Summary

培養ひと胎児脳神経幹細胞の免疫細胞化学的解析のジカ ウイルス感染症

Published: February 05, 2018
doi:

Summary

この記事は、ひと胎児脳神経幹細胞文化だけでなく、様々 な神経細胞やアストロ サイト、ジカ ウイルス感染症を研究する神経幹細胞の使用に重点を置いてにそれらを区別する方法を展開に使用する方法を詳しく説明します。

Abstract

人間の胎児脳神経幹細胞は、人間発達神経生物学の様々 な刺激の影響を研究するユニークな非遺伝子組み換えモデル システムです。むしろ動物モデルまたは遺伝子組み換え多能性細胞を使用するよりも、ひと神経幹細胞は画面薬治療の効果を調べたり、個体差を調べるに効果的な培養システムを提供します。ここでは、様々 な神経細胞やアストロ サイト別プライミング手続きにそれらを区別するために、凍結、回収する、無血清のメディアと文化における人間の胎児脳神経幹細胞を展開に使用する方法について詳細なプロトコルを提供します。これらの細胞。さらに、我々 はジカ ウイルス感染症を勉強する人間の胎児脳神経幹細胞を使用する手順をについて説明します。

Introduction

ジカ (ZIKV) は、性的、または蚊ベクトルネッタイシマカヒトスジシマカ蚊によって媒介するフラビです。ZIKV は、伝送の容易さのための深刻な公衆衛生の脅威として最近確認され、神経学的症状1を提携します。最も感染妊婦2,3に生まれた胎児の小頭症の開発は、神経学的な影響に関する。小頭症は胎児開発の間に、平均4以下の 2 標準偏差以下のまわりで、出生時、頭は一般的なサイズより小さい神経発達障害です。小さい頭囲ではさまざまな発達の遅れ、発作、ビジョンと難聴、摂食困難など併存疾患一般的が伴われます。

最近の研究は、動物モデルを使用か、誘導多能性幹細胞神経発達5,6,7,8ZIKV 感染症の影響を研究します。これらの研究は、ZIKV、別の種の使用の私達の知識に貢献している、または遺伝子組み換え細胞が時間がかかるかに ZIKV の効果を混同するかもしれない追加の変数を追加5,細胞の神経の開発6,7,8します。 ただし、hNSC 文化、このプロトコルで記述されている非付着 neurosphere 文化特にの難点は、文化は文化9を実施する使用される方法に非常に敏感です。メディア コンポーネント、または培養器の物理的な処理も変更は9セルから反応を引き出すのに十分です。これらの問題に対処するため、胎児の神経幹細胞に及ぼす ZIKV を機械論的に尋問するの in vitroひと胎児脳由来神経幹細胞 (hNSCs) 文化を開発しました。私たちのメソッドを使用して、hNSCs なく表現型変化10以上 80 通路維持されました。さらに、トリソミーなどの染色体の変化がいずれまたは最小11。この hNSC 文化は、非付着 neurosphere 文化として育ちます。神経幹細胞の利点の 1 つは球が二次元文化9に比べて生体内でニッチのより多くの反射は文化のユニークなニッチな環境を作成します。このプロトコルの別の利点は、複数の細胞のタイプから派生できる hNSC 文化 hNSC 生存と分化に関する特定の変数の影響を観察する研究者を有効にします。このプロトコルは、中枢神経系発達や障害に関する機構の質問に答えるために見ている個人に適用されます。次のプロトコルは、ZIKV に感染し、その後分化過程で感染の影響を観察する hNSCs を区別する hNSC 文化を展開する方法について説明します。様々 な種類の脳奇形11に貢献する ZIKV による障害の調査を進めるニューロンに hNSCs を区別するために長期的な使用のための hNSCs を格納するメソッドも含まれています。このプロトコルはまた感染や神経幹細胞の生存と分化の毒素など任意の環境の刺激の影響を理解しようとする研究者を対象と考えています。

Protocol

ひと神経幹細胞が最初の学期12で捨てられた人間胎児皮質に由来。すべてのプロトコル プロシージャ人間組織サンプルの使用に関するテキサス大学医学部倫理ガイドラインに従うし、細胞株は機関のバイオ セーフティ委員会によって承認されました。 1. 在庫中の準備と幹細胞回復 手順 1.1.1.-1.1.5 で試薬を組み合わせることにより培株式 (DFHGPS) ?…

Representative Results

増殖期培養 hNSCs は、非付着性細胞 (図 1) として成長します。HNSC 通過直後多くの個々 のセルを集計して次の数日 (図 1 aと1 b) 形球を開始になります。健康的な球は、直径 1-2 mm 程度次の通路 (図 1) 9-10 日をする必要があります。2 mm よりも大きくなる球は暗い中心を開発して、培地で成長?…

Discussion

文化、hNSCs を操作することは、さまざまな高スループット薬剤のスクリーニングの1011,12,14、人間病気のモデリングから目的のために使用できる重要なツールを提供します 15,16,17。多くの質問がどのように人間の胎児…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、ジョン s. ダン財団とヒトへの感染と免疫のテキサス大学医学部 (P.W.) の研究所からの資金によって支えられました。

Materials

DMEM Gibco 11965-092
F12 Gibco 11765-054
Glucose (10%) Sigma G8644
HEPES (1M) Corning/cellgro 25-060-c1
Pen Strep (100x) Gibco 15140-122
Insulin Sigma I4011
L-Glutamine Gibco 25030-081
Transferrin Sigma T2036
Progesterone Sigma P8783
Putrescine Sigma P5780
Sodium selenite Sigma S5261
Heparin Sigma Sigma H3149
basic fibroblast growth factor R&D system 233-FB
epidermal growth factor R&D system 236-EG
leukemia inhibitory factor R&D system 7734-LF
Laminin Invitrogen 23017-015
2.5% trypsin Gibco 15090-046
Trypsin inhibitor Sigma T6522
Poly-D-Lysine hydrobromide(PDL) Sigma P6407-5MG
B-27 supplement Gibco/Invitrogen 17504-044
Fetal bovine serum Gibco 16000-044
Dimethyl sulfoxide Sigma D2650-100ml
Dulbecco's phosphate-buffered saline Corning/cellgro 21-031-CV
Bovine serum albumin Sigma A4378-25G
Normal goat serum Jackson ImmunoResearch Lab 005-000-121
Triton X-100 FisherBiotech BP151-500
Nestin antibody BD Transduction Laboratories 611659 1:200 dilution
Class III beta-tubulin antibody (TuJ1) Covnce MMS-435p 1:2000 dulution
GFAP antibody Millipore AB5804 1:1000 dilution
DAPI Molecular Probes D1306 1:2000 dilution
ZIKV antibody World Reference Collection for Emerging Viruses and Arboviruses at the University of Texas Medical Branch 1:2000 dilution
Fluoromount G SouthernBiotech 0100-01
CO2 incubator Thermo Forma Model# 3110
Centrifuge Thermo fisher Scientific 75004221
Biological safety cabinet Forma scientific Claas II A/B3 Model# 1284
Freezer (-80 °C) Forma scientific,Inc model# 8516
Microscope(phase contrast image) Hp 2230 workstation Product#NOE25us#ABA
Microscope (epifluorescent image) Nikon Eclipse 80i
Confocal Microscope Nikon TE2000-E microscope with C1si confocal system

Riferimenti

  1. Centers for Disease Control and Prevention. . All countries and territories with active Zika virus transmisson. , (2016).
  2. Brasil, P., et al. Zika Virus Infection in Pregnant Women in Rio de Janeiro. N Engl J Med. 375 (24), 2321-2334 (2016).
  3. Hills, S. L., et al. Transmission of Zika Virus Through Sexual Contact with Travelers to Areas of Ongoing Transmission – Continental United States, 2016. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 65 (8), 215-216 (2016).
  4. Centers for Disease Control and Prevention. . Facts about microcephaly. , (2016).
  5. Garcez, P. P., et al. Zika virus impairs growth in human neurospheres and brain organoids. Science. 352 (6287), 816-818 (2016).
  6. Li, C., et al. Zika Virus Disrupts Neural Progenitor Development and Leads to Microcephaly in Mice. Cell Stem Cell. 19 (5), 672 (2016).
  7. Tang, H., et al. Zika Virus Infects Human Cortical Neural Progenitors and Attenuates Their Growth. Cell Stem Cell. 18 (5), 587-590 (2016).
  8. Wu, K. Y., et al. Vertical transmission of Zika virus targeting the radial glial cells affects cortex development of offspring mice. Cell Res. 26 (6), 645-654 (2016).
  9. Jensen, J. B., Parmar, M. Strengths and limitations of the neurosphere culture system. Mol Neurobiol. 34 (3), 153-161 (2006).
  10. Wu, P., et al. Region-specific generation of cholinergic neurons from fetal human neural stem cells grafted in adult rat. Nat Neurosci. 5 (12), 1271-1278 (2002).
  11. McGrath, E. L., et al. Differential Responses of Human Fetal Brain Neural Stem Cells to Zika Virus Infection. Stem Cell Reports. 8 (3), 715-727 (2017).
  12. Svendsen, C. N., et al. A new method for the rapid and long term growth of human neural precursor cells. J Neurosci Methods. 85 (2), 141-152 (1998).
  13. Tarasenko, Y. I., Yu, Y., Jordan, P. M., Bottenstein, J., Wu, P. Effect of growth factors on proliferation and phenotypic differentiation of human fetal neural stem cells. J Neurosci Res. 78 (5), 625-636 (2004).
  14. Barrows, N. J., et al. A Screen of FDA-Approved Drugs for Inhibitors of Zika Virus Infection. Cell Host Microbe. 20 (2), 259-270 (2016).
  15. Jakel, R. J., Schneider, B. L., Svendsen, C. N. Using human neural stem cells to model neurological disease. Nat Rev Genet. 5 (2), 136-144 (2004).
  16. Lopez-Garcia, I., et al. Development of a stretch-induced neurotrauma model for medium-throughput screening in vitro: identification of rifampicin as a neuroprotectant. Br J Pharmacol. , (2016).
  17. Mich, J. K., et al. Prospective identification of functionally distinct stem cells and neurosphere-initiating cells in adult mouse forebrain. Elife. 3, e02669 (2014).
check_url/it/56917?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
McGrath, E. L., Gao, J., Wu, P. Zika Virus Infection of Cultured Human Fetal Brain Neural Stem Cells for Immunocytochemical Analysis. J. Vis. Exp. (132), e56917, doi:10.3791/56917 (2018).

View Video