Summary

Laminotomy for lumbal dorsalrods Ganglion adgang og injektion i svin

Published: October 10, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en metode til laminotomy i svin, der giver adgang til lumbal dorsalrodsganglier (DRG) for intraganglionic injektion. Injektion fremskridt overvåges intraoperatively og histologisk bekræftet op til 21 dage efter operationen. Denne protokol kan bruges til fremtidige prækliniske undersøgelser der involverer DRG injektion.

Abstract

Dorsalrodsganglier (DRG) er anatomisk veldefineret strukturer, der indeholder alle primære sensoriske neuroner under hovedet. Dette faktum gør DRG attraktive mål for injektion af roman therapeutics rettet mod behandling af kroniske smerter. I små dyremodeller, er laminektomi blevet brugt til at lette DRG injektion, fordi det indebærer kirurgisk fjernelse af vertebrale knoglen omkring hver DRG. Vi demonstrere en teknik til intraganglionic injektion af lumbal DRG i en stor dyrearter, nemlig svin. Laminotomy udføres for at give direkte adgang til DRG ved hjælp af standard neurokirurgiske teknikker, instrumenter og materialer. Sammenlignet med mere omfattende fjernelse af knogle via laminektomi, gennemfører vi laminotomy hen til conserve spinal anatomi samtidig opnå tilstrækkelig DRG adgang. Intraoperativ fremskridt af DRG injektion overvåges ved hjælp af et ikke-giftige farvestof. Efter eutanasi postoperative dag 21, injektion succes afhænger af histologi for intraganglionic fordeling af 4′, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI). Vi indsprøjte en biologisk inaktiv løsning for at demonstrere protokollen. Denne metode kunne være anvendt i fremtiden prækliniske undersøgelser til target terapeutiske løsninger på DRG. Vores metode bør lette translatability af intraganglionic små dyr paradigmer i en stor dyrearter. Derudover kan denne protokol tjene som en vigtig ressource for dem, der planlægger prækliniske undersøgelser af DRG injektion i svin.

Introduction

Dorsalrodsganglier (DRG) er anatomisk diskret, neuronal samlinger placeret langs rygsøjlen. Hver DRG indeholder de primære sensoriske neuroner, der indkode og relæ perifere stimuli til centralnervesystemet (CNS) fra specifikke kroppen regioner. For eksempel, begynder smerten ved slidgigt når smerte receptorer placeret omkring et fælles opfatter skadelige stimuli. Denne proces kaldes nociception. Langsigtet bevidsthed om skadelige stimuli fører til kroniske smerter 1.

Kroniske smerter er en hyppig genstand for prækliniske undersøgelse 2 hvor ét mål er at udvikle nyttige metoder til målrettet levering af analgetika til DRG, såsom intraganglionic injektion 3. DRG er imidlertid vanskeligt at adgang, fordi de opholder sig inden for boney rammerne af intervertebral foramina 4. Flere grupper har med held overvinde denne hindring ved hjælp af rygsøjlen kirurgi i gnavere 5,6,7,8,9,10.

I klinikken, laminektomi er en fælles operation, rygsøjlen og henviser til kirurgisk fjernelse af vertebrale lamina, hvorved unroofing rygmarvskanalen 11. Indarbejdelse af kirurgiske teknikker Råd direkte DRG adgang til har været vellykket i gnavere 5,12, oversættelse kan imidlertid være urealistisk at opfatte forskelle i størrelse af relevante strukturer og hvordan det påvirker farmakokinetik eller teknisk gennemførlighed 13,14. For eksempel, fastslået en undersøgelse tværgående rygmarven diameter på T10 3.0, 7.0 og 8,2 mm for rotte, svin og human, henholdsvis 15. Således modeller store dyre bedre omtrentlige menneskelige dimensioner af nervøs strukturer.

Hos svin anvendes Raore et al. multi-level laminektomi til at få adgang til den cervikale rygmarv til flere intraspinal injektioner 16. Proceduren var veltolereret og ført til en fase jeg klinisk forsøg hvor sammenlignelige kirurgisk resultater var dokumenteret 17. Disse resultater fremme fortsatte brug af prækliniske store dyremodeller som prædiktorer for teknisk gennemførlighed og sikkerhed hos mennesker.

Til dato, findes ingen detaljerede metoder for kirurgisk adgang og injektion af DRG i en stor dyrearter. Hvis du vil indsnævre denne translationel kløft, rapporterer vi en protokol for DRG eksponering og injektion via laminotomy i svin. Neurokirurgiske standardteknikker, instrumenter og materialer blev brugt og metoden blev designet til at efterligne moderne kirurgisk praksis. Vi demonstrere intraganglionic injektion ved hjælp af en vandig opløsning for lumbal DRG og bekræft vellykket levering via histologi efter postoperative dag 21.

Protocol

alle metoder beskrevet her er blevet godkendt af institutionelle Animal Care og brug udvalg (IACUC) af Mayo Clinic. 1. forudsætninger af stringens og reproducerbarhed at sikre stringens i design, følger nationale standarder for god laboratorie praksis er på alle tidspunkter og opnå intern godkendelse af IACUC (eller lignende udvalg) forud for ethvert dyr deltagelse i eksperimenter. Bemærk: Denne protokol var designet til at opretholde en klinisk trofaste tilgang. Såled…

Representative Results

Histologisk vurdering af injectate spredningSuccesfuld levering af injectate til DRG bestemmes af histologisk vurdering af DAPI spredes. Teknikken indebærer positionering needle-tip i tre-dimensionelle midten af DRG. Derfor, vellykket levering bestemmes ved at evaluere omfanget af DAPI farvning fra histologiske sektioner både nær (centrale DRG sektioner) og fjern (perifere DRG sektioner) til nål-spids. Figur 1A og figur 1B repræsenterer…

Discussion

Vi har søgt at beskrive en metode for kirurgiske eksponering af DRG via laminotomi og intraganglionic injektion i en sund store dyrearter, specielt, svin. I gnavere, er en lignende metode detaljeret 12 og bruges til at levere konventionelle farmakologiske agenter 8,10 og virale vektorer 6,7,9,12 til DRG…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Undersøgelsen blev udført med støtte af Schulze Family Foundation (til A.S.B.).

Materials

Large humane animal sling Britz & Company 002539 Modified to include abdominal aperture
Adhesive patient return electrode – 9 inch Medtronic E7506
Ranger blood & fluid warming system 3M 24500
Lactated Ringer's fluid Hospira 0409-7953-09
Force air warming device 3M 77500
Duraprep solution with applicator, 26 ml (0.7% iodine povacrylex, 74% isopropyl alcohol 3M 8630
Sterile disposable surgical towels Medline MDT2168286
Ioban 2 incise drape 3M 6651EZSB
Disposable suction canister and tubing Medline DYND44703H
Button switch electrosurgical monopolar pencil Medtronic E2450H
Fine smooth straight bipolar electrosurgical forceps, 4 1/2 inch Bovie A826
#15 blade Miltex 4-315
#11 blade Miltex 4-311
4×4 surgical gauze Dynarex 3262
Weitlaner self-retaining retractor, 8 inch Miltex 11-618
Meyerding self-retaining retractor, 1×2 3/8 inch Sklar 42-2078
Gelpi self-retaining retractor, 7 inch Sklar 60-6570
Freer elevator, 5 mm Medline MDS4641518F
Bone wax Ethicon W31G
Spurling intervertebral disc rongeur, 3 mm Sklar 42-2852
Spurling 45-degree, up-biting Kerrison rongeur, 2 mm Medline MDS4052802
Leksell angled rongeur, 2 mm Sklar 40-4097
Gelfoam, size 50 Pfizer AZL32301
Cottonoid patty Medtronic 8004007
Frazier suction tip, 6 Fr Sklar 50-2006
Frazier suction tip, 10 Fr Sklar 50-2010
Dandy blunt right angle nerve hook Medline MDS4005220
Nylon suture, 6-0 Ethicon 697G
Castroviejo smooth micro needle holder Medline MDG2428614
22 gauge Quinke point spinal needle Halyard Health 18397
32 gauge CED needle with locking Luer hub See comments n/a As in: Pleticha, J., Maus, T.P., Christner, J.A., Marsh, M.P., Lee, K.H., Hooten, W.M., Beutler, A.S. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. Technical note. J Neurosurg. 121(4), 851-8 (2014).
Polyethylene tubing, 5 feet Scientific Commodities BB31695-PE/05
Monoject syringe, 3 ml Kendall SY15352
NanoJet syringe pump Chemyx 10050
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252
Bulb irrigation syringe Medline DYND20125
Fine-toothed Adson forceps Medline MDS1000212
Vicryl suture, 0 Ethicon J603H
Vicryl suture, 2-0 Ethicon J317H
Needle counter Medline NC20FBRGS
Steri-strip skin closure, 1/2×4 inch 3M R1547

Riferimenti

  1. Millan, M. J. The induction of pain: An integrative review. Prog Neurobiol. 57 (1), 1-164 (1999).
  2. Burma, N. E., Leduc-Pessah, H., Fan, C. Y., Trang, T. Animal models of chronic pain: Advances and challenges for clinical translation. J Neurosci Res. , (2016).
  3. Pleticha, J., Maus, T. P., Beutler, A. S. Future directions in pain management: integrating anatomically selective delivery techniques with novel molecularly selective agents. Mayo Clin Proc. 91 (4), 522-533 (2016).
  4. Standring, S. . The anatomical basis of clinical practice. , (2005).
  5. Fischer, G., et al. Direct injection into the dorsal root ganglion: technical, behavioral, and histological observations. J Neurosci Methods. 199 (1), 43-55 (2011).
  6. Zhao, X., et al. A long noncoding RNA contributes to neuropathic pain by silencing Kcna2 in primary afferent neurons. Nat Neurosci. 16 (8), 1024-1031 (2013).
  7. Xu, Y., Gu, Y., Wu, P., Li, G. W., Huang, L. Y. M. Efficiencies of transgene expression in nociceptive neurons through different routes of delivery of adeno-associated viral vectors. Hum Gene Ther. 14 (9), 897-906 (2003).
  8. Puljak, L., Kojundzic, S. L., Hogan, Q. H., Sapunar, D. Targeted delivery of pharmacological agents into rat dorsal root ganglion. J Neurosci Methods. 177 (2), 397-402 (2009).
  9. Mason, M. R. J., et al. Comparison of AAV serotypes for gene delivery to dorsal root ganglion neurons. Mol Ther. 18 (4), 715-724 (2010).
  10. Jelicic Kadic, A., Boric, M., Kostic, S., Sapunar, D., Puljak, L. The effects of intraganglionic injection of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II inhibitors on pain-related behavior in diabetic neuropathy. Neurosci. 256, 302-308 (2014).
  11. Greenberg, M. S. . Handbook of neurosurgery. , (2010).
  12. Yu, H., Fischer, G., Hogan, Q. H. AAV-mediated gene transfer to dorsal root ganglion. Methods Mol Biol. 1382, 251 (2016).
  13. Yaksh, T. L., et al. Pharmacology and toxicology of chronically infused epidural clonidine HCL in dogs. Toxicol Sci. 23 (3), 319-335 (1994).
  14. Federici, T., et al. Surgical technique for spinal cord delivery of therapies: demonstration of procedure in gottingen minipigs. J Vis Exp. (70), e4371 (2012).
  15. Lee, J. H. T., et al. A novel porcine model of traumatic thoracic spinal cord injury. J Neurotrauma. 30 (3), 142-159 (2013).
  16. Raore, B., et al. Cervical multilevel intraspinal stem cell therapy: assessment of surgical risks in Gottingen minipigs. Spine. 36 (3), e164 (2011).
  17. Riley, J., et al. Intraspinal stem cell transplantation in amyotrophic lateral sclerosis: A phase I safety trial, technical note, and lumbar safety outcomes. Neurosurg. 71 (2), 405-416 (2012).
  18. Olmarker, K., Holm, S., Rosenqvist, A., Rydevik, B. Experimental nerve root compression. A model of acute, graded compression of the porcine cauda equina and an analysis of neural and vascular anatomy. Spine. 16 (1), 61-69 (1991).
  19. Bobo, R. H., et al. Convection-enhanced delivery of macromolecules in the brain. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 91 (6), 2076-2080 (1994).
  20. Lonser, R. R., Sarntinoranont, M., Morrison, P. F., Oldfield, E. H. Convection-enhanced delivery to the central nervous system. J Neurosurg. 122 (3), 697-706 (2015).
  21. Shen, J., Wang, H. Y., Chen, J. Y., Liang, B. L. Morphologic analysis of normal human lumbar dorsal root ganglion by 3D MR imaging. AJNR Am J Neuroradiol. 27 (0195–6108 (Print)), 2098-2103 (2006).
  22. Pleticha, J., et al. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. J Neurosurg. 121 (4), 851-858 (2014).
check_url/it/56434?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Unger, M. D., Maus, T. P., Puffer, R. C., Newman, L. K., Currier, B. L., Beutler, A. S. Laminotomy for Lumbar Dorsal Root Ganglion Access and Injection in Swine. J. Vis. Exp. (128), e56434, doi:10.3791/56434 (2017).

View Video