Summary

Intratracheal vaksinering av Fischer 344 rotter med Francisella tularensis

Published: September 30, 2017
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver intratracheal vaksiner Fischer 344 rotter med Francisella tularensis. Denne prosedyren etterligner lunge eksponering av mennesker til denne potensielle biothreat agent og kan brukes til å teste vaksine og terapeutisk effekt mot lunge tularemia.

Abstract

Lunge smitte med bakterien Francisella tularensis kan føre til alvorlige og potensielt dødelige sykdommen, tularemia, hos mennesker. På grunn av gjeldende mangel av en godkjent tularemia vaksine for mennesker fokuserer forskning på vaksineutvikling utnytte riktig dyremodeller. Fischer 344 rotta har dukket opp som en modell som gjenspeiler menneskelige mottakelighet for F. tularensis infeksjon, og dermed er en attraktiv modell for tularemia vaksineutvikling. Intratracheal vaksinasjon av Fischer 344 rotte med F. tularensis etterligner lunge eksponering i mennesker. Vellykket levering i rotte luftrøret er avgjørende for lunge levering. Et laryngoskop med belysning brukes til riktig intubate tracheae bedøvet rotter; den riktige plasseringen i luftrøret bestemmes av en enkel enhet å oppdage puste. Etter intubasjon F. tularensis kulturen leveres i en målt dose via sprøyte. Denne teknikken standardiserer lunge levering av F. tularensis i rotte luftrøret evaluere vaksinen.

Introduction

F. tularensis (Ft) forårsaker menneskelig sykdommen, tularemia. Når bakterier er ervervet gjennom lunge ruten, fører dette til pneumonic tularemia, som har høy sykelighet og dødelighet1. F. tularensis regnes et biothreat agent på grunn av fare forbundet med aerosolized former, og det finnes for øyeblikket ingen vaksine godkjent for menneskelig bruk i USA Et intenst arbeid pågår å utvikle vaksiner og terapeutiske tiltak mot pneumonic tularemia, å beskytte befolkningen mot ulovlig bruk av denne bakteriell biothreat.

Alle tularemia undersøkelser har fokusert på musemodell, ekstreme følsomhet for mus til F. tularensis infeksjon og utbredelsen av reagenser. Imidlertid mus har vist seg for å være en vanskelig modell for vaksineutvikling, på grunn av vanskelighetene med å demonstrere vaksinen i denne modell2. Nylig er Fischer 344 rotta utviklet som en modell for tularemia vaksine utvikling3. Følsomheten av Fischer 344 rotta å forskjellige F. tularensis underarter etterligner menneskelige følsomhet4og rotter kan beskyttes mot F. tularensis lunge utfordring ved vaksinasjon med en live vaksine belastning kjent for å beskytte mennesker5,6,7. Fordi Fischer 344 rotte modeller noen funksjoner i F. tularensis infeksjon av mennesker, kan det være en svært nyttig modell for utvikling av en vaksine som beskytter mot lunge F. tularensis eksponering.

En effektiv vaksine må beskytte mennesker mot lunge eksponering for F. tularensis. Mest sannsynlig pulmonal eksponeringen fra weaponized F. tularensis ville være aerosolized bakterier inhalert i lungene8. Imidlertid aerosol generasjon av F. tularensis er både farlig og tungvint, og krever spesialisert utstyr og forvaring. En alternativ rute lunge eksponering i rotte som er kanskje mer tilpasningsdyktige for flere laboratorier mangler spesialisert utstyr er via intratracheal inoculation6. Denne teknikken bruker et laryngoskop for den riktige plasseringen av et kateter i luftrøret av en bedøvet rotte. Plassering i luftrøret, i stedet for spiserøret, kontrolleres av en enkel enhet som visualiserer luftstrøm fra lungene. F. tularensis leveres deretter inn i lungene gjennom kateter av administrasjonen med en sprøyte, etterfulgt av innføringen av luft i kateter å sikre lunge levering av bakterier. Derimot Jemski5 tidligere rapportert at F. tularensis inokulert i Fischer 344 rotter via intranasal-ruten ikke kan bli kultivert fra lungene til 3 dager etter vaksinasjon, som angir at intranasal vaksinasjon i rotter gjør ikke resulterer i direkte levering av bakterier inn i lungene.

Velg agent former for F. tularensis (F. tularensis subsp. tularensis, F. tularensis subsp. holarctica) krever biosikkerhet nivå 3 (BSL3) containment prosedyrer, som ville hindre videography. Imidlertid F. novicida (Fn) er unntatt fra Velg agent status på grunn av sin avirulence hos friske mennesker, og kan brukes trygt under grad 2 (BSL2) forhold9,10. Videre fungerer Fn som grunnlaget for live dempes vaksiner som kan beskytte mot F. tularensis lunge eksponeringen når levert via intratracheal inoculation11,12,13. Teknikken presenteres her muliggjør studiet av infeksjoner som oppstår gjennom lunge ruten utnytte rotter som modell for mennesker. Denne teknikken kan utføres uten behov for spesialisert aerosol-generering utstyr. FN ble brukt teknikker filmet her.

Protocol

dette arbeidet ble utført i strengt samsvar med anbefalingene i Guide og bruk av forsøksdyr av National Institutes of Health. Dyr protokoller som omfatter Red ble godkjent av University of Texas i San Antonio institusjonelle Animal Care og bruk Committee (IACUC) under protokollen MU009(RA). 1. klargjør kateter, Trachea indikator og F. tularensis Inoculum Forberede kateter (20 G x 2 i) kutte 20 G x 2 p og grind spissen av nålen en stump og glatt…

Representative Results

Humoral respons til intratracheal vaksinasjon av F. tularensis i rotte kan bestemmes av enzymet knyttet immunosorbent analysen (ELISA) mot UV-inaktivert bakterier, som beskrevet tidligere11. Totalt immunglobulin G (IgG) svar Fischer 344 rotter deaktivert hele cellen bakterier ble vurdert innlegg-intratracheal inoculation med en svekket stamme av Fn (107 CFU inoculum) på dag 14 og dag 28 (figur 1). Uekte-vaksinert r…

Discussion

Fischer 344 rotta er blitt en viktig modell for tularemia vaksine utvikling3. Eksponering for F. tularensis gjennom lunge ruten er avgjørende for å demonstrere effekt mot weaponized former for F. tularensis, fordi dette er levert som aerosoler. Intratracheal vaksinering av rotte forenkler eksponering av rotte lungene til F. tularensis uten behov for store, dyrt og komplisert aerosol generere utstyr. Alle eksperimenter utnytte Velg agent former for F. tularensis</em…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av forsvar trussel reduksjon Agency (DTRA) under kontrakt HDTRA1-14-C-0116 og senter for fremragende infeksjon Genomics (DOD #W911NF-11-1-0136).

Materials

GreenLine fiber optic blade size 0 Carefusion 5-5231-00 Macintosh American profile
GreenLight system laryngoscope handle Carefusion 4559GSP
Exel International Safelet I.V. Catheter EXEL INTERNATIONAL 26743
Slip Tip Sterile Syringes 1ml BD 309659
Broad Point Dressing Thumb Forceps Thermo Scientific 76-302
200ul barrier tip GeneseeScientific 24-142
1000ul pipette tip Olympus Plastics 24-173
Dremel 3000-2/28 Rotary tool kit Dremel 3000228
Rodent Intubation Stand Braintree Scientific RIS 200
Isoflurane Butler Schein NDC 11695-6776-2
Rodent anesthesia machine Surgivet VTC302 Classic T3
Rodent Anesthesia chamber Braintree Scientific AB 1

References

  1. Ellis, J., Oyston, P. C. F., Green, M., Titball, R. Tularemia. Clin Microbiol Rev. 15 (4), 631-646 (2002).
  2. Lyons, C. R., Wu, T. H. Animal models of Francisella tularensis infection. Ann N Y Acad Sci. 1105, (2007).
  3. Hutt, J. A., Lovchik, J. A., Dekonenko, A., Hahn, A. C., Wu, T. H. The Natural History of Pneumonic Tularemia in Female Fischer 344 Rats after Inhalational Exposure to Aerosolized Francisella tularensis subspecies tularensis Strain Schu S4. Am J Pathol. 187 (2), 252-267 (2017).
  4. Ray, H. J., et al. The Fischer 344 rat reflects human susceptibility to Francisella pulmonary challenge and provides a new platform for virulence and protection studies. PloS one. 5, e9952 (2010).
  5. Jemski, J. V. Respiratory tularemia: comparison of selected routes of vaccination in Fischer 344 rats. Infect Immun. 34 (3), 766-772 (1981).
  6. Wu, T. H., et al. Vaccination of Fischer 344 rats against pulmonary infections by Francisella tularensis type A strains. Vaccine. 27 (34), 4684-4693 (2009).
  7. Mara-Koosham, G., Hutt, J. A., Lyons, C. R., Wu, T. H. Antibodies contribute to effective vaccination against respiratory infection by type A Francisella tularensis strains. Infect Immun. 79 (4), 1770-1778 (2011).
  8. Oyston, P. C., Sjostedt, A., Titball, R. W. Tularaemia: bioterrorism defence renews interest in Francisella tularensis. Nat Rev Microbiol. 2 (12), 967-978 (2004).
  9. Kingry, L. C., Petersen, J. M. Comparative review of Francisella tularensis and Francisella novicida. Front Cell Infect Microbiol. 4, 35 (2014).
  10. Rohmer, L., et al. Comparison of Francisella tularensis genomes reveals evolutionary events associated with the emergence of human pathogenic strains. Genome Biol. 8 (6), R102 (2007).
  11. Chu, P., et al. Live attenuated Francisella novicida vaccine protects against Francisella tularensis pulmonary challenge in rats and non-human primates. PLoS Pathog. 10 (10), e1004439 (2014).
  12. Signarovitz, A. L., et al. Mucosal Immunization with Live Attenuated Francisella novicida U112ΔiglB Protects against Pulmonary F. tularensis SCHU S4 in the Fischer 344 Rat Model. PloS one. 7 (10), e47639 (2012).
  13. Cunningham, A. L., et al. Enhancement of vaccine efficacy by expression of a TLR5 ligand in the defined live attenuated Francisella tularensis subsp. novicida strain U112DiglB::fljB. Vaccine. 32 (40), 5234-5240 (2014).
check_url/56123?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nguyen, J. Q., Zogaj, X., Adelani, A. A., Chu, P., Yu, J., Arulanandam, B. P., Klose, K. E. Intratracheal Inoculation of Fischer 344 Rats with Francisella tularensis. J. Vis. Exp. (127), e56123, doi:10.3791/56123 (2017).

View Video