Summary

La microscopia basato su metodi per la valutazione della migrazione delle cellule epiteliali durante In Vitro la guarigione arrotolata

Published: January 02, 2018
doi:

Summary

Questo manoscritto descrive come incisione-come le lesioni fatta su monostrati di cellule epiteliali in coltura convenientemente modello ferita curativa in vitro, che consente per l’imaging di confocal o microscopia di esame del laser, e che in grado di fornire alta qualità dati quantitativi e qualitativi per studiare il comportamento delle cellule sia i meccanismi coinvolti nella migrazione.

Abstract

Migrazione delle cellule è un aspetto obbligatorio per la guarigione della ferita. Creazione artificiale ferite su modelli animali di ricerca spesso risultati in costose e complicate procedure sperimentali, mentre potenzialmente manca di precisione. Coltura in vitro di linee cellulari epiteliali fornisce una piattaforma adatta per la ricerca il comportamento migratorio delle cellule nella guarigione delle ferite e l’impatto dei trattamenti su queste cellule. La fisiologia delle cellule epiteliali è spesso studiata in condizioni di non-confluenti; Tuttavia, questo approccio non analoghe condizioni di guarigione naturale. Compromettere l’integrità dell’epitelio con mezzi meccanici genera un modello realistico, ma può ostacolare l’applicazione delle tecniche molecolari. Di conseguenza, tecniche di microscopia di base sono ottimali per lo studio della migrazione delle cellule epiteliali in vitro. Qui dettagliamo due metodi specifici, il dosaggio di gratta e Vinci di ferita artificiale e analisi anteriore della migrazione artificiale, che può ottenere dati quantitativi e qualitativi, rispettivamente, sulle prestazioni migratoria delle cellule epiteliali.

Introduction

Migrazione delle cellule è necessaria per la guarigione delle ferite, come è responsabile per la chiusura definitiva del divario epiteliale e restauro del perturbato superficie1. L’esecuzione di ferite artificiali nei modelli animali consente per la replica di questo complesso processo in vicino a condizioni fisiologiche2. Tuttavia, questo approccio comporta spesso costose e complicate procedure sperimentali, che potenzialmente mancano di precisione per lo studio di processi distinti, a causa della natura complessa del processo di guarigione.

Coltura in vitro di linee cellulari epiteliali fornisce un’utile alternativa ai modelli animali per la ricerca il ruolo che queste cellule svolgono nella guarigione della ferita e gli effetti del trattamento su comportamento migratore delle cellule. La fisiologia delle cellule epiteliali è spesso studiata mediante tecniche molecolari utilizzando colture non-confluenti3,4,5,6; Tuttavia, la rottura dell’integrità dell’epitelio viene solitamente ottenuta da fini incisioni meccaniche. Nella coltura cellulare, questo implica che trascurabile numero di cellule può essere esposti al divario di ferita, e che rappresentano un campione troppo piccolo per tecniche di biologia molecolare. Tuttavia, queste lesioni possono essere studiate su scala microscopica, sfruttando le proprietà innate migratori di alcune linee cellulari epiteliali, come il visone epiteliali del polmone delle cellule (Mv1Lu) o la cella spontaneamente immortalizzate dei cheratinociti umani (HaCaT) linee.

Qui abbiamo descritto un metodo per microscopia che è adatto per ottenere dati quantitativi sulla migrazione delle cellule epiteliali nel contesto della cicatrizzazione3,4,7,8. Inoltre, vi presentiamo ulteriori metodi che sono utili per studiare i cambiamenti qualitativamente morfologiche e molecolari che si verificano su monostrati epiteliali durante la migrazione. Nel complesso, questi metodi forniscono un quadro per studiare la dinamica e il cambiamenti morfologici coinvolti con il comportamento delle cellule epiteliali e la risposta ai trattamenti durante la guarigione della ferita.

Protocol

1. artificiale ferita Scratch test per studi quantitativi Preparazione dello strato monomolecolare delle cellule Lavorando in condizioni sterili, di semi e far crescere cellule epiteliali Mv1Lu o HaCaT in matracci di cultura utilizzando medium siero-completato. Aggiornamento media una volta ogni 24-48 h. Dopo le cellule raggiungono 80% confluenza, staccare le cellule utilizzando un metodo appropriato, cioè, trypsinization9.Nota: Mv1Lu e HaCaT …

Representative Results

Il dosaggio zero ferita artificiale per studi quantitativi: valutazione del fattore di crescita epidermico (EGF) Promozione della migrazione: L’EGF è un ben noto induttore della proliferazione di cellule epiteliali e migrazione e così un controllo positivo per quantificare la promozione di migrazione. Monostrati di cellule umane Mv1Lu e HaCaT sono stati utilizzati nelle analisi gratta e Vinci della ferita e immagini di pre-tratta…

Discussion

Alla pelle o rottura della membrana mucosa, la funzione della barriera viene ripristinata dalle azioni di numerosi tipi di cellule, tra cui fibroblasti o cellule epiteliali ed immuni. Congiuntamente, queste cellule subiscono un complesso processo che coinvolge l’apoptosi, proliferazione, differenziazione e soprattutto, dei fibroblasti ed epiteliale delle cellule migrazione, che è il meccanismo ultimo responsabile per il restauro del tessuto perturbato e la chiusura del divario epiteliale superficiale1<…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vogliamo ringraziare i membri più anziani del laboratorio che aiutano a migliorare e perfezionare queste tecniche allo stato effettivo: Dr. Celia Martinez-Mora; Dr. Anna Mrowiec, Dr. Catalina Ruiz-Cañada e Dr. Antonia Alcaraz-García. Siamo in debito con l’Hospital Clínico Universitario Virgen de la Arrixaca per sostenere fortemente lo sviluppo di queste tecniche. Anche l’Instituto de Salud Carlos III, Fondo de Investigaciones Sanitarias. Piano Estatal I + D + io e Instituto de Salud Carlos III-Subdirección General de Evaluación y Fomento de la Investigación (n. Grant: PI13/00794); www.ISCIII.es. Fondos FEDER “Una manera de hacer Europa”. Ringraziamo anche Universidad de Murcia, IMIB-Arrixaca e FFI per assistenza e supporto amministrativo. Infine, vogliamo dare un ringraziamento speciale Dr. Isabel Martínez-Argudo e la Facultad de Ciencias y Ambientales Bioquímica, Campus Tecnológico de la Fábrica de Armas, Universidad Castilla la Mancha, Toledo per il loro supporto gentile in volentieri cedendo il Biomedicina e biotecnologie laboratorio per rendere possibile la parte filmata di questa carta.

Materials

Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Biowest, Nuaillé, France L0102-500 Optional 10 % FBS supplement
Eagles’s Minimum Essential Medium (EMEM) Lonza BE12 -662F Optional 10 % FBS supplement
L-Glutamine Lonza BE17-605E Use at 2 mM
Fetal Bovine Serum (FBS) Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA USA DE17603A
Trypsin-EDTA Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA T4049 Dilute as appropriate
Poly-L-Lysine Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA P9155
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (DPBS) (10x) Gibco by Life Technologies 14200-067 Dilute to 1x
24-well culture plates BD FALCON//SARSTED 734-0020
6-well culture plates SARSTEDT 83-3920
Epidermal Growth Factor (EGF) Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA E9644 Used 10 ng/mL
Round cover glass MENZEL-GLÄSER MENZCB00120RA020 SHORT DEPTH OF FIELD
Reinforced razor blade no. 743 Martor (through VWR) MARO743.50
200 µl sterile aerosol pipet tips VWR 732-0541
20 µl sterile aerosol pipet tips VWR 732-0528
Digital camera coupled phase contrast microscope Motic Spain Moticam camera 2300 3.0 M Pixel USB 2.0; Motic Optic AE31
Confocal microscope ZEISS Microimaging, Germany LSM 510 META
10 cm Culture dish BD FALCON 353003
Rabbit polyclonal anti c-Jun antibody Santa Cruz Biotechnology sc-1694 Used 1:100
Anti-rabbit IgG (polyclonal goat ) AF 488 Invitrogen A11008 Used 1:400
Hoechst-33258 Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA 14530 Used 1:1000
Alexa Fluor 594 phalloidin (in methanol) (red) Invitrogen A12381 Used 1:100
Bovine Serum Albumin Santa Cruz Biotechnology SC-2323
Triton X-100 Sigma-Aldrich, St Louis, MO, USA T9284
Skim milk BD DIFCO 232100
ImageJ National Institutes of Health, USA Release 1.50i
Zen LSM 510 image processing software ZEISS Microimaging, Germany Release 5.0 SP 1.1

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Liarte, S., Bernabé-García, Á., Armero-Barranco, D., Nicolás, F. J. Microscopy Based Methods for the Assessment of Epithelial Cell Migration During In Vitro Wound Healing. J. Vis. Exp. (131), e56799, doi:10.3791/56799 (2018).

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