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Articolo metodologico

Divisione delle cellule dei mammiferi in matrici 3D tramite microscopia confocale quantitativa di riflessione

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DOI:

10.3791/56364

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29 novembre 2017

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* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo studia in modo efficiente divisione cellulare dei mammiferi in matrici di collagene 3D integrando sincronizzazione della divisione cellulare, monitoraggio degli eventi di divisione in matrici 3D utilizzando la tecnica di imaging cellule vive, microscopia risolta in tempo di riflessione confocale e quantitative analisi di imaging.

Abstract

Lo studio di mammifero come la divisione cellulare è regolato in un 3D ambiente rimane in gran parte inesplorata, nonostante la sua rilevanza fisiologica e significato terapeutico. Motivi possibili per la mancanza di esplorazione sono i limiti sperimentali e le sfide tecniche che rendono lo studio di divisione delle cellule in cultura 3D inefficiente. Qui, descriviamo un metodo basato su formazione immagine per studiare in modo efficiente divisione cellulare dei mammiferi e delle interazioni cellula-matrice in matrici di collagene 3D. Cellule identificate con H2B fluorescenti vengono sincronizzate utilizzando la combinazione di trattamento blocco e nocodazole della timidina, seguita da una tecnica di shake-off meccanica. Sincronizzate le cellule vengono quindi incorporate in una matrice di collagene 3D. Divisione cellulare viene monitorata tramite microscopia di cellule vive. La deformazione delle fibre del collagene durante e dopo la divisione cellulare, che è un indicatore di interazione cellula-matrice, possa essere monitorata e quantificati tramite microscopia confocale quantitativa di riflessione. Il metodo fornisce un approccio efficiente e generale per studiare la divisione delle cellule dei mammiferi e delle interazioni cellula-matrice in un ambiente 3D fisiologicamente rilevante. Questo approccio non solo fornisce le comprensioni novelle nella base molecolare dello sviluppo del tessuto normale e malattie, ma permette anche per la progettazione di nuovi approcci diagnostici e terapeutici.

Introduzione

Mitosi delle cellule sono un evento critico nella vita cellulare, il regolamento di cui svolge un ruolo cruciale nello sviluppo di tessuti ed organi. Mitosi anomale sono implicato in variazioni genetiche naturali, processi di invecchiamento umano e la progressione del cancro1,2,3,4,5. Dell'aumento del tasso di proliferazione delle cellule tumorali rispetto alle cellule normali è uno dei tratti distintivi del cancro, nonostante il fatto che i comportamenti delle cellule sono piuttosto eterogenei tra diversi ....

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Protocollo

Protocollo di cui segue le linee guida di il Homewood The delle revisione istituzionale in Consiglio (HIRB).

1. stabile espressione di H2B-mCherry come indicatore per mitosi delle cellule

  1. Generazione di particelle lentivirali da embrionali umane del rene 293T (HEK 293T) cellule
    1. Le cellule HEK 293T su una piastra di coltura delle cellule di 10 cm alla densità di 5 x 106 cellule/piatto nel mezzo di coltura cellulare (di Dulbecco Medium (DMEM) contenenti elevati del glucosio dell'Aquila per volta (4,5 g/L), piruvato di sodio, 10% siero bovino fetale (FBS) e 1% del piatto penicillina-streptomicin....

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Risultati

L'obiettivo di questo articolo è di presentare un metodo basato su imaging per lo studio dei processi di divisione cellulare dei mammiferi in matrici 3D e quantificare le interazioni tra la cella e la matrice extracellulare 3D durante e dopo la divisione cellulare. Per facilitare l'imaging della mitosi delle cellule, abbiamo incorporato H2B-mCherry nelle cellule MDA-MB-231 usando trasduzione lentivirale. H2B coniugati con proteine fluorescenti è utilizzato come marcatore mitotic di distin.......

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Discussione

Il precedente studio di divisione cellulare in 3D non era efficiente a causa di limiti sperimentali e sfide tecniche18,19. I passaggi critici per efficiente studio di divisione delle cellule dei mammiferi in matrici di collagene 3D sono: (1) l'incorporazione di fluorescenza-labeled mitotici marcatori per le cellule; (2) la sincronizzazione della divisione cellulare; e (3) il monitoraggio degli eventi di divisione in matrici 3D utilizzando la tecnica di imaging di.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere nessun concorrenti interessi finanziari.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da NIH concede R01CA174388 e U54CA143868. Gli autori si desidera ringraziare il premio PURA della Johns Hopkins University per il supporto di Chen Wei-tong. Questo materiale si basa su lavori sostenuta dalla National Science Foundation Graduate Research Fellowship sotto Grant n. 1232825.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Rene embrionale umano 293TATCC
MDA-MB-231Centro di oncologia di scienze fisiche, NIH
DMEMCorning10-013-CV
DMEM polvereThermoFisher Scientific12100-046
Siero bovino fetaleHycloneSH30910.03
Penicillina-Streptomicina 100XSigma-AldrichP0781
Fugene HDPromegaE2311
Lipofectamine 2000Life technologies11668-07
Plasmide che codifica H2B-mCherry in un vettore lentiviraleAddgeneplasmide 21217
TimidinaSigma-AldrichT1895
NocodazoloSigma-AldrichM1404
Opti-MEMLife Technologies31985-070
Bicarbonato di sodioGibcoBRL11810-025
HEPESSigma-Aldrich113375-100
Collagene Corning354236
NaOHJ.T. Bake3722-01
Unità filtro siringa Millex-HV, 0,45-μ m, PVDF, 33 mmMilliporeSLHVM33RS
Microscopio a epifluorescenza Nikon TE2000ENikonTE2000E
Cascade 1KRoper Scientific
NIS-ElementsMicroscopio
A1NikonA1
Fotocamera CCD Software di imaging AR confocale Nikon

Riferimenti

  1. Ly, D. H., Lockhart, D. J., Lerner, R. A., Schultz, P. G. Mitotic misregulation and human aging. Science. 287 (5462), 2486-2492 (2000).
  2. Gascoigne, K. E., Taylor, S. S. How do anti-mitotic drugs kill cancer cells? J Cell Sci. 122 (Pt 15), 2579-2585 (2009).
  3. Brinkley, B. R.

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Ristampe e permessi

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