Summary

Ламинотомия для поясничного спинной ганглий суперпользователя и инъекций в свиней

Published: October 10, 2017
doi:

Summary

Мы описываем метод ламинотомия в свиней, которая обеспечивает доступ к поясничной Спинной корень ганглиев (DRG) для инъекций intraganglionic. Инъекции прогресс отслеживается интраоперационно и гистологически подтвердили до 21 дней после операции. Этот протокол может использоваться для будущих доклинические исследования с участием DRG инъекций.

Abstract

Спинной корень ганглиев (DRG) являются анатомически четко определенной структуры, которые содержат все первичных сенсорных нейронов ниже головы. Этот факт делает DRG привлекательных объектов для инъекций Роман терапии, направленной на лечение хронической боли. В небольших животных моделях Ламинэктомия использовалась для облегчения DRG инъекции, потому что она включает в себя хирургическое удаление позвоночной кости, окружающих каждый DRG. Мы продемонстрировать технику для intraganglionic введения поясничного DRG в крупных видов животных, а именно, свиней. Ламинотомия выполняется для прямого доступа к DRG, с использованием стандартных нейрохирургических методов, инструментов и материалов. По сравнению с более обширной удаление кости через ламинэктомии, мы реализуем ламинотомия сохранение анатомии позвоночника при достижении достаточного доступа DRG. Интраоперационная хода DRG инъекции контролируется с помощью нетоксичных красителей. После эвтаназии на послеоперационный 21 день успех инъекционного определяется гистологии intraganglionic распределения 4′, 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI). Мы вводим биологически неактивный решение продемонстрировать протокол. Этот метод может быть прикладной в будущем доклинические исследования целевых терапевтических решений DRG. Наша методология должна облегчить тестирование переводимости intraganglionic мелких животных парадигмы в крупных видов животных. Кроме того этот протокол может служить ключевым ресурсом для тех, кто планирует доклинические исследования DRG инъекций в свиней.

Introduction

Спинной корень ганглиев (DRG) являются анатомически дискретных, нейронов коллекции, расположенных вдоль позвоночного столба. Каждый DRG содержит первичных сенсорных нейронов, которые кодируют и реле периферические раздражители для центральной нервной системы (ЦНС) из тела конкретных регионов. К примеру боль остеоартрита начинается, когда болевых рецепторов, расположенных о совместном воспринимают вредных раздражителей. Этот процесс называется Ноцицепция. Долгосрочный осведомленности о вредных раздражителей приводит к хронической боли 1.

Хроническая боль является предметом частых доклинические исследования 2 , где одна цель заключается в разработке полезных методов для целенаправленной доставки анальгетиков DRG, например intraganglionic впрыск 3. Однако DRG трудно добраться, потому, что они проживают в пределах Бони межпозвоночных отверстий 4. Несколько групп успешно преодолеть это препятствие путем использования хирургии позвоночника в грызунов 5,6,,78,9,10.

В клинике Ламинэктомия — это распространенная операция позвоночника и относится к хирургическому удалению позвоночной пластинки, тем самым unroofing позвоночного канала 11. Включение хирургических методов, чтобы позволить прямой доступ DRG была успешной в грызунов 5,12, однако, перевод может быть нереально рассматривать различия в размерах соответствующих структур и как это влияет на Фармакокинетика или технической осуществимости 13,14. Например в одном исследовании определяется поперечной спинного диаметр T10 3.0, 7.0, и 8,2 мм для крысы, свиньи и человека, соответственно 15. Таким образом крупных животных моделей лучше приблизительное человеческого измерения нервных структур.

В свиней Raore et al. используется многоуровневая Ламинэктомия для получения доступа к шейного отдела спинного для нескольких межпозвонковым инъекции 16. Процедура хорошо переносится и привело к фазе я клинических испытаний где сопоставимых хирургические исходы были документально 17. Эти результаты поощрять продолжение использования доклинических крупных животных моделей как предикторы технической осуществимости и безопасности людей.

На сегодняшний день, никакой подробной методологии существует для хирургического доступа и инъекций DRG в крупных видов животных. Для этого трансляционного разрыва, мы приводим протокол для DRG экспозиции и инъекции через ламинотомия в свиней. Стандартные нейрохирургические методы, инструменты и материалы были использованы, и метод был разработан для имитации современной хирургической практике. Мы продемонстрировать intraganglionic инъекции, используя водный раствор для поясничного DRG и подтверждение успешной доставки через гистологии после послеоперационного дня 21.

Protocol

все методы, описанные здесь были одобрены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) клиники Майо. 1. предпосылки строгости и воспроизводимость для обеспечения строгость дизайна, следовать национальные стандарты надлежащей лабораторной практи?…

Representative Results

Гистологический оценки распространения injectateУспешной доставке injectate к DRG определяется гистологических оценки DAPI распространения. Этот метод предполагает, позиционирование кончик иглы в центре трехмерной DRG. Таким образом успешной доставки определяется путем оценки степен…

Discussion

Мы стремились описать метод хирургического воздействия DRG через ламинотомия и intraganglionic инъекции в здоровых крупных видов животных, в частности, свиней. Грызунов подобный метод был подробно 12 и используются для предоставления обычных фармакологических агентов <sup class="x…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Исследование было проведено при поддержке Фонда семьи Шульце (для A.S.B.).

Materials

Large humane animal sling Britz & Company 002539 Modified to include abdominal aperture
Adhesive patient return electrode – 9 inch Medtronic E7506
Ranger blood & fluid warming system 3M 24500
Lactated Ringer's fluid Hospira 0409-7953-09
Force air warming device 3M 77500
Duraprep solution with applicator, 26 ml (0.7% iodine povacrylex, 74% isopropyl alcohol 3M 8630
Sterile disposable surgical towels Medline MDT2168286
Ioban 2 incise drape 3M 6651EZSB
Disposable suction canister and tubing Medline DYND44703H
Button switch electrosurgical monopolar pencil Medtronic E2450H
Fine smooth straight bipolar electrosurgical forceps, 4 1/2 inch Bovie A826
#15 blade Miltex 4-315
#11 blade Miltex 4-311
4×4 surgical gauze Dynarex 3262
Weitlaner self-retaining retractor, 8 inch Miltex 11-618
Meyerding self-retaining retractor, 1×2 3/8 inch Sklar 42-2078
Gelpi self-retaining retractor, 7 inch Sklar 60-6570
Freer elevator, 5 mm Medline MDS4641518F
Bone wax Ethicon W31G
Spurling intervertebral disc rongeur, 3 mm Sklar 42-2852
Spurling 45-degree, up-biting Kerrison rongeur, 2 mm Medline MDS4052802
Leksell angled rongeur, 2 mm Sklar 40-4097
Gelfoam, size 50 Pfizer AZL32301
Cottonoid patty Medtronic 8004007
Frazier suction tip, 6 Fr Sklar 50-2006
Frazier suction tip, 10 Fr Sklar 50-2010
Dandy blunt right angle nerve hook Medline MDS4005220
Nylon suture, 6-0 Ethicon 697G
Castroviejo smooth micro needle holder Medline MDG2428614
22 gauge Quinke point spinal needle Halyard Health 18397
32 gauge CED needle with locking Luer hub See comments n/a As in: Pleticha, J., Maus, T.P., Christner, J.A., Marsh, M.P., Lee, K.H., Hooten, W.M., Beutler, A.S. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. Technical note. J Neurosurg. 121(4), 851-8 (2014).
Polyethylene tubing, 5 feet Scientific Commodities BB31695-PE/05
Monoject syringe, 3 ml Kendall SY15352
NanoJet syringe pump Chemyx 10050
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Fast Green FCF Sigma-Aldrich F7252
Bulb irrigation syringe Medline DYND20125
Fine-toothed Adson forceps Medline MDS1000212
Vicryl suture, 0 Ethicon J603H
Vicryl suture, 2-0 Ethicon J317H
Needle counter Medline NC20FBRGS
Steri-strip skin closure, 1/2×4 inch 3M R1547

Riferimenti

  1. Millan, M. J. The induction of pain: An integrative review. Prog Neurobiol. 57 (1), 1-164 (1999).
  2. Burma, N. E., Leduc-Pessah, H., Fan, C. Y., Trang, T. Animal models of chronic pain: Advances and challenges for clinical translation. J Neurosci Res. , (2016).
  3. Pleticha, J., Maus, T. P., Beutler, A. S. Future directions in pain management: integrating anatomically selective delivery techniques with novel molecularly selective agents. Mayo Clin Proc. 91 (4), 522-533 (2016).
  4. Standring, S. . The anatomical basis of clinical practice. , (2005).
  5. Fischer, G., et al. Direct injection into the dorsal root ganglion: technical, behavioral, and histological observations. J Neurosci Methods. 199 (1), 43-55 (2011).
  6. Zhao, X., et al. A long noncoding RNA contributes to neuropathic pain by silencing Kcna2 in primary afferent neurons. Nat Neurosci. 16 (8), 1024-1031 (2013).
  7. Xu, Y., Gu, Y., Wu, P., Li, G. W., Huang, L. Y. M. Efficiencies of transgene expression in nociceptive neurons through different routes of delivery of adeno-associated viral vectors. Hum Gene Ther. 14 (9), 897-906 (2003).
  8. Puljak, L., Kojundzic, S. L., Hogan, Q. H., Sapunar, D. Targeted delivery of pharmacological agents into rat dorsal root ganglion. J Neurosci Methods. 177 (2), 397-402 (2009).
  9. Mason, M. R. J., et al. Comparison of AAV serotypes for gene delivery to dorsal root ganglion neurons. Mol Ther. 18 (4), 715-724 (2010).
  10. Jelicic Kadic, A., Boric, M., Kostic, S., Sapunar, D., Puljak, L. The effects of intraganglionic injection of calcium/calmodulin-dependent protein kinase II inhibitors on pain-related behavior in diabetic neuropathy. Neurosci. 256, 302-308 (2014).
  11. Greenberg, M. S. . Handbook of neurosurgery. , (2010).
  12. Yu, H., Fischer, G., Hogan, Q. H. AAV-mediated gene transfer to dorsal root ganglion. Methods Mol Biol. 1382, 251 (2016).
  13. Yaksh, T. L., et al. Pharmacology and toxicology of chronically infused epidural clonidine HCL in dogs. Toxicol Sci. 23 (3), 319-335 (1994).
  14. Federici, T., et al. Surgical technique for spinal cord delivery of therapies: demonstration of procedure in gottingen minipigs. J Vis Exp. (70), e4371 (2012).
  15. Lee, J. H. T., et al. A novel porcine model of traumatic thoracic spinal cord injury. J Neurotrauma. 30 (3), 142-159 (2013).
  16. Raore, B., et al. Cervical multilevel intraspinal stem cell therapy: assessment of surgical risks in Gottingen minipigs. Spine. 36 (3), e164 (2011).
  17. Riley, J., et al. Intraspinal stem cell transplantation in amyotrophic lateral sclerosis: A phase I safety trial, technical note, and lumbar safety outcomes. Neurosurg. 71 (2), 405-416 (2012).
  18. Olmarker, K., Holm, S., Rosenqvist, A., Rydevik, B. Experimental nerve root compression. A model of acute, graded compression of the porcine cauda equina and an analysis of neural and vascular anatomy. Spine. 16 (1), 61-69 (1991).
  19. Bobo, R. H., et al. Convection-enhanced delivery of macromolecules in the brain. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 91 (6), 2076-2080 (1994).
  20. Lonser, R. R., Sarntinoranont, M., Morrison, P. F., Oldfield, E. H. Convection-enhanced delivery to the central nervous system. J Neurosurg. 122 (3), 697-706 (2015).
  21. Shen, J., Wang, H. Y., Chen, J. Y., Liang, B. L. Morphologic analysis of normal human lumbar dorsal root ganglion by 3D MR imaging. AJNR Am J Neuroradiol. 27 (0195–6108 (Print)), 2098-2103 (2006).
  22. Pleticha, J., et al. Minimally invasive convection-enhanced delivery of biologics into dorsal root ganglia: validation in the pig model and prospective modeling in humans. J Neurosurg. 121 (4), 851-858 (2014).
check_url/it/56434?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Unger, M. D., Maus, T. P., Puffer, R. C., Newman, L. K., Currier, B. L., Beutler, A. S. Laminotomy for Lumbar Dorsal Root Ganglion Access and Injection in Swine. J. Vis. Exp. (128), e56434, doi:10.3791/56434 (2017).

View Video