Summary

Ballong-baserte skade å indusere Myointimal Hyperplasia i musen Abdominal Aorta

Published: February 07, 2018
doi:

Summary

Denne artikkelen viser en murine modell for å studere utviklingen av myointimal hyperplasia (MH) etter aorta ballong skader.

Abstract

Bruk av dyr modeller er viktig for en bedre forståelse av MH, én store årsaken til arterial stenose. I denne artikkelen viser vi en murine ballong denudation modell, som kan sammenlignes med etablerte fartøyet skade modeller i store dyr. Aorta denudation modellen med ballong katetre etterligner klinisk setting og fører til tilsvarende pathobiological og fysiologiske endringer. Kort, etter utfører en vannrett snitt i aorta abdominalis, en ballong kateter vil bli satt inn i fartøyet oppblåst og introdusert retrogradely. Inflasjonen av ballongen vil føre til intima skade og overdistension av fartøyet. Etter fjerner kateter, stengt den aorta snittet med enkelt masker. Modellen vist i denne artikkelen er reproduserbare, enkel å utføre, og kan etableres raskt og pålitelig. Det er spesielt egnet for å vurdere dyre eksperimentelle terapeutiske agenter, som kan brukes på en økonomisk måte. Ved å bruke ulike knockout-mouse stammer, kan effekten av ulike gener på MH utvikling vurderes.

Introduction

Arterial stenose i koronar og eksterne arterier har stor effekt på sykelighet og dødelighet av pasienter1. En underliggende patologisk mekanismen er myointima hyperplasia (MH), som er preget av økt spredning, overføring og syntese av ekstracellulær matrix proteiner fra vaskulær glatt muskel celler (SMC)2. SMC ligger i media laget av fartøyet og overføre ved stimulering av overflaten av lumen. Stimulerende signaler omfatter vekst faktorer cytokiner, celle-celle kontakt, lipider, ekstracellulær matrix komponenter og mekanisk skjær og strekke styrker3,4,5,6. Skader av fartøyet veggen, patologisk eller iatrogenic, forårsake endothelial celle og glatt muskel celle skade og stimulere inflammatoriske reaksjoner, og dermed føre til MH7.

Forskjellige dyr modeller er tilgjengelige arteriell skade og myointima hyperplasia. Store dyr som griser eller hunder har fordelen av deler en lignende arterien og koronar anatomi med mennesker og er spesielt egnet for studier undersøker angioplasty teknikker, prosedyre og enheter8. Gris modeller har imidlertid ulempen av høyere thrombogenicity9,10, mens hundene bare har en mild reaksjon fartøyet skade11. I tillegg krever alle store dyr modeller spesielt kabinett, utstyr og ansatte, som er forbundet med høye kostnader og er ikke alltid tilgjengelig på institusjon. Små dyr modeller inkluderer rotter og mus. Sammenlignet med rotter, har mus fordelene av lavere kostnader og eksistensen av en rekke slå ut modeller. Modellen beskrev i denne videoen kan kombineres med ApoE-/-mus med en vestlig kosthold å tett etterligne klinisk setting av angioplasty aterosklerotisk fartøy12. Tidligere modeller indusert vaskulære skader via wire skade13, flytende uttørking14, våren15eller mansjett skade16. Siden natur skaden vil sterkt påvirke utviklingen og Grunnloven av MH, er ved hjelp av en ballong kateter for å indusere fartøyet skade den beste måten å etterligne klinisk setting.

I denne artikkelen beskriver vi en ny metode for å indusere MH med en ballong kateter i mus. Bruk av en ballong kateter (1,2 mm x 6 mm) med en RX-Port (figur 1A) kan skrape av intimal laget, og på samme tid, induksjon av en overdistension av fartøyet. Begge disse faktorene er viktig utløser for utvikling av MH. Observasjon for denne modellen er 28 dager17.

Protocol

Dyr mottatt Human omsorg i samsvar med veiledningen for prinsipper i forsøksdyr, utarbeidet av Institute of laboratorium dyr Resources og publisert av National Institutes of Health. Alle dyr protokoller ble godkjent av ansvarlige lokale myndigheter (” Amt für Gesundheit und Verbraucherschutz, Hansestadt (Office for helse og forbrukervern) Hamburg”). 1. kateter forberedelse Merk: Se Tabell for materiale for informasjon om kateter. Ta ka…

Representative Results

Ballong denudation er en passende modell å studere utviklingen av MH i mus. Dyr komme seg frisk fra kirurgi og viser en utmerket fysisk tilstand etter operasjon. Vi etablerte denne modellen i 50 mus med mindre enn 3% dødsrate på grunn av den kirurgiske prosedyren. Tallene 1B -C Vis de viktigste kirurgiske trinnene. Etter en huden snitt langs den linea alba, identifisere aorta abdominalis. Plass Mikrokirurgiske klemmer (<s…

Discussion

Denne artikkelen viser en murine modell for å studere utviklingen av myointimal hyperplasia og tillater utforskningen av det underliggende patologiske prosessen og testing av nye medisiner eller behandlingsalternativer.

Det viktigste trinnet i denne protokollen er denudation av aorta. Forsiktighet bør betales i dette trinnet som overdreven denudation vil føre til aneurisme dannelse og modell feil. På den annen side, hvis denudation er utført tilstrekkelig, vil for lite myointima utvikle. …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Christiane Pahrmann for hennes teknisk assistanse.

DW ble støttet av Max Kade Foundation. T.D. fått tilskudd fra annet Kröner Fondation (2012_EKES.04) og Deutsche Forschungsgemeinschaft (DE2133/2-1_. S. S. mottatt forskningsmidler fra Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG; SCHR992/3-1, SCHR992/4-1).

Materials

10-0 Ethilon suture Ethicon 2814G
3 mL Syringe BD Medical 309658
37% HCl Sigma-Aldrich H1758
5-0 prolene suture Ethicon EH7229H
6-0 prolene suture Ethicon 8706H
Acid Fuchsin Sigma-Aldrich F8129-25G Trichrome staining
Antigen retrieval solution Dako S1699
Azophloxin Waldeck 1B-103 Trichrome staining
Bepanthen Eye and Nose ointment Bayer 1578675 Eye ointment
Betadine Solution Betadine Purdue Pharma NDC:67618-152
C57BL/6J Charles River Stock number 000664
Clamp applicator Fine Science Tools 18056-14
Collagen 3 abcam ab7778 Antibody
DAPI Thermo Fischer D1306
Donkey anti-Goat IgG AF555 Invitrogen A21432 Secondary antibody
Donkey anti-Rabbit IgG AF488 Invitrogen A21206 Secondary antibody
Donkey anti-Rabbit IgG AF488 Invitrogen A11055 Secondary antibody
Donkey anti-Rabbit IgG AF555 Invitrogen A31572 Secondary antibody
Ethanol 70% Th. Geyer 2270
Ethanol 96% Th. Geyer 2295
Ethanol absolute Th. Geyer 2246
FAP abcam ab28246 Antibody
Forceps fine Fine Science Tools 11251-20
Forceps standard Fine Science Tools 11023-10
Glacial Acetic Acid Sigma-Aldrich 537020
Hair clipper WAHL 8786-451A ARCO SE
Heparin Rotexmedica PZN 3862340 25.000 I.E./mL
High temperature cautery kit Bovie 18010-00
Image-iT FX Signal Enhancer Invitrogen I36933 Blocking solution
Light Green SF Waldeck 1B-211 Trichrome staining
Microsurgical clamp Fine Science Tools 18055-04 Micro-Serrefine – 4mm
MINI TREK Coronary Dilatation Catheter 1.20 mm x 6 mm / Rapid-Exchange Abbott 1012268-06U
Molybdatophosphoric acid hydrate Merck 1.00532.0100 Trichrome staining
NaCl 0,9% B.Braun PZN 06063042 Art. Nr.: 3570160
Needle holder Fine Science Tools 12075-14
Novaminsulfon Ratiopharm PZN 03530402 Metamizole
Orange G Waldeck 1B-221 Trichrome staining
Paraffin Leica biosystems REF 39602004
PBS pH 7,4 Gibco 10010023
PFA 4% Electron Microscopy Sciences #157135S
Ponceau S solution Serva Electrophoresis 33427 Trichrome staining
Primary antibody diluent Dako S3022
Prolong Gold Mounting solution Thermo Fischer P36930 Mounting solution for immunofluorescence stained slides
Replaceable Fine Tip Bovie H101
Resorcin-Fuchsin Weigert Waldeck 2E-30 Trichrome staining
Rimadyl Pfizer 400684.00.00 Carprofen
Scissors Fine Science Tools 14028-10
Scissors Vannas-style Fine Science Tools 15000-03
Secondary antibody diluent Dako S0809
Fast acting Adhesive MINIS 3x1g UHU 45370 Cyanoacrylate
Slide Rack Ted Pella 21057
SM22 abcam ab10135 Antibody
SMA abcam ab21027 Antibody
Staining dish Ted Pella 21075
Surgical microscope Leica M651
Tabotamp fibrillar Ethicon 431962 Absorbable hemostat
Transpore Surgical Tape 3M 1527-1
U-100 Insulin syringe BD Medical 324825
Vessel Dilator Fine Science Tools 18603-14
Vitro-Clud Langenbrinck 04-0001
Weigerts iron hematoxylin Kit Merck 1.15973.0002 Trichrome staining
Xylene Th. Geyer 3410

Riferimenti

  1. Kochanek, K. D., Xu, J., Murphy, S. L., Minino, A. M., Kung, H. C. Deaths: final data for 2009. Natl Vital Stat Rep. 60 (3), 1-116 (2011).
  2. Austin, G. E., Ratliff, N. B., Hollman, J., Tabei, S., Phillips, D. F. Intimal proliferation of smooth muscle cells as an explanation for recurrent coronary artery stenosis after percutaneous transluminal coronary angioplasty. J Am Coll Cardiol. 6 (2), 369-375 (1985).
  3. Greenwald, S. E., Berry, C. L. Improving vascular grafts: the importance of mechanical and haemodynamic properties. J Pathol. 190 (3), 292-299 (2000).
  4. Majesky, M. W., Schwartz, S. M. Smooth muscle diversity in arterial wound repair. Toxicol Pathol. 18 (4 Pt 1), 554-559 (1990).
  5. Owens, G. K. Regulation of differentiation of vascular smooth muscle cells. Physiol Rev. 75 (3), 487-517 (1995).
  6. Owens, G. K., Kumar, M. S., Wamhoff, B. R. Molecular regulation of vascular smooth muscle cell differentiation in development and disease. Physiol Rev. 84 (3), 767-801 (2004).
  7. Kleemann, R., Zadelaar, S., Kooistra, T. Cytokines and atherosclerosis: a comprehensive review of studies in mice. Cardiovasc Res. 79 (3), 360-376 (2008).
  8. Karas, S. P., et al. Coronary intimal proliferation after balloon injury and stenting in swine: an animal model of restenosis. J Am Coll Cardiol. 20 (2), 467-474 (1992).
  9. Ip, J. H., et al. The role of platelets, thrombin and hyperplasia in restenosis after coronary angioplasty. J Am Coll Cardiol. 17 (6 Suppl B), 77B-88B (1991).
  10. Mason, R. G., Read, M. S. Some species differences in fibrinolysis and blood coagulation. J Biomed Mater Res. 5 (1), 121-128 (1971).
  11. Lafont, A., Faxon, D. Why do animal models of post-angioplasty restenosis sometimes poorly predict the outcome of clinical trials?. Cardiovasc Res. 39 (1), 50-59 (1998).
  12. Matter, C. M., et al. Increased balloon-induced inflammation, proliferation, and neointima formation in apolipoprotein E (ApoE) knockout mice. Stroke. 37 (10), 2625-2632 (2006).
  13. Lindner, V., Fingerle, J., Reidy, M. A. Mouse model of arterial injury. Circ Res. 73 (5), 792-796 (1993).
  14. Simon, D. I., et al. Decreased neointimal formation in Mac-1(-/-) mice reveals a role for inflammation in vascular repair after angioplasty. J Clin Invest. 105 (3), 293-300 (2000).
  15. Sata, M., et al. A mouse model of vascular injury that induces rapid onset of medial cell apoptosis followed by reproducible neointimal hyperplasia. J Mol Cell Cardiol. 32 (11), 2097-2104 (2000).
  16. Moroi, M., et al. Interaction of genetic deficiency of endothelial nitric oxide, gender, and pregnancy in vascular response to injury in mice. J Clin Invest. 101 (6), 1225-1232 (1998).
  17. Painter, T. A. Myointimal hyperplasia: pathogenesis and implications. 2. Animal injury models and mechanical factors. Artif Organs. 15 (2), 103-118 (1991).
  18. Stubbendorff, M., et al. Inducing myointimal hyperplasia versus atherosclerosis in mice: an introduction of two valid models. J Vis Exp. (87), e51459 (2014).
  19. Deuse, T., et al. Dichloroacetate prevents restenosis in preclinical animal models of vessel injury. Nature. 509 (7502), 641-644 (2014).
check_url/it/56477?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Tediashvili, G., Wang, D., Reichenspurner, H., Deuse, T., Schrepfer, S. Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta. J. Vis. Exp. (132), e56477, doi:10.3791/56477 (2018).

View Video