beckman Coulter A21693 human pan-B cell marker
CD20-ECD Beckman Coulter IM3607 human pan-B cell marker
CD5-PC 5.5 Beckman Coulter PN A70203 human T cell marker
CD23-PE Pharmingen 555711 Cell surface protein typically absent in MCL
CD45 KO Beckman Coulter B36294 Pan-leucocyte marker
CD200-PE Pharmingen 552475 Cell surface protein typically absent in MCL
NOD scid gamma (NSG) mice Charles River Laboratories 5557 used to develop MCL xenografts in this study
Easy sep Human B cell enrichment kit Stem cell technologies 19054 used to enrich B cells to obtain pure cells for injecting into mice
FACS Beckman Coulter Navios used to characterize MCL sample and to study the organs for MCL engraftment
1X ammonium chloride potassium buffer red blood lysis buffer (NH4Cl 8,024 mg/l; KHCO3 1,001 mg/l; EDTA.Na2·2H2O 3.722 mg/l )

Riferimenti

  1. Baggiolini, M., Dewald, B., Moser, B. Human chemokines: an update. Annu Rev Immunol. 15, 675-705 (1997).
  2. Baggiolini, M. Chemokines and leukocyte traffic. Nature. 392, 565-568 (1998).
  3. Janeway, C. A., Travers, P., Walport, M., Shlomchik, M. J. . Immunobiology: The Immune System in Health and Disease. , (2001).
  4. De Silva, N. S., Klein, U. Dynamics of B cells in germinal centres. Nat Rev Immunol. 15 (3), 137-148 (2015).
  5. Cohen, P. L., Kurtin, P. J., Donovan, K. A., Hanson, C. A. Bone marrow and peripheral blood involvement in mantle cell lymphoma. Br. J. Haematol. 101, 302-310 (1998).
  6. Meusers, P., Hense, J., Brittinger, G. Mantle cell lymphoma: diagnostic criteria, clinical aspects and therapeutic problems. Leukemia (Baltimore). 11 (Suppl 2), S60-S64 (1997).
  7. Herrmann, A., et al. Improvement of overall survival in advanced stage mantle cell lymphoma. J Clin Oncol. 27 (4), 511-518 (2008).
  8. Martin, P., et al. Intensive treatment strategies may not provide superior outcomes in mantle cell lymphoma: overall survival exceeding 7 years with standard therapies. Ann Oncol. 19 (7), 1327-1330 (2008).
  9. Iyengar, S., et al. Characteristics of human primary mantle cell lymphoma engraftment in NSG mice. Br J Haematol. 173 (1), 165-169 (2016).
  10. Klco, J. M., et al. Functional heterogeneity of genetically defined subclones in acute myeloid leukemia. Cancer cell. 25 (3), 379-392 (2014).
  11. Kerbel, R. S. Human tumor xenografts as predictive preclinical models for anticancer drug activity in humans: better than commonly perceived-but they can be improved. Cancer Biol Ther. 2 (4 Suppl 1), S134-S139 (2003).
  12. Johnson, J. I., et al. Relationships between drug activity in NCI preclinical in vitro and in vivo models and early clinical trials. Br. J. Cancer. 84, 1424-1431 (2001).
  13. Scholz, C. C., Berger, D. P., Winterhalter, B. R., Henss, H., Fiebig, H. H. Correlation of drug response in patients and in the clonogenic assay with solid human tumour xenografts. Eur. J. Cancer. 26, 901-905 (1990).
  14. Doñate, C., Vijaya Kumar, A., Imhof, B. A., Matthes, T. Frontline Science: Anti-JAM-C therapy eliminates tumor engraftment in a xenograft model of mantle cell lymphoma. J Leukoc Biol. 100 (5), 843-853 (2016).
check_url/it/56023?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Vijaya Kumar, A., Donate, C., Imhof, B. A., Matthes, T. Tumor Engraftment in a Xenograft Mouse Model of Human Mantle Cell Lymphoma. J. Vis. Exp. (133), e56023, doi:10.3791/56023 (2018).

View Video