Summary

Оценка терапии стволовой клетки в модели двустороннего коленного сухожилия травмы в крыс

Published: March 30, 2018
doi:

Summary

Этот документ описывает подготовку и оценку сфероидов матрица производные мезенхимальных стволовых клеток пуповины с моделью дефект двусторонних коленного сухожилия в крысу. Эта модель был связан с приемлемым заболеваемости был найден для выявления различий между необработанных и обработанных сухожилий и между двумя процедурами испытания.

Abstract

Регенеративной медицины обеспечивает Роман альтернатив для условий, которые ставят под угрозу традиционные методы лечения. Распространенность и заболеваемость плеча различных видов, в сочетании с ограниченной целебные свойства этой ткани, запрос поиска для клеточной терапии и самоходные разработка экспериментальных моделей для изучения их эффективности. Матрица производные мезенхимальные стволовые клетки пуповинной (UCM-MSC) являются привлекательными кандидатами, потому что они обильные, легко собирать, обойти этические проблемы и риск формирования тератома, но более тесно напоминающие примитивные стволовые клетки чем Взрослый ткани производные MSCs. значительный интерес была сосредоточена на Хитозан как стратегию для повышения свойств MSCs через сфероида формирования. Этот документ детали методы, чтобы изолировать UCM-MSCs, подготовить сфероидов хитозана фильм и анализировать влияние сфероида формирование на поверхности маркер выражения. Следовательно для имплантации в vivo сфероидов UCM-MSC, сформированные на фильм хитозана описано создание модели двустороннего коленного сухожилия травмы в крыс. Без осложнений было отмечено в исследовании в отношении заболеваемости, подчеркнуть рост эффекты, или ткани инфекции. Общая функциональная оценка оперированных крыс на 7 дней был ниже, чем у нормальных крыс, но вернулся к нормальной в течение 28 дней после операции. Гистологические десятки заживления тканей подтвердили наличие сгусток в лечение дефектов оценивается в 7 дней, отсутствие реакции инородного тела и прогрессирует исцеления в 28 дней. Эта модель дефект двусторонних коленная чашечка сухожилие управляет между индивидуальной вариативности через создание внутреннего контроля в каждом крыса, связанные с приемлемым заболеваемости и позволить выявить различия между необработанной сухожилий и лечения.

Introduction

Сухожилия травмы является одним из наиболее распространенных причин значительные боли и мышечные атрофии различных видов1. В ветеринарной медицины сухожилия и связки травмы представляют особый интерес в лошадей, 82% всех травм в гонке лошади включать опорно-двигательного аппарата, а 46% из них влияет на сухожилий и связок,2,3. Формирование рубцовой ткани влияет на биомеханические свойства исцелил сухожилий и объясняет охраняемой прогноз для возвращения спортивная(ый) использования после сгибателей сухожилия травм; Re травм происходит в течение 2 лет в до 67% лошадей консервативному4. Регенеративной медицины обеспечивает Роман альтернативы условие, что проблемы традиционных методов лечения. Аутологичных стволовых клеток выпустила некоторые обнадеживающие результаты5,6 , но ограничивается заболеваемости, связанный с ткани коллекции, из-за обработки/перепрограммирование задержки отправления клеток и влияние состояние здоровья пациента (например, возраст) на свойства стволовых клеток,7,8. Эти ограничения обеспечивают обоснование для расследования аллогенных стволовых клеток в качестве альтернативы готовых. Плода придатков матки производные клетки являются привлекательными кандидатами, потому что они обойти этические проблемы и риск формирования тератома, связанные с эмбриональных стволовых клеток. Среди плода придатков матки пуповины матрица (ЦСМ), также названный Wharton желе, обильные и легко собрать.

Независимо от источника клеток повышения stemness необходимо создать банк клеток аллогенной восстановительной медицины. С функциональной точки зрения stemness можно определить как потенциал для самообновления и несколькими линии дифференциации9. Свидетельство о stemness опирается на пролиферации и дифференцировки анализов, а также выражение гена маркеры Oct4, Sox2 и Nanog9. Одной из стратегий повышения stemness основывается на использовании биоматериалов в качестве наполнителей и перевозчиков, повышению пролиферации и дифференцировки UCM-MSCs. Этот подход устраняет озабоченность по поводу манипуляции транскрипционный анализ факторов перепрограммировать зрелых клеток в индуцированных плюрипотентных клеток. Среди биоматериалов, рассматривать в качестве потенциальных носителей для стволовых клеток chitosan является привлекательным для его биосовместимость и разлагаемость10. Этот естественный аминополисахарид формируется щелочное дезацетилирование хитина, вторым наиболее распространенным природный полисахарид, главным образом получены как subproduct моллюсков10. Мы уже исследованы взаимодействия между MSCs и хитозана леса и наблюдали образование сфероидов11,12,13,14,15, 16. Мы также сообщали о превосходстве chondrogenesis хитозана матриц12,13,14,,1516,17, 18. Совсем недавно два независимых исследований описано формирование сфероидов жировой ткани и ткани плаценты производных MSCs, культивируемых в фильме хитозана19,20. Это образование сфероидов не только расширение stemness, но также улучшено сохранение стволовых клеток после в vivo имплантации20.

Распространенность и заболеваемость плеча различных видов побудили разработка экспериментальных моделей для изучения патофизиологии Тендинопатии и тестирования новых методов лечения, таких как инъекции стволовых клеток. В лошадей коллагеназа индуцированной тендинит — это общая модель для демонстрации эффективности с помощью MSCs в сухожилие ремонт21. Актуальность этого подхода ограничена, как инъекции вызывают острые воспалительные изменения, тогда как клинический Тендинопатии обычно являются результатом хронического перенапряжения22,23. Кроме того химической индукции сухожилия болезнь вызывает исцеления ответ и не реплицирует нарушение заживления в клинических случаев22,23. Иссечение сегмента сухожилие поверхностного цифровой сгибатели был описан как хирургические модель тендинит в лошадей24. Совсем недавно миниинвазивная подход был использован для ограничения травматических повреждений центральное ядро поверхностные цифровой сгибателей сухожилия25. Хирургическое модели не имитировать усталость механизм, который может привести к естественной сухожилия болезни и, как правило, не хватает воспроизводимость в степени повреждения, создал25. Независимо от модели, заболеваемости и затраты, связанные с лошадей модели сухожилия заболевания являются дополнительные ограничения, которые оправдывают интерес к грызунов модели в качестве первого шага в естественных условиях оценки Роман терапии.

Одно из главных достоинств экспериментальных моделей на грызунах состоит из стоимости и способность контролировать межличностная изменчивость. Грызунов может быть стандартизирована в отношении различных физиологических факторов из-за их быстрые темпы роста и относительно короткой продолжительности жизни, ограничение источников вариации и тем самым уменьшая количество животных, необходимых для выявления различий. Стратегии чтобы побудить сухожилия болезни грызунов полагались на химической индукции, но и на хирургическое создание частичных сухожилия дефекты21. Хирургическое модели могут имитировать природные Тендинопатии лучше, чем химические модели, но может привести к более высокой заболеваемости и авария поврежденные сухожилия. В этом отношении крысы, кажется лучше кандидатов, чем мышей для этих моделей, как их размер позволяет создание более крупных дефектов, способствуя тем самым оценки заживления тканей. Крысах Sprague-Dawley были использованы в экспериментальных исследованиях Тендинопатии в четырех основных сухожилий групп: манжета ротатора, сгибателей, Ахиллес и26коленного сухожилия. Среди них модели с участием коленного сухожилия являются особенно привлекательными из-за большего размера этой сухожилия и легкость доступа к нему,27. Коленного сухожилия четырехглавой мышцы придает бугристости большеберцовой кости. В рамках этой разгибателей механизм надколенника является Сесамовидные кости, которая направляет действия четырехглавой и очерчивает проксимальных степени коленного сухожилия. Присутствие костлявые якорей в проксимальном и дистальном экстентов коленного сухожилия облегчает биомеханические тесты. Модели с участием коленного сухожилия обычно полагаются на односторонний хирургический дефектов, с контралатеральной сухожилие нетронутыми служит управления28,29. Наиболее распространенная модель дефект коленного сухожилия включает в себя вырезание Центральная часть (1 мм в ширину) коленного сухожилия от дистальной верхушки надколенника для вставки бугристости большеберцовой кости, в то время как контралатеральной коленного сухожилия остается без изменений. Меры исходы включали гистологии, биомеханические Неразрушающий или биомеханические тестирования сбоя, УЗИ, ex vivo флуоресценции изображений, брутто наблюдения и функциональные тесты28,30 ,31. Одностороннее модели не позволяют сравнения предлагаемого лечения с консервативное управление подобные травмы в то же самое животное. Аналогичным образом сравнение между несколькими лечения требует отдельных животных. Двусторонние модель будет устранить различия между отдельными и уменьшить количество животных, необходимых для исследования32. Однако двусторонние травмы может привести к увеличению заболеваемости, и двусторонние хромота может препятствовать оценки лечения. Несколько исследований кратко сообщают об использовании двусторонних коленного сухожилия дефектов в крыс, но внимание на последствия лечения, вместо того, чтобы Управление периоперационную и заболеваемости модели33,34.

Долгосрочная цель этого исследования заключается в разработке стратегии для улучшения stemness и в естественных условиях выживание UCM-MSCs суждено аллогенной трансплантации. Для достижения этой цели, мы недавно сообщили более stemness путем формирования сфероидов UCM-МСК на фильм хитозана и инкубации при гипоксических окружающей среды35. Эти свойства в vitro были связаны с улучшенными биомеханическими свойствами коленного сухожилия дефектов, относились с кондиционером UCM-MSCs. на основе этих результатов, крыса двусторонних коленного сухожилия дефект модель кажется подходящим для проверки кандидата лечение травм сухожилия36. Цель исследования сообщили здесь заключается в предоставлении подробных протоколов для изоляции и характеристика UCM-MSCs, подготовка биологические системы доставки для создания, стволовые клетки и лечение двусторонних коленная чашечка сухожилие дефектов и послеоперационные восстановление и оценки исцеление в пределах дефекты ткани.

Protocol

Все методы, описанные здесь были одобрены институциональный уход животных и использование Комитет (IACUC) Западного университета медицинских наук. 1. изоляция и расширение MSCs от лошадиного пуповины матрица Получить через плаценту от взрослых кобылы (беременности) пос…

Representative Results

В текущем исследовании результаты представлены как означает ± SD (стандартное отклонение). Клетки были изолированы от пуповины 6 кобыл, и процент изолированных клеточных линий, выражая поверхности маркер каждой ячейки под стандарт или Хитозан принадлежности были сопо?…

Discussion

Лошадиный клетки были отобраны для этого проекта потому, что мы в конечном итоге намерены проверить кандидат подходы в управлении природных Тендинопатии лошадей. Сухожилия травм в лошадей действительно привлекательным, как природные модели плеча в человеке за биологическое сходство …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы признать доктор Su, PhD, для ее статистического анализа данных. Авторы также поблагодарить доктора Мак-Клур, DVM, доктор DACLAM, за ее советы по анестезии и боль управления протоколы, используемые в исследовании. Этот проект был поддержан грантов от Западного университета медицинских наук канцелярии вице-президента для исследований (12678v) и USDA раздел 1433 фондов (2090).

Materials

PBS 10X Hyclone SH30258.01 Consumable
Collagenase type IA Worthington LS004197 Consumable
DMEM low glucose Hyclone SH30021.FS Consumable
Fetal Bovine Serum Hyclone SH30910.03 Consumable
Penicillin/Streptomycin 100X Hyclone SV30010 Consumable
Trypsin 0.25% Hyclone SH30042.01 Consumable
Accutase Innovative Cell Technologies AT104 Consumable
Trypan blue Hyclone SV30084.01 Consumable
Dimethyl Sulfoxide Sigma D2650 Consumable
Chitosan Sigma C3646 Consumable
Sodium Hydroxide Sigma S8045 Consumable
Bovine Serum Albumin Hyclone SH30574.01 Consumable
Round bottom polystyrene tube Corning 149591A Consumable
Mouse anti-horse CD44 (FITC) AbD serotec MCA1082F Consumable
Mouse anti-rat CD90 (FITC) AbD serotec MCA47FT Consumable
Mouse anti-horse MHC-II (FITC) AbD serotec MCA1085F Consumable
Mouse IgG1 (FITC) – Isotype Control AbD serotec MCA928F Consumable
Mouse monoclonal [SN6] to CD105 (FITC) abcam ab11415 Consumable
Mouse IgG1 (FITC) – Isotype Control abcam ab91356 Consumable
Mouse anti-human CD34 (FITC) BD BDB560942 Consumable
Mouse IdG1 kappa (FITC) BD BDB555748 Consumable
7-AAD BD BDB559925 Consumable
BD Accuri C6 Flow Cytometer BD Equipment
Vacutainer 5ml Med Vet International RED5.0 Consumable
Acid-citrate-dextrose Sigma C3821 Consumable
Calcium Chloride Sigma C5670 Consumable
Sevoflurane JD Medical 60307-320-25 Consumable
Rats Charles River Strain code: 400 Experimental animal
Rat surgical kit Harvard apparatus 728942 Equipment
Surgical Blade #15 MEDLINE MDS15115 Consumable
Rat MD's Baytril (2 mg/Tablet),
Rimadyl (2 mg/Tablet)
Bio Serv F06801 Consumable
Polyglactin 910, 5-0 Ethicon J436G Consumable
Eosin alchol shandon Thermo scientific 6766007 Consumable
Harris Hematoxylin Thermo scientific 143907 Consumable

Riferimenti

  1. Rossdale, P. D., Hopes, R., Digby, N. J., offord, K. Epidemiological study of wastage among racehorses 1982 and 1983. Vet Rec. 116 (3), 66-69 (1982).
  2. Black, D. A., Tucci, M., Puckett, A., Lawyer, T., Benghuzzi, H. Strength of a new method of achilles tendon repair in the rat – biomed 2011. Biomed Sci Instrum. 47, 112-117 (2011).
  3. Lake, S. P., Ansorge, H. L., Soslowsky, L. J. Animal models of tendinopathy. Disabil Rehabil. 30 (20-22), 1530-1541 (2008).
  4. Frank, C. B. Ligament structure, physiology and function. J Musculoskelet Neuronal Interact. 4 (2), 199-201 (2004).
  5. Godwin, E. E., Young, N. J., Dudhia, J., Beamish, I. C., Smith, R. K. Implantation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells demonstrates improved outcome in horses with overstrain injury of the superficial digital flexor tendon. Equine Vet J. 44 (1), 25-32 (2012).
  6. Smith, R. K., et al. Beneficial effects of autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells in naturally occurring tendinopathy. PLoS One. 8 (9), e75697 (2013).
  7. Fossett, E., Khan, W. S., Longo, U. G., Smitham, P. J. Effect of age and gender on cell proliferation and cell surface characterization of synovial fat pad derived mesenchymal stem cells. J Orthop Res. 30 (7), 1013-1018 (2012).
  8. Zaim, M., Karaman, S., Cetin, G., Isik, S. Donor age and long-term culture affect differentiation and proliferation of human bone marrow mesenchymal stem cells. Ann Hematol. 91 (8), 1175-1186 (2012).
  9. Leychkis, Y., Munzer, S. R., Richardson, J. L. What is stemness?. Stud Hist Philos Biol Biomed Sci. 40 (4), 312-320 (2009).
  10. VandeVord, P. J., et al. Evaluation of the biocompatibility of a chitosan scaffold in mice. J Biomed Mater Res. 59 (3), 585-590 (2002).
  11. Griffon, D. J., Abulencia, J. P., Ragetly, G. R., Fredericks, L. P., Chaieb, S. A comparative study of seeding techniques and three-dimensional matrices for mesenchymal cell attachment. J Tissue Eng Regen Med. 5 (3), 169-179 (2011).
  12. Schwartz, Z., Griffon, D. J., Fredericks, L. P., Lee, H. B., Weng, H. Y. Hyaluronic acid and chondrogenesis of murine bone marrow mesenchymal stem cells in chitosan sponges. Am J Vet Res. 72 (1), 42-50 (2011).
  13. Ragetly, G., Griffon, D. J., Chung, Y. S. The effect of type II collagen coating of chitosan fibrous scaffolds on mesenchymal stem cell adhesion and chondrogenesis. Acta Biomater. 6 (10), 3988-3997 (2010).
  14. Ragetly, G. R., Griffon, D. J., Lee, H. B., Chung, Y. S. Effect of collagen II coating on mesenchymal stem cell adhesion on chitosan and on reacetylated chitosan fibrous scaffolds. J Mater Sci Mater Med. 21 (8), 2479-2490 (2010).
  15. Ragetly, G. R., et al. Effect of chitosan scaffold microstructure on mesenchymal stem cell chondrogenesis. Acta Biomater. 6 (4), 1430-1436 (2010).
  16. Ragetly, G. R., Slavik, G. J., Cunningham, B. T., Schaeffer, D. J., Griffon, D. J. Cartilage tissue engineering on fibrous chitosan scaffolds produced by a replica molding technique. J Biomed Mater Res A. 93 (1), 46-55 (2010).
  17. Slavik, G. J., Ragetly, G., Ganesh, N., Griffon, D. J., Cunningham, B. T. A replica molding technique for producing fibrous chitosan scaffolds for cartilage engineering. Journal of Materials Chemistry. 17 (38), 4095-4101 (2007).
  18. Griffon, D. J., Sedighi, M. R., Schaeffer, D. V., Eurell, J. A., Johnson, A. L. Chitosan scaffolds: interconnective pore size and cartilage engineering. Acta Biomater. 2 (3), 313-320 (2006).
  19. Huang, G. S., Dai, L. G., Yen, B. L., Hsu, S. H. Spheroid formation of mesenchymal stem cells on chitosan and chitosan-hyaluronan membranes. Biomaterials. 32 (29), 6929-6945 (2011).
  20. Cheng, N. C., Wang, S., Young, T. H. The influence of spheroid formation of human adipose-derived stem cells on chitosan films on stemness and differentiation capabilities. Biomaterials. 33 (6), 1748-1758 (2012).
  21. Webster, R. A., Blaber, S. P., Herbert, B. R., Wilkins, M. R., Vesey, G. The role of mesenchymal stem cells in veterinary therapeutics – a review. N Z Vet J. 60 (5), 265-272 (2012).
  22. Khan, M. H., Li, Z., Wang, J. H. Repeated exposure of tendon to prostaglandin-E2 leads to localized tendon degeneration. Clin J Sport Med. 15 (1), 27-33 (2005).
  23. Sullo, A., Maffulli, N., Capasso, G., Testa, V. The effects of prolonged peritendinous administration of PGE1 to the rat Achilles tendon: a possible animal model of chronic Achilles tendinopathy. J Orthop Sci. 6 (4), 349-357 (2001).
  24. van Schie, H. T., et al. Monitoring of the repair process of surgically created lesions in equine superficial digital flexor tendons by use of computerized ultrasonography. Am J Vet Res. 70 (1), 37-48 (2009).
  25. Schramme, M., Kerekes, Z., Hunter, S., Labens, R. Mr imaging features of surgically induced core lesions in the equine superficial digital flexor tendon. Vet Radiol Ultrasound. 51 (3), 280-287 (2010).
  26. Hast, M. W., Zuskov, A., Soslowsky, L. J. The role of animal models in tendon research. Bone Joint Res. 3 (6), 193-202 (2014).
  27. Warden, S. J. Animal models for the study of tendinopathy. Br J Sports Med. 41 (4), 232-240 (2007).
  28. Murrell, G. A., et al. Achilles tendon injuries: a comparison of surgical repair versus no repair in a rat model. Foot Ankle. 14 (7), 400-406 (1993).
  29. Ozer, H., et al. Effect of glucosamine chondroitine sulphate on repaired tenotomized rat Achilles tendons. Eklem Hastalik Cerrahisi. 22 (2), 100-106 (2011).
  30. Chan, B. P., Fu, S. C., Qin, L., Rolf, C., Chan, K. M. Pyridinoline in relation to ultimate stress of the patellar tendon during healing: an animal study. J Orthop Res. 16 (5), 597-603 (1998).
  31. Ni, M., et al. Tendon-derived stem cells (TDSCs) promote tendon repair in a rat patellar tendon window defect model. J Orthop Res. 30 (4), 613-619 (2012).
  32. Orth, P., Zurakowski, D., Alini, M., Cucchiarini, M., Madry, H. Reduction of sample size requirements by bilateral versus unilateral research designs in animal models for cartilage tissue engineering. Tissue Eng Part C Methods. 19 (11), 885-891 (2013).
  33. Kajikawa, Y., et al. Platelet-rich plasma enhances the initial mobilization of circulation-derived cells for tendon healing. J Cell Physiol. 215 (3), 837-845 (2008).
  34. Xu, W., et al. Human iPSC-derived neural crest stem cells promote tendon repair in a rat patellar tendon window defect model. Tissue Eng Part A. 19 (21-22), 2439-2451 (2013).
  35. Taguchi, T., et al. Influence of hypoxia on the stemness of umbilical cord matrix-derived mesenchymal stem cells cultured on chitosan films. J Biomed Mat Res B: Appl Biomat. , (2017).
  36. Griffon, D. J., et al. Effects of Hypoxia and Chitosan on Equine Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stem Cells. Stem Cells Int. , 2987140 (2016).
  37. Roughan, J. V., Flecknell, P. A. Evaluation of a short duration behaviour-based post-operative pain scoring system in rats. Eur J Pain. 7 (5), 397-406 (2003).
  38. Sotocinal, S. G., et al. The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions. Mol Pain. 7, 55 (2011).
  39. Rosenbaum, A. J., et al. Histologic stages of healing correlate with restoration of tensile strength in a model of experimental tendon repair. HSS J. 6 (2), 164-170 (2010).
  40. Vidal, M. A., Walker, N. J., Napoli, E., Borjesson, D. L. Evaluation of senescence in mesenchymal stem cells isolated from equine bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord tissue. Stem cells and development. 21 (2), 273-283 (2011).
  41. Patterson-Kane, J., Becker, D., Rich, T. The pathogenesis of tendon microdamage in athletes: the horse as a natural model for basic cellular research. J Compar Pathol. 147 (2), 227-247 (2012).
  42. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  43. Bartosh, T. J., et al. Aggregation of human mesenchymal stromal cells (MSCs) into 3D spheroids enhances their antiinflammatory properties. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (31), 13724-13729 (2010).
  44. Zhang, K., Yan, S., Li, G., Cui, L., Yin, J. In-situ birth of MSCs multicellular spheroids in poly(L-glutamic acid)/chitosan scaffold for hyaline-like cartilage regeneration. Biomaterials. 71, 24-34 (2015).
  45. Montanez-Sauri, S. I., Beebe, D. J., Sung, K. E. Microscale screening systems for 3D cellular microenvironments: platforms, advances, and challenges. Cellular and molecular life sciences : CMLS. 72 (2), 237-249 (2015).
  46. Butler, D. L., et al. The use of mesenchymal stem cells in collagen-based scaffolds for tissue-engineered repair of tendons. Nat Protoc. 5 (5), 849-863 (2010).
  47. Brennan, M. P., Sinusas, A. J., Horvath, T. L., Collins, J. G., Harding, M. J. Correlation between body weight changes and postoperative pain in rats treated with meloxicam or buprenorphine. Lab Anim (NY). 38 (3), 87-93 (2009).
  48. Ramon-Cueto, A., Cordero, M. I., Santos-Benito, F. F., Avila, J. Functional recovery of paraplegic rats and motor axon regeneration in their spinal cords by olfactory ensheathing glia. Neuron. 25 (2), 425-435 (2000).
  49. Arculus, S. L. Use of meloxicam as an analgesic in canine orthopaedic surgery. Vet Rec. 155 (24), 784 (2004).
  50. Bervar, M. Video analysis of standing–an alternative footprint analysis to assess functional loss following injury to the rat sciatic nerve. J Neurosci Methods. 102 (2), 109-116 (2000).
  51. Perry, S. M., Getz, C. L., Soslowsky, L. J. Alterations in function after rotator cuff tears in an animal model. J Shoulder Elbow Surg. 18 (2), 296-304 (2009).
  52. Stoll, C., et al. Healing parameters in a rabbit partial tendon defect following tenocyte/biomaterial implantation. Biomaterials. 32 (21), 4806-4815 (2011).
  53. Hankemeier, S., et al. Bone marrow stromal cells in a liquid fibrin matrix improve the healing process of patellar tendon window defects. Tissue Eng Part A. 15 (5), 1019-1030 (2009).
  54. Silver, I. A., et al. A clinical and experimental study of tendon injury, healing and treatment in the horse. Equine Vet J Suppl. (1), 1-43 (1983).
  55. Enwemeka, C. S. Inflammation, cellularity, and fibrillogenesis in regenerating tendon: implications for tendon rehabilitation. Phys Ther. 69 (10), 816-825 (1989).
  56. Goldin, B., Block, W. D., Pearson, J. R. Wound healing of tendon–I. Physical, mechanical and metabolic changes. J Biomech. 13 (3), 241-256 (1980).
  57. Lyras, D. N., et al. The effect of platelet-rich plasma gel in the early phase of patellar tendon healing. Arch Orthop Trauma Surg. 129 (11), 1577-1582 (2009).
  58. Oshiro, W., Lou, J., Xing, X., Tu, Y., Manske, P. R. Flexor tendon healing in the rat: a histologic and gene expression study. J Hand Surg Am. 28 (5), 814-823 (2003).
  59. Visser, L. C., Arnoczky, S. P., Caballero, O., Gardner, K. L. Evaluation of the use of an autologous platelet-rich fibrin membrane to enhance tendon healing in dogs. Am J Vet Res. 72 (5), 699-705 (2011).
check_url/it/56810?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wagner, J. R., Taguchi, T., Cho, J. Y., Charavaryamath, C., Griffon, D. J. Evaluation of Stem Cell Therapies in a Bilateral Patellar Tendon Injury Model in Rats. J. Vis. Exp. (133), e56810, doi:10.3791/56810 (2018).

View Video