Summary

Vurdering af blod - hjerne barrieren permeabilitet af intravenøs Infusion af FITC-mærket Albumin i en musemodel af neurodegenerativ sygdom

Published: November 08, 2017
doi:

Summary

I denne undersøgelse præsenterer vi en let og effektiv procedure til evaluering af forstyrrelser af blod – hjerne barrieren neurodegenerative betingelser. For at nå vores mål, vi infunderes høj molekylvægt fluorescein isothiocyanat mærket (FITC)-albumin i mus jugularis vene og vurderet dets lækage i hjernen parenkym af Fluorescens mikroskopi.

Abstract

Afbrydelse af blod – hjerne barrieren (BBB) integritet er et fælles træk for forskellige neurologiske og neurodegenerative sygdomme. Selv om samspillet mellem foruroliget BBB homøostase og patogenesen af hjernen lidelser har brug for yderligere undersøgelse, kan udvikling og validering af en pålidelig procedure til præcist afsløre BBB ændringer være afgørende og repræsenterer en nyttig værktøj for potentielt forudsige sygdom målrettet progression og udvikling af terapeutiske strategier.

Her præsenterer vi en let og effektiv procedure for evaluering BBB lækage i neurodegenerative tilstand, som det forekommer i en prækliniske musemodel af Huntingtons sygdom, hvor fejl i permeabilitet af BBB er klart påviselige precociously i sygdommen. Specifikt, den høj molekylvægt fluorescein isothiocyanat mærket (FITC)-albumin, som er i stand til at krydse BBB kun når sidstnævnte er nedsat, er akut infunderet i en mus halsfedt og dens fordeling i distrikterne vaskulære eller parenkymalt bestemmes derefter af Fluorescens mikroskopi.

Ophobning af grøn fluorescerende-albumin i hjernen parenkym fungerer som et indeks af afvigende BBB permeabilitet, og når quantitated ved hjælp af billede Jørgensen forarbejdning software, er rapporteret som grøn fluorescens intensitet.

Introduction

Homøostase i centralnervesystemet (CNS) er en forudsætning for korrekt kommunikation og funktionen af de neuronale celler. CNS parenkym er stramt afspærret fra periferien af i endothelial blod – hjerne barrieren (BBB), som repræsenterer grænsefladen mellem de perifere blodbanen og hjernen og spiller en central rolle i cross-talk mellem disse to distrikter1 ,2. BBB er en kompleks og dynamisk tredimensional struktur hovedsagelig består af specialiserede mikro-fartøj endotelceller (ECs) knyttet til hinanden gennem intercellulære junctional komplekser – stramme kryds (TJs) – og omgivet af pericytes, neuron slutninger og astrocyte fod processer1,2.

Fysiologiske betingelser, ekstremt lav permeabilitet af intakt BBB sikrer en streng regulering af transport af næringsstoffer og andre molekyler ind og ud af hjernen, og giver CNS med en enestående beskyttelse mod ændringer i de sammensætning af blodet, som kan påvirke neurale aktivitet og mod potentiale perifere fornærmelser1,2,3.

Afbrydelse af BBB integritet og dets øget permeabilitet har længe været kendt at udgøre et centralt element for mange neurologiske og neurodegenerative lidelser4 herunder Huntington’s chorea (HD)5,6, men , uanset om sådan en dysfunktion er en forårsagende fænomen eller en propagative begivenhed i sygdomsforløbet er stadig uklart. Timingen af BBB opdeling er også fortsat undvigende, men nye beviser af vores gruppe og andre angiver forstyrret BBB integritet ikke repræsenterer en sen begivenhed i sygdomsprogression, men snarere et tidligt trin6,7 , 8, der kan have langsigtede konsekvenser.

Med dette i tankerne er det vigtigt at precociously afsløre BBB opdeling i neurodegeneration for at udvikle strategier nyttigt at forudsige sygdomsprogression og hjerneskade og udvikle alternative og mere målrettede interventioner i stand til med succes afbøde de kliniske konsekvenser af sådanne forstyrrelser. Pålidelig billeddannelse af BBB værdiforringelse er derfor af stor betydning i både eksperimentelle forskning og kliniske behandling af hjernesygdomme.

I dette papir beskriver vi en vellykket og enkel procedure for evaluering af BBB permeabilitet i en HD musen model ved hjælp af en høj molekylvægt fluorescein isothiocyanat mærket-albumin (FITC-albumin). Ekstravasation af FITC-albumin, som normalt ikke kan krydse barrieren, ind i hjernen parenkym blev målt som et indeks af BBB lækage. Denne teknik er let at tilpasse til rotter og andre patologiske tilstande præget af cerebrovasculature værdiforringelse9,10.

Protocol

alle procedurer på dyr blev godkendt af IRCCS Neuromed Animal Care Review Board og ved " Istituto Superiore di Sanità " (autorisationsnummer: 1163/2015-PR) og var i overensstemmelse med retningslinjerne i EU direktiv 2010 / 63/EU for dyreforsøg. 1. fremstilling af FITC-albumin løsning til at blive injiceret i halsfedt Bemærk: alle eksperimenter blev udført i manifest (11 – uger gamle) HD R6/2-mus og i alder og køn-matchede wild-type (WT) kontrol litt…

Representative Results

Ordentlig infusion af FITC-albumin i halsfedt resultater i ekstravasation af grønne fluorescens tracer fra blodbanen til hjernen parenchymawhen BBB er kompromitteret6. Fysiologiske betingelser, distribution af infunderet fluorescerende albumin er begrænset til indersiden af hjernen blodkar og intet signal i den omkringliggende perivascular område og/eller hjernen parenkym er påviselige (figur 1A, micrographs på den Top). Omvendt, …

Discussion

Den teknik vi beskrive her er primært nyttig til påvisning af BBB lækage under hjernen sygdomstilstande. BBB dysfunktion er ved at vinde opmærksomhed som en fælles funktion af forskellige neurologiske sygdomme4. Vi har tidligere brugt denne metode til at beskrive den tidlige derangement af BBB integritet i en musemodel af en sjælden neurodegenerativ sygdom som HD6.

Denne metode tager fordel af den relative enkelhed og effektivitet af den pr…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af “Fondazione Neuromed” og finansieret af det italienske sundhedsministerium “Ricerca Corrente” til V.M.

Materials

Albumin-fluorescin isothiocyanate conjiugate SIGMA A9771-100MG
pAb anti-Laminin Novus Biologicals NB300-144
CY3 anti-rabbit made in goat MILLIPORE AP132
SUPERFROST PLUS Thermo Scientific J1800AMNZ
Cover Slips 24 X 50 mm Thermo Scientific (DIAPATH) 61050
Kilik Optimal Cutting Temperature (OCT) compound Bio Optica 05-9801
VECTASHIELD Mounting Media VECTOR H-1500 Mounting media with DAPI
iNSu/Light Insulin Disposible Syringe RAYS Health &Safety INS1ML26G13
30G 1/2" BD Microlance 304000 Needle for Insulin disposible Syringe
Scalpel Handle F.S.T. 91003-12
#22 Disposable Scalpel blads F.S.T. 10022-00
Fine Iris scissors 10.5 cm F.S.T. 14094-11
Dumont Forceps #5745 45° 0.10 x 0.06 mm F.S.T. 11251-35
Graefe Forceps 10 cm F.S.T. 11051-10
Dumont Forceps #5 0.1 X 0.06 mm F.S.T. 11251-20
Medical patch Medicalis 34788
Sterile disposable towel drape Dispotech TVO50VE
Stereoscopic Microscope NIKON SMZ 745 T
Optic Illuminator LED light (C-FLED2) NIKON 1003167 Optic Illuminator for Stereoscopic Micrscope
Eclipse Ni-U Microscope Nikon 932162 Epifluorescence Microscope
Microscope digital Camera Nikon DS-Ri2 Microscope camera
Intenslight Nikon C-HGFI Microscope lamp
NIS-Elements 64 bit Nikon AR 4.40.00 Analysis Software
Electric Razor Gemei GM-3007

Riferimenti

  1. Obermeier, B., Verma, A., Ransohoff, R. M. The blood-brain barrier. Handb Clin Neurol. 133, 39-59 (2016).
  2. Serlin, Y., Shelef, I., Knyazer, B., Friedman, A. Anatomy and physiology of the blood-brain barrier. Semin Cell Dev Biol. 38, 2-6 (2015).
  3. Moretti, R., et al. Blood-brain barrier dysfunction in disorders of the developing brain. Front Neurosci. 9, 40 (2015).
  4. Zhao, Z., Nelson, A. R., Betsholtz, C., Zlokovic, B. V. Establishment and Dysfunction of the Blood-Brain Barrier. Cell. 163 (5), 1064-1078 (2015).
  5. Drouin-Ouellet, J., et al. Cerebrovascular and blood-brain barrier impairments in Huntington’s disease: Potential implications for its pathophysiology. Ann Neurol. 78 (2), 160-177 (2015).
  6. Di Pardo, A., et al. Impairment of blood-brain barrier is an early event in R6/2 mouse model of Huntington Disease. Sci Rep. 7, 41316 (2017).
  7. Lecler, A., Fournier, L., Diard-Detoeuf, C., Balvay, D. Blood-Brain Barrier Leakage in Early Alzheimer Disease. Radiology. 282 (3), 923-925 (2017).
  8. van de Haar, H. J., et al. Blood-Brain Barrier Leakage in Patients with Early Alzheimer Disease. Radiology. 282 (2), 615 (2017).
  9. Fernandez-Lopez, D., et al. Blood-brain barrier permeability is increased after acute adult stroke but not neonatal stroke in the rat. J Neurosci. 32 (28), 9588-9600 (2012).
  10. Yang, Y., Rosenberg, G. A. Blood-brain barrier breakdown in acute and chronic cerebrovascular disease. Stroke. 42 (11), 3323-3328 (2011).
  11. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. (6), e239 (2007).
  12. Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. Transplantation of pancreatic islets into the kidney capsule of diabetic mice. J Vis Exp. (9), e404 (2007).
  13. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), (2012).
  14. McCloy, R. A., et al. Partial inhibition of Cdk1 in G 2 phase overrides the SAC and decouples mitotic events. Cell Cycle. 13 (9), 1400-1412 (2014).
  15. Burgess, A., et al. Loss of human Greatwall results in G2 arrest and multiple mitotic defects due to deregulation of the cyclin B-Cdc2/PP2A balance. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (28), 12564-12569 (2010).
  16. Krueger, M., Hartig, W., Reichenbach, A., Bechmann, I., Michalski, D. Blood-brain barrier breakdown after embolic stroke in rats occurs without ultrastructural evidence for disrupting tight junctions. PLoS One. 8 (2), e56419 (2013).
  17. Hirano, A., Kawanami, T., Llena, J. F. Electron microscopy of the blood-brain barrier in disease. Microsc Res Tech. 27 (6), 543-556 (1994).
check_url/it/56389?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Di Pardo, A., Castaldo, S., Capocci, L., Amico, E., Maglione, V. Assessment of Blood-brain Barrier Permeability by Intravenous Infusion of FITC-labeled Albumin in a Mouse Model of Neurodegenerative Disease. J. Vis. Exp. (129), e56389, doi:10.3791/56389 (2017).

View Video