Summary

Una base de RANKL osteoclasto cultura ensayo de médula ósea de ratón para investigar el papel de mTORC1 en la formación de osteoclastos

Published: March 15, 2018
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Summary

Este manuscrito describe un protocolo para aislar y la cultura osteoclastos en vitro de médula ósea de ratón y para estudiar el papel de lo mamíferos/mecanicista Diana de la rapamicina 1 complejo en la formación de osteoclastos.

Abstract

Los osteoclastos son único hueso-resorbing células que diferencian del linaje monocito/macrófago de la médula ósea. Disfunción de los osteoclastos puede resultar en una serie de enfermedades metabólicas del hueso, incluyendo la osteoporosis. Para desarrollar objetivos de productos farmacéuticos para la prevención de pérdida de masa ósea patológica, se deben entender los mecanismos por el cual los osteoclastos diferencian de precursores. La capacidad de aislar y un gran número de osteoclastos en vitro la cultura es fundamental para determinar el papel de genes específicos en la diferenciación de los osteoclastos. Inactivación del mecanicista/mamíferos objetivo de rapamicina complejo 1 (TORC1) en osteoclastos puede disminuir el número de osteoclastos y aumenta la masa ósea; sin embargo, los mecanismos subyacentes requieren estudio adicional. En el presente estudio, se describe un protocolo basado en RANKL para aislar y cultura osteoclastos de médula ósea de ratón y estudiar la influencia de mTORC1 inactivación en la formación de osteoclastos. Este protocolo con éxito dio lugar a un gran número de osteoclastos gigantes, normalmente dentro de una semana. Supresión de Raptor deterioró la formación de osteoclastos y disminución de la actividad de la fosfatasa ácida tartrato resistente secretor, indicando que eso mTORC1 es fundamental para la formación de osteoclastos.

Introduction

El hueso es un órgano siempre-que cambia y es remodelado por osteoblastos y osteoclastos durante toda la vida. Osteoclastos se encargan de la resorción de la matriz mineralizada y osteoblastos sintetizan y secretan nuevo hueso matrices1. El equilibrio entre la reabsorción ósea y formación ósea es crucial para la salud de los huesos incluyendo el mantenimiento del hueso masa y respuesta a la estimulación y lesiones. Si este equilibrio se interrumpe, puede ocurrir una serie de enfermedades metabólicas óseas, incluyendo osteoporosis y enfermedades periodontales. En estas enfermedades, pérdida de masa ósea resultante de la resorción ósea osteoclástica supera el hueso formando capacidad de osteoblastos2,3. Así, con el fin de desarrollar objetivos farmacéuticos para tratar trastornos esqueléticos como la osteoporosis, es fundamental para entender la generación y la biología de osteoclastos4.

Osteoclastos son las células multinucleated gigante únicas localizadas en o cerca de la superficie del hueso y pertenecen a la familia de monocito/macrófago1. Ibbotson K. J., et al. informó un método para generar células similares a osteoclastos en vitro con medio que contiene 1,25-dihidroxi-vitamina D35. La identificación del factor estimulante de colonias de macrófagos (M-CSF) y el receptor activador del ligando de factor nuclear-κ B (RANKL) como factores esenciales de la formación de osteoclastos ha aumentado dramáticamente la eficiencia de la osteoclastogénesis in vitro 1 , 6 , 7. la capacidad de cultura osteoclastos en vitro ha mejorado nuestra comprensión de la generación y regulación de los osteoclastos.

El mecanicista/mamíferos objetivo de rapamicina (mTOR) funciones en dos complejos estructuralmente y funcionalmente distintos, a saber mTORC1 y mTORC28,9. Los dos complejos son distintos unos de otros debido a sus diferentes componentes y sustratos aguas abajo. mTORC1 contiene la única proteína reguladoras asociadas de mTOR (Raptor), mientras mTORC2 contiene al rapamicina insensible compañero de mTOR (Powder)9. mTORC1 pueden integrar y transmitir señales importantes para regular la diferenciación, proliferación y crecimiento celular. Recientemente, hemos demostrado que eso mTORC1 desempeña un papel clave en la red de la resorción ósea catabólica por la eliminación de Raptor para inactivar mTORC1 en osteoclastos10. Sin embargo, los mecanismos subyacentes requieren estudio adicional. En el presente estudio, se utilizó un método basado en RANKL osteoclastogenic generar osteoclastos macrófagos derivados de médula ósea (BMMs) de tipo salvaje (WT) y ratones RapCtsk y estudiar la influencia de mTORC1 inactivación en osteoclastos formación.

Protocol

Todos los procedimientos relativos a los animales se realizaron según el protocolo aprobado por el Panel administrativo de Stanford en el laboratorio Animal Care (APLAC) y fueron aprobados por el cuidado de animales y uso del Instituto de Shanghai de Bioquímica y celular Biología. 1. preparación Generar ratones de eliminación específicas de Raptor en osteoclastos (Raptorfl/fl; Ctsk-cre, en adelante RapCtsk) apareamiento …

Representative Results

Mediante el presente Protocolo, un gran número de osteoclastos gigantes fueron visto el día 6; Si no se observan osteoclastos gigantes, un día más de diferenciación de osteoclastos puede ser necesario (figura 1). Formación de osteoclastos exitosa fue confirmada por trampa de tinción (figura 2A). Osteoclastos son células de color rojo/morado vino gigantes con más de 3 núcleos. Más de 250 osteoclastos se obtuvieron en ca…

Discussion

El ensayo de osteoclastogenic es el método más utilizado para aislar y cultura osteoclastos en vitro12,13. Mientras que varias inducciones basadas en RANKL osteoclasto se han descrito13,14,15, el presente estudio describe un protocolo con algunas modificaciones basadas en los métodos anteriores.

En el estudio anterior, eran placas …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores agradecen a Dr. Minghan Tong y S. Kato para ratones y reactivos que amablemente. Agradecemos a los miembros del laboratorio de Zou para discusiones útiles. Este trabajo fue apoyado en parte por subvenciones de 973 programa del Ministerio Chino de ciencia y tecnología (MOST) [2014CB964704 y 2015CB964503], programa de investigación clínica del Hospital de 9 personas, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine. Gracias por la ayuda de instalaciones centrales para la biología de la célula e instalaciones centrales de Biología química, CAS centro de excelencia en Ciencia Molecular de la célula, Instituto Shanghai de Bioquímica y biología celular, Academia China de Ciencias.

Materials

Raptorfl/fl mice The Jackson Laboratory 013188
Ctsk-cre mice a gift from S. Kato, University of Tokyo, Tokyo, Japan
α-MEM Corning 10-022-CVR
Glutamine Gibico 25030081
Penicillin streptomycin Gibico 15140122
Fetal calf serum BioInd 04-001-1A
Recombinant mouse M-CSF protein R&D Q3U4F9
Recombinant mouse RANKL protein R&D Q3TWY5
RBC lysis buffer Beyotime C3702
Trypan blue Sigma-Aldrich 302643
Acetone Shanghai Chemical Co. Ltd.
Citrate solution Sigma-Aldrich 915
Formaldehyde solution Shanghai Chemical Co. Ltd.
Acid Phosphatase, Leukocyte (TRAP) Kit Sigma-Aldrich 387A-1KT
Fast Garnet GBC Base solution Sigma-Aldrich 3872
Sodium Nitrite Solution Sigma-Aldrich 914
Naphthol AS-BI Phosphate Solution Sigma-Aldrich 3871
Acetate solution Sigma-Aldrich 3863
Tartrate solution Sigma-Aldrich 3873
Dulbecco's phosphate-buffered saline Corning 21-031-CVR
L-tartaric acid Sigma-Aldrich 251380
Sodium tartrate dibasic dehydrate Sigma-Aldrich s4797
Glycine Shanghai Chemical Co. Ltd.
MgCl2 Shanghai Chemical Co. Ltd.
ZnCl2 Shanghai Chemical Co. Ltd.
NaOH Shanghai Chemical Co. Ltd.
Phosphatase substrate Sigma-Aldrich P4744
anti-Raptor Cell Signaling Technology 2280
anti-P-ribosomal protein S6 (S235/236) Cell Signaling Technology 2317
anti-ribosomal protein S6 Cell Signaling Technology 2211
anti-β-actin Santa Cruz Biotechnology sc-130300
37% formaldehyde Xilong scientific
polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane Bio-Rad
Western Chemiluminescent HRP Substrate (ECL) Millipore 00000367MSDS
IX71 Olympus
Envision Perkin Elmer
0.45-mm Syringe
Scissor
Mosquito forcep

Riferimenti

  1. Boyle, W. J., Simonet, W. S., Lacey, D. L. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 423 (6937), 337-342 (2003).
  2. Jaenisch, R., Bird, A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals. Nature Genetics. 33, 245-254 (2003).
  3. Feng, X., McDonald, J. M. Disorders of bone remodeling. Annu Rev Pathol. 6, 121-145 (2011).
  4. Boyce, B. F. Advances in osteoclast biology reveal potential new drug targets and new roles for osteoclasts. J Bone Miner Res. 28 (4), 711-722 (2013).
  5. Ibbotson, K. J., Roodman, G. D., McManus, L. M., Mundy, G. R. Identification and characterization of osteoclast-like cells and their progenitors in cultures of feline marrow mononuclear cells. J Cell Biol. 99 (2), 471-480 (1984).
  6. Lacey, D. L., et al. Osteoprotegerin ligand is a cytokine that regulates osteoclast differentiation and activation. Cell. 93 (2), 165-176 (1998).
  7. Wong, B. R., et al. TRANCE is a novel ligand of the tumor necrosis factor receptor family that activates c-Jun N-terminal kinase in T cells. J Biol Chem. 272 (40), 25190-25194 (1997).
  8. Zoncu, R., Efeyan, A., Sabatini, D. M. mTOR: from growth signal integration to cancer, diabetes and ageing. Nat Rev Mol Cell Biol. 12 (1), 21-35 (2011).
  9. Bhaskar, P. T., Hay, N. The two TORCs and Akt. Dev Cell. 12 (4), 487-502 (2007).
  10. Dai, Q., et al. Inactivation of Regulatory-associated Protein of mTOR (Raptor)/Mammalian Target of Rapamycin Complex 1 (mTORC1) Signaling in Osteoclasts Increases Bone Mass by Inhibiting Osteoclast Differentiation in Mice. J Biol Chem. 292 (1), 196-204 (2017).
  11. Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. . Molecular cloning: a laboratory manual. , (1989).
  12. Weischenfeldt, J., Porse, B. Bone Marrow-Derived Macrophages (BMM): Isolation and Applications. CSH Protoc. 2008, (2008).
  13. Bradley, E. W., Oursler, M. J. Osteoclast culture and resorption assays. Methods Mol Biol. 455, 19-35 (2008).
  14. Tevlin, R., et al. Osteoclast derivation from mouse bone marrow. J Vis Exp. (93), e52056 (2014).
  15. Xing, L., Boyce, B. F. RANKL-based osteoclastogenic assays from murine bone marrow cells. Methods Mol Biol. 1130, 307-313 (2014).
  16. Hsu, H., et al. Tumor necrosis factor receptor family member RANK mediates osteoclast differentiation and activation induced by osteoprotegerin ligand. Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (7), 3540-3545 (1999).
  17. Underwood, J. C. From where comes the osteoclast?. J Pathol. 144 (4), 225-226 (1984).
  18. Wein, M. N., et al. Control of bone resorption in mice by Schnurri-3. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (21), 8173-8178 (2012).
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Citazione di questo articolo
Dai, Q., Han, Y., Xie, F., Ma, X., Xu, Z., Liu, X., Zou, W., Wang, J. A RANKL-based Osteoclast Culture Assay of Mouse Bone Marrow to Investigate the Role of mTORC1 in Osteoclast Formation. J. Vis. Exp. (133), e56468, doi:10.3791/56468 (2018).

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