Articolo metodologico

Metodologia per lo sviluppo di tavole di sopravvivenza per insetti Sessile nel campo utilizzando la Whitefly, Bemisia tabaci, in cotone come un modello di sistema

DOI:

10.3791/56150

⸱

1 novembre 2017

 , 
1USDA-ARS, Arid-Land Agricultural Research Center, 2Department of Entomology, Maricopa Agricultural Center, University of Arizona

In questo articolo

Sommario

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Tabelle di vita consentono la quantificazione delle fonti e dei tassi di mortalità in popolazioni di insetti e contribuiscano alla comprensione, la predizione e la manipolazione dinamica di popolazione negli agroecosistemi. Metodi per lo svolgimento e l'analisi di tabelle di vita basate su coorte nel campo per un insetto con stadi immaturi sessili sono presentati.

Abstract

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Tabelle di vita forniscono un mezzo per misurare le pianificazioni di nascita e di morte da popolazioni nel corso del tempo. Inoltre può essere utilizzati per quantificare le fonti e i tassi di mortalità nelle popolazioni, che ha una varietà di applicazioni in ecologia, compresi gli ecosistemi agricoli. Orizzontale, o basati su coorte, vita tabelle forniscono per il metodo più diretto e preciso di quantificare i tassi di popolazione vitale perché seguire un gruppo di individui in una popolazione dalla nascita alla morte. Qui, i protocolli sono presentati per lo svolgimento e l'analisi di tabelle di vita basate su coorte nel campo che si avvale della natura sessile l'immaturo di fasi della vita di un insetto parassita globale, Bemisia tabaci. Individuali degli insetti si trovano sul lato inferiore delle foglie di cotone e sono contrassegnati da un piccolo cerchio intorno l'insetto di disegno con una penna non tossico. Questo insetto possa allora essere osservato ripetutamente nel tempo con l'ausilio di lenti a mano per misurare lo sviluppo da uno stadio a altro e per identificare le cause di fase-specifici della morte connesso con mortalità naturale e introdotto le forze. Analisi spiegano come misurare correttamente la mortalità più forze che agiscono contemporaneamente all'interno di ogni fase e come utilizzare tali dati per fornire metriche dinamiche di popolazione significativa. Il metodo non tiene direttamente conto per adulto sopravvivenza e riproduzione, che limita l'inferenza alla dinamica delle fasi acerbe. Un esempio è presentato incentrata sulla misurazione dell'impatto del bottom-up (qualità della pianta) e discendente (nemici naturali) effetti sulla mortalità dinamica di b. tabaci nel sistema di cotone.

Introduzione

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Tavole di mortalità sono uno strumento comune con una lunga storia in ecologia1,2. Tavole di sopravvivenza sono che essenzialmente una pianificazione delle nascite e morti in una popolazione nel tempo e tali dati possa essere utilizzata per quantificare un numero di parametri importanti per la comprensione e la previsione dinamica di popolazione. Tabelle di vita possono anche fornire informazioni sulle cause di morte che sono importanti per comprendere le interazioni trofiche e nello sviluppo di strategie di controllo per la gestione dei parassiti nei sistemi agricoli e naturali. Numerose tavole di sopravvivenza sul campo sono stati costruiti per insetti3,4,5, e analisi hanno fornito importanti intuizioni dinamiche, regolamento e previsione delle popolazioni di insetti in molti gestiti e sistemi naturali6,7,8,9,10,11,12,13,14. La tabella dei termini di vita viene anche spesso utilizzato per descrivere le ricerche di laboratorio basato che esaminano in gran parte pianificazioni di nascite e morti, ma in condizioni artificiali che non espongono l'insetto a forze di mortalità naturale e realistiche variabili ambientali. Generalmente, l'obiettivo delle ricerche di laboratorio è quello di stimare il potenziale biotico comparativo di una specie. La messa a fuoco dei metodi descritti qui è per campo basata di indagini che definiscono realizzata potenziale relativo all'ambiente.

Tabelle di vita possono essere caratterizzate come orizzontale, in cui un gruppo reale di uguali individui invecchiati sono seguito dall'inizio della loro vita fino alla morte, o verticale, dove vengono prelevati campioni frequenti attraverso il tempo di una popolazione con una struttura della presunta età stabile e quindi vitale tariffe vengono dedotti dalle coorti matematicamente costruito2,15. Il tipo di tabella di vita che può essere distribuito dipende dalla natura dell'insetto. Tabelle di vita orizzontale spesso possono essere sviluppate per gli insetti univoltine (una generazione all'anno), mentre tale approccio può essere molto impegnativo per un insetto multivoltine con multiplo e ampiamente sovrapposti generazioni ogni anno. Alcuni dei metodi analitici sono state proposte e utilizzato per sviluppare tabelle di vita verticale per le popolazioni di insetti (Vedi Southwood2 per esempi). La metodologia ha dimostrata qui consente lo sviluppo di tabelle di vita basati su coorte, orizzontale nel campo per gli insetti multivoltine con caratteristiche di storia di vita specifica, in particolare, la presenza di fasi di vita sessile. Il metodo è dimostrato per un chiave dei parassiti in cotone come sistema modello.

Le mosche bianche, Bemisia tabaci biotipo B (= Bemisia argentifolii, Medio Oriente-Asia minore 116) è un parassita globale dell'agricoltura che impatti negativamente la resa e la qualità in molte colture agronomici ed orticoli, tra cui protetto da sistemi agricoli in regioni temperate17. Gli impatti dovuti a floema alimentazione che interrompe il flusso dei nutrienti, disordini dell'eziologia sconosciuta causata dall'alimentazione ninfale, trasmissione di numerosi virus vegetali e raccolto tra gli effetti di qualità dovuto il deposito di melata18,19 . L'insetto ha una gamma vasta ed è multivoltine, avendo come il 12-13 generazioni all'anno a seconda della regione e di risorse di cibo disponibili20. Sfide di gestione sono anche aggravate dal suo alto potenziale riproduttivo, la capacità di disperdere e migrare all'interno e tra sistemi agricoli, la mancanza di una fase di quiescenza (diapausa o estivazione) e la sua disposizione di sviluppare rapidamente una resistenza agli insetticidi utilizzati per soppressione21,22.

Notevoli progressi compiuti in via di sviluppo strategie di lotta integrata (IPM) gestire efficacemente ed economicamente le popolazioni di questo parassita in colture colpite23,24,25. Questi sistemi di gestione sono stati fondati su una solida comprensione fondamentale della dinamica delle popolazioni di b. tabaci e tabelle di vita sono state una tecnica chiave che hanno permesso questa comprensione. In Arizona, tavole di sopravvivenza hanno consentito la stima e l'identificazione delle forze di mortalità importante per b. tabaci in più raccolto sistemi13,26, hanno permesso la misurazione delle dinamiche di mortalità relativi a strategie di gestione, compresi gli effetti non bersaglio di insetticidi14, hanno fornito un mezzo di stima potenziali funzionali non bersaglio effetti di cotone transgenico producendo proteine insetticide27, hanno sostenuto rigorose valutazione di un programma di controllo biologico classico28 (Naranjo, dati non pubblicati) e ci ha aiutato a esplorare gli effetti comparativi di top-down e bottom-up effetti su pest dinamiche29. Tutte queste applicazioni hanno distribuito la metodologia descritta qui. L'approccio potrebbe essere utile per lo studio dell'ecologia della popolazione degli insetti in un certo numero di sistemi naturali e gestiti.

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Protocollo

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Nota: le tecniche descritte di seguito sono considerate parziale vita tabelle perché non includere in modo esplicito la riproduzione o la mortalità degli stadi adulti. La coorte di termine è equivalente a generazione perché esamina mortalità dall'uovo alla fase adulta.

1. stabilire campo siti

  1. tabelle di vita condotta in qualsiasi momento durante la crescita del raccolto una volta che gli insetti sono presenti. La scelta di quando effettuare gli studi dipenderà di scopi e obiettivi della ricerca.
  2. Selezionare le due righe del raccolto vicino al centro della trama per minimizzare gli effetti di bordo dalle circostanti piazzole o aree incolte. Contrassegnare la testa di ogni riga con un flag di filo o un paletto di legno per facilitare la rilocazione facile una volta che il raccolto ottiene grande.
  3. Spostare 3-4 m dal bordo della trama parallela alla riga. Utilizzare una riga per stabilire coorti di uovo e il secondo per stabilire coorti ninfa

2. Stabilire uovo coorti

  1. usare una lente d'ingrandimento: 8x per cercare appena le uova deposte sul lato inferiore delle foglie nella parte superiore del gambo principale della pianta del cotone (in genere il secondo o terzo nodo dall'alto).
    Nota: Fasi di vita di b. tabaci sono generalmente distribuiti verticalmente nel baldacchino pianta con le uova nella parte superiore della pianta e progressivamente più grandi fasi nymphal qui sotto. In questo modo perché la pianta aggiunge foglie sopra il sito di deposizione delle uova iniziale come cresce e 1 st instar ninfe trasferirsi sull'anta stessa con l'uovo.
    1. Uso un potere superiore 15 X lente per osservare uova fresche e verificare i dati prima di utilizzare l'obiettivo 8x per contrassegnare l'insetto. Uova fresche hanno una brillante colorazione bianca sotto la lente e si distinguono dalle uova che sono vecchio (figure 1A e 1B). Uova di scuriscono un colore tannish Man mano che maturano.
  2. Utilizzare un pennarello indelebile nero non tossico, ultra-fine-punto per disegnare un piccolo cerchio intorno all'uovo. Disegnare il cerchio piccolo abbastanza per minimizzare la probabilità di una donna che posa un altro uovo all'interno del cerchio più tardi.
    1. Tagliare un buco o fessura nel lato del 8 X lente d'ingrandimento con un seghetto o un trapano affinché la penna può essere inserita e visto attraverso la lente quando si disegna ( Figura 2A).
  3. Ripetere questo processo sulla foglia stessa, se possibile, per contrassegnare altre uova, segnando un totale di non più di quattro uova su una singola foglia e non più di un uovo per settore di foglia. Per il cotone, la foglia è suddivisa in quattro settori da tre nervature principali ( Figura 3).
  4. Legare una piccola etichetta di cartone leggera intorno il picciolo della foglia contenenti uova contrassegnato. Numero del tag e includono notazione per il numero di trama o trattamento secondo il disegno sperimentale ( Figura 2B).
  5. Legare una lunghezza lunga di 1 m di nastro diminuente attorno al fusto principale nella parte superiore della pianta. Utilizzare un legame di arco-stile, in modo che il nastro può essere facilmente spostato come necessario tenerlo visibile per ripetute visite a questa posizione nel campo.
    6. Numero di
  6. foglia di record e informazioni posizionali su un notebook portatile analogico o elettronico (tabella 1). Informazioni posizionali utilizza i settori della foglia più finemente nota posizione (ad es., 1-1, 1-2, 1-4 denotano le uova nei settori 1, 2 e 4 sul foglio #1).
  7. Stabilire ogni coorte in un solo giorno.
    Nota: Un gruppo in un determinato terreno è composto da un minimo di 50 uova totale.
    1. Non più di una foglia di uso per pianta per distribuire meglio i membri della coorte.
      Nota: A seconda della densità dell'insetto, questo può essere costituito da ovunque da 13 foglie con 3-4 uova ciascuno o 50 fogli con un uovo ogni. Le diverse piante sono selezionate per distribuire le foglie contrassegnate lungo tanto della riga possibile.

3. Stabilire la ninfa coorti

  1. uso un 8x lente d'ingrandimento per cercare appena depositato 1 st instar ninfe sulla parte inferiore delle foglie circa 3-5 foglie verso il basso dalla parte superiore del gambo principale della pianta del cotone. Utilizzare una lente X 15 per verificare identificazione prima marcatura utilizzando l'8x lente.
  2. Utilizzare un pennarello indelebile nero non tossico, ultra-fine-punto per disegnare un piccolo cerchio intorno la ninfa. Disegnare il cerchio piccolo abbastanza per minimizzare la probabilità di un crawler sedimentazione all'interno del cerchio più tardi.
    Nota: Appena schiusi 1 st instar ninfe sono chiamate crawler, che può spostare diversi cm durante le prime ore dopo uova schiudono. Esso allora " si deposita " su un sito dove alimentano e muta senza mai muoversi nuovamente fino a quando l'adulto emerge. Questi depositati 1 st instar ninfe ( Figura 1) si distinguono dal crawler. In primo luogo, essi sono immobili e secondo, sono più 2-dimensionale e laici stretti e piatto sulla foglia e hanno un colore ambrato leggermente più traslucido.
    1. Tagliare un buco o fessura nel lato del 8 X lente d'ingrandimento con un seghetto o un trapano affinché la penna può essere inserita e visto attraverso la lente quando si disegna ( Figura 2A).
  3. Ripetere questo processo sulla foglia stessa, se possibile, per contrassegnare altre ninfe, ninfe non più di quattro su un foglio singolo e non più di una ninfa per settore di foglia di marcatura. Per il cotone, la foglia è suddivisa in quattro settori da tre nervature principali ( Figura 3).
  4. Legare una piccola etichetta di cartone leggera intorno il picciolo della foglia contenenti contrassegnata Ninfa. Numero del tag e includono notazione per il numero di trama o trattamento secondo il disegno sperimentale ( Figura 2B).
  5. Legare una lunghezza lunga di 1 m di nastro diminuente attorno al fusto principale nella parte superiore della pianta. Utilizzare un legame di arco-stile, in modo che il nastro può essere facilmente spostato come necessario tenerlo visibile per ripetute visite a questa posizione nel campo.
    6. Numero di
  6. foglia di record e informazioni posizionali su un notebook portatile analogico o elettronico (tabella 1). Informazioni posizionali utilizza i settori della foglia più finemente nota posizione (ad es., 1-1, 1-2, 1-4 denotano ninfe nei settori 1, 2 e 4 sul foglio #1).
  7. Per garantire che si stabilirono 1 st instar ninfe e non crawler sono contrassegnati, tornare indietro per ogni foglia contrassegnato e osservare l'insetto contrassegnato circa 1-2 h dopo la configurazione iniziale. Sottolineando di depositato ninfe possono essere necessarie.
  8. Stabilire ogni coorte in un solo giorno.
    Nota: Un gruppo in un determinato terreno è composto da un minimo di 50 ninfe totale. Non più di una foglia è utilizzata per pianta per distribuire meglio i membri della coorte. A seconda della densità dell'insetto, questo può essere costituito da ovunque da 13 foglie con 3-4 ninfe ogni o 50 fogli con una ninfa ogni. Le diverse piante sono selezionate per distribuire le foglie contrassegnate lungo tanto della riga come possibile. A causa di 1 ° instar crawler stadio, le uova contrassegnate nel protocollo 2 non sono gli stessi insetti che sono poi seguiti come ninfas. così, nessuna mortalità crawler è misurata e la tabella di vita è leggermente sconnesso in tempo perché uovo e ninfa coorti sono in genere stabiliti nello stesso giorno. La ricerca ha dimostrato il crawler mortalità è trascurabile e può essere essenzialmente ignorato 30.

4. Osservazione e registrazione di Egg Hatch e mortalità

  1. dopo 8-10 d (28-32 ° C; condizioni medie di estate Arizona) dopo l'istituzione delle coorti di uovo, raccogliere le foglie contenenti uova contrassegnate e tornare al laboratorio per l'osservazione sotto un microscopio per dissezione. Le uova sono troppo piccole per valutare chiaramente la mortalità e le cause di mortalità nel campo.
  2. Determinare le cause di morte per le uova e registrare sul quaderno avviata presso stabilimento di coorte (tabella 1).
    Nota: La morte è caratterizzato come dislocazione, predazione o inviability. Dislocazione: l'uovo è mancante a causa di eventi atmosferici (vento, che soffia polvere, pioggia) o masticare predazione. Predazione: predatori succhiare lasciano alle spalle un corion compresso ( Figura 4 K). Uova covate possono apparire crollate, ma ci sarà una fessura verticale in corion dell'uovo. Utilizzare un pin minuten per stuzzicare il corion sulla foglia sotto il microscopio per cercare questa fessura. Inviability: le uova non si schiudono dopo il periodo di 8-10 d e sono di un colore marrone scuro. Sotto Arizona estate condizioni (28-32 ° C) uova sarebbero normalmente schiudono in 5-7 giorni. Questo può essere diverso in altre regioni e potrà essere necessario in tempo di raccolta dal campo.

5. Osservazione e registrazione di sviluppo Ninfale e mortalità

  1. uno o due giorni dopo l'istituzione di coorte, utilizzare una lente X 15 per valutare lo sviluppo di ninfe e assegnare una causa di mortalità se morto. Formulare osservazioni almeno tre volte alla settimana (ogni altro giorno). Dimensione relativa
    1. uso ( Figura 1 -G) e il momento dopo l'istituzione di valutare instar.
      Nota: Ci sono quattro postembrionale Ninfale e sviluppo è rapido in condizioni di estate di Arizona (28-32 ° C) con ciascuno dei primi tre stadi durano circa 2 d e lo stadio finale dura 3-5 p (totale sviluppo Ninfale 2 settimane o meno). Nuovi osservatori dovrebbero imparare instar dimensioni osservando insetti allevati in laboratorio o serra sulla pianta ospite di interesse. Il volume relativo nell'addome di bacteriosomes (organi harboring simbionte delle mosche bianche) rispetto alla dimensione complessiva di corpo è un indicatore utile di nymphal instar ( Figura 1 -G). Ninfe appena standard sono molto piatto e traslucido. Sono ninfe pronte a molt più turgida, a cupola nel profilo e opachi.
    2. Determinare le cause di morte per le ninfe e registrare sul quaderno avviata presso stabilimento di coorte (tabella 1).
      Nota: La morte è caratterizzata come dislocazione, parassitismo, predazione o sconosciuto a seconda instar ( Figura 4). Dislocazione: ninfe di ogni fase sono mancanti a causa di eventi atmosferici (vento, che soffia polvere, pioggia) o masticare predazione. Stimare la fase delle ninfe sloggiate come la fase media di ninfe morte e dal vivo su una data di osservazione dato. Parassitismo: solo osservabile in 4 th instar ninfe. Il bacterisomes giallastro accoppiati sono spostati dalla larva parassitoide in via di sviluppo ( Figura 4A); la fase larvale è a volte visibile ( Figura 4). Fase di pupa del parassitoide è distintiva e generi specifici ( Figura 4B , 4D). Predazione: succhiare predatori sarà evacuare il contenuto della Ninfa e lasciarsi alle spalle un cadavere compresso ( Figura 4 -4I). Raramente, un predatore da masticare può lasciare prove ( Figura 4J). Sconosciuto: la morte che non può essere attribuita a una delle cause sopra. In ambienti umidi, malattia fungina può essere un'ulteriore causa di morte. Questa categoria può includere anche ninfe uccidere da host-alimentazione parassitoide. Ninfe che sopravvivono emergono come adulti lasciando un distintivo a forma di t slot in esuvie ( Figura 1 H)
  2. registrare la fase di sviluppo (se vivo) e causa di morte e di fase nel quaderno iniziato alla coorte stabilimento (tabella 1).
  3. Una volta che tutte le ninfe osservate su una singola foglia hanno sia morto o è emerso come un adulto whitefly, raccogliere la foglia e tornare al laboratorio. Utilizzare il maggiore ingrandimento di un microscopio per dissezione per confermare che la causa della morte notato nel campo è preciso e apportare eventuali correzioni.
    Nota: Non ogni insetto morto non sloggiato rimarrà sulla foglia sopra il periodo di osservazione di due settimane tipico e così alcune verifiche non sarà possibile.

6. Riepilogo dei dati e analisi

  1. Consult risorse disponibili per aiutare nella costruzione di tavole di sopravvivenza dai dati raccolti 2 , 8 , 11 , 31. Un esempio di tabella di vita si presenta come tabella 2.
    Nota: Robusta vita tabella analisi richiede più tabelle di vita indipendenti condotte su diversi siti e/o di tempo. Per un insetto multivoltine come b. tabaci questo potrebbe essere più tabelle di vita nel corso di una sola stagione e/o più stagioni e siti.
    1. Stima reale mortalità (d x/l 0) base al numero di insetti stabilito all'inizio della generazione.
      Vera e propria mortalità = (d x/l 0)
      dove d x è il numero di morti durante fase x e l 0 è il numero di insetti all'inizio della generazione. Questi tassi di mortalità sono additivo e la somma di d x sopra le stime di fasi tasso di mortalità totale per la generazione (tabella 2).
    2. Stima apparente mortalità all'interno di una fase (q x) basato sul numero di insetti vivi all'inizio di una fase specifica (tabella 2). Stimare la fase-specifici q x o fattore interno stadio-specifico q x. Queste tariffe sono additivo solo all'interno di una fase.
    3. Determinare mortalità marginali utilizzando la formula:
      M B = d B / (1-d A)
      dove M B è il tasso marginale di fattore di mortalità B, d B è l'apparente tasso di mortalità da fattore B e d A è l'apparente tasso di mortalità ha riassunto per tutti i fattori di mortalità che possono prevalere fattore B 13 , 32 (tabella 3).
      Nota: Per sessili insetti come le mosche bianche e molti altri insetti, le cause multiple di morte all'interno di una fase di vita particolare non sono sequenziale. Invece agiscono contemporaneamente e quindi, per stimare in maniera accurata fase-specifici tassi di mortalità da uno causano 32 , 34, è necessaria la stima dei tassi marginali. Ad esempio, un parassitoide può attaccare una ninfa di mosche bianche. L'uovo parassitoide potrebbe si schiudono e le larve possono svilupparsi nell'ospite. Questa attività, inizialmente asintomatica all'osservatore,, o più probabilmente, uccidere l'insetto ospitante e dovrebbe essere accreditato come la causa della morte. Ma in alcuni casi, un predatore può attaccare questa ninfa stessa o la ninfa può essere sloggiata dalla foglia che porta l'osservatore a notare la causa della morte come predazione o dislocazione. Mortalità marginale corregge per questo.
      1. Convert tassi marginali di fase-specifici per valori di k 35 come k = - ln (1 - M), dove ln < /em> è il logaritmo naturale e M è il tasso di mortalità marginale di interesse. valori di k sono additivo e questo semplifica ulteriormente l'analisi. valori di k possono essere retro-convertiti ai tassi di mortalità proporzionale di 1 - e [-k].
    4. Stimare insostituibile mortalità come [1 - e (-TotalK)]-[1 - e (-{parlare - kvalue ho })].
      Nota: Questo dà la porzione di mortalità totale generazionale che non si sarebbe realizzata se un fattore particolare di mortalità è stato rimosso. Ad esempio, quanto generazionale mortalità potrebbe essere perso se predazione o parassitismo sono stati rimossi a causa di un insetticida spray? Insostituibile mortalità stimata in questo modo si presuppone che non esista nessuna densità-dipendenza nella mortalità.
      5. Fattori di
    5. chiave
      1. utilizzano una semplice analisi grafica per tracciare il k-valore per qualsiasi uno stadio, o qualsiasi un fattore di mortalità (o un fattore di mortalità all'interno di uno stadio) contro il valore totale-K per l'intera generazione (Totale K = somma di tutti i singoli valori di k).
        Nota: Il fattore di mortalità che imita più da vicino il modello di totale-K il migliore è il fattore chiave, il fattore che contribuiscono maggiormente ai cambiamenti nella mortalità generazionale 35. Un metodo più quantitativo regredisce k-valori individuali sul totale-K e identifica il fattore chiave come quello con il più grande valore di pendenza 3.
    6. Dipendenza da densità di test di regressione valori di k per i fattori di interesse sul logaritmo naturale di densità di popolazione dell'insetto misurata in modo indipendente (ad es. 13). Suggerisce una pendenza positiva significativa densità diretta dipendenza e una dipendenza inversa pendenza negativa.
      Nota: con informazioni di tabella di vita supplementare adulto sopravvivenza e riproduzione, molti parametri aggiuntivi (ad es., tempo di generazione, tasso netto di riproduzione, istantanei tassi di aumento, la speranza di vita a un dato stadio, ecc.) e analisi (modelli matrix ed elasticità analisi 36 , 37 può essere condotta.

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Risultati

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Una coorte di esempio è presentata nella tabella 2 per visualizzare una presentazione tipica e calcolo dei risultati della tabella di vita. I dati più utili vengono acquisiti i tassi di mortalità marginale per ogni fattore all'interno di ogni fase. Mediante la conversione di queste tariffe per valori di k (protocollo sezione 6), fase-specifici mortalità sopra tutti i fattori e fattore di mortalità su tutte le fasi possono facilmente stimare, come possibile totale mortalit...

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Discussione

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In genere, lo sviluppo della vita tabelle per multivoltine insetti con ampiamente sovrapposti generazioni sono vincolate a un approccio verticale dove una popolazione viene campionata ripetutamente nel tempo e varie tecniche grafiche e matematiche vengono quindi utilizzati per reclutamento per le varie fasi di stima e dedurre i tassi di mortalità da cambiare la densità delle varie fasi vita2. La forza dell'approccio qui è che naviga questa limitazione isolando un gruppo di insetti di pari età immo...

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ringraziamo D. Ashton, V. Barkley, K. Beimfohr, F. Bojorquez, J. Cantrell, G. Castro, R. Christensen, J. Fearn, C. Jara, D. Meade, G. Owens, L. Rodarte, D. Sieglaff, r. Sonoqui, M. Stefanek, B. Stuart, J. Trejo, r. Slade e Yescas E. per assistenza tecnica. Supporto parziale è stato fornito da USDA-agricole ricerca servizio, USDA Istituto nazionale per l'alimentazione e l'agricoltura estensione IPM programma e Pest Management alternative speciali progetti, Cotton Incorporated, Arizona Associazione dei coltivatori di cotone, cotone Fondazioni, USDA-cri, NAPIAP (regione occidentale) e progetti speciali regione occidentale IPM.

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Materiali

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NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nastro adesivoGempler, Janesville, Wisconsin USA52273Cinque colori
Manila etichette di merchandisingAmerican Tag Company, Pico Rivera, California USA12-104
Marcatore a punta ultra fineSanford, Bellwood, Illinois, USA451898Disponibile presso Office Max, Amazon
Peak Loupe 8XAdorama, New York, NY USA2018
Lente di ingrandimento Peak 15XAdorama, New York, NY Stati Uniti19621

Riferimenti

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