Summary

Détection d’une variante de transcription Rare CDH1 dans les tissus frais congelés de Cancer gastrique par puce numérique PCR

Published: February 05, 2018
doi:

Summary

Le manuscrit décrit une puce numérique PCR pour détecter une variante rare du transcript CDH1 (CDH1a) en mode normal frais-congelé et tissus tumoraux obtenus de patients atteints de cancer gastrique.

Abstract

CDH1a, un relevé de notes non canoniques du gène CDH1 , s’est avéré être exprimée dans certaines lignées cellulaires de cancer de l’estomac (GC), considérant qu’il est absent dans la muqueuse gastrique normale. Récemment, nous avons détecté CDH1a variante de transcription dans les tissus frais congelés tumeur provenant de patients atteints de GC. L’expression de cette variante dans les échantillons de tissus a été étudiée par l’approche de la PCR (dPCR) en numérique de puce, présentée ici. dPCR offre le potentiel pour une mesure précise, robuste et hautement sensible d’acides nucléiques et est de plus en plus utilisé pour de nombreuses applications dans différents domaines. dPCR est capable de détecter des cibles rares ; en outre, dPCR offre la possibilité pour la quantification précise et absolue d’acides nucléiques sans nécessiter de calibrateurs et courbes d’étalonnage. En fait, la réaction de partitionnement enrichit la cible de l’arrière-plan, ce qui améliore l’efficacité de l’amplification et la tolérance aux inhibiteurs. Ces caractéristiques rendent dPCR un outil optimal pour la détection de la transcription de rares CDH1a .

Introduction

Le gène CDH1 code E-cadhérine, un facteur clé dans le maintien de l’épithélium gastrique normal grâce à la régulation de l’adhérence, la survie, la prolifération et la migration des cellules1. Perte de protéine E-cadhérine par suite de la lignée germinale délétère ou des altérations somatiques de CDH1 a été associées au développement de GC2,3. Non-canonical transcriptions résultant de l’intron 2 du gène ont également émis l’hypothèse pour jouer un rôle dans la cancérogenèse gastrique4,5. En particulier, une telle transcription, CDH1a, s’est avérée être exprimée dans les lignées cellulaires GC mais est absente de l’ estomac normal4. Nous avons décelé récemment CDH1a dans des échantillons de tissus de GC de patients GC à l’aide de la puce dPCR5. dPCR a permis d’évaluer, pour la première fois, la présence de la transcription de gène de CDH1a en GC intestinal et dans les tissus normaux.

La méthode de l’étalon-or pour déterminer l’expression des gènes est PCR quantitative en temps réel (qPCR). Toutefois, les données qui en résulte peuvent parfois être variable et de mauvaise qualité, surtout quand le niveau de la cible dans l’échantillon est faible. Cette variabilité peut être causée par des contaminants, qui inhibent l’activité polymérase et apprêt recuit, conduisant à l’amplification non spécifique et compétitif côté réactions6.

Bien que les principes biochimiques de dPCR sont semblables à ceux de qPCR, dPCR montre certains avantages, permettant des mesures très précises de l’ADN génomique (ADNg) / complémentaires des molécules d’ADN (ARNC). En effet, dPCR est une réaction de point d’arrêt qui s’appuie sur le partitionnement calibrée d’un échantillon à des milliers de puits, afin que chacun contient bien zéro ou une molécule cible unique. Amplification puis se produit seulement dans les puits contenant une copie de la cible et est indiquée par un signal fluorescent. Le nombre absolu des molécules cibles dans l’échantillon initial peut ensuite être calculé en déterminant le rapport positif au totales partitions à l’aide de binomial Poisson statistiques7.

En outre, la technique dPCR élimine la nécessité d’une courbe d’étalonnage en cours d’exécution et, par conséquent, le biais associés et la variabilité, ce qui permet une quantification directe de cibles8,9; elle produit des résultats plus précis et reproductibles indépendamment de contaminants et d’efficacité en raison de sa grande tolérance aux inhibiteurs10; Il est plus sensible et plus spécifique que la qPCR et est donc une méthode fiable pour la détection d’une cible rare. Enfin, la répartition de l’échantillon dans plusieurs réactions réduit la compétition avec les molécules de fond et améliore la limite de détection de la cible, permettant l’amplification et de faciliter la détection des molécules simples de l’ADNg/ADNc6 . La détection et la quantification d’acides nucléiques par puce dPCR a été appliquée de plus en plus pour copier le numéro variation, fragments de quantification de l’ADN et analyse de mutation11,12,13, compte tenu de la précision et les matières radioactives faiblement exigence de la méthode d’entrée. En outre, dPCR a récemment été intégré dans l’analyse de ces deux microARN14 et gène transcriptions5,15.

Protocol

Le protocole suit les directives de l’IRST Human Research Ethics Committee. Remarque : Cette procédure est spécialement conçue pour la détection d’un faible nombre de molécules de cDNA dans les tissus humains frais congelé. Les sections de tissu ont été coupées sur la glace sèche, alors qu’il est encore gelé, précédemment validé patient dérivé de tumeur gastrique ou des échantillons de tissus normaux. 1. isolement et purification <…

Representative Results

À l’aide de la procédure présentée ici, nous avons vérifié pour l’expression de la variante rare de transcription CDH1a dans les tissus frais congelés gastriques. L’analyse par dPCR a été réalisée sur des échantillons de tissu normal et le cancer 21 paires et dans 11 échantillons de tumeur supplémentaires. CDH1a a été détecté dans 15 des 32 (47 %) des tumeurs, alors qu’aucun échantillon de tissus normaux ont montré la présence de cette transc…

Discussion

dPCR a été initialement développé pour ADN moléculaire mesures10,11,12,13 et dans le temps, que cette technologie a été adaptée pour la quantification des microARN et RNA transcription5, 14,15. Dans ce protocole, nous avons étendu la liste des applications à inclure la détection des transcr…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier Gráinne Tierney pour aide à la rédaction.

Materials

TRIazol Reagent Thermo Fisher Scientific 15596018
Glycogen 20 mg/ml ROCHE 10901393001
RNeasy MinElute Cleanup kit QIAGEN 74204
iScript cDNA Synthesis kit BioRad 1708891
QuantStudio 3D Digital PCR Master Mix v2 Thermo Fisher Scientific A26358
CDH1a IDT custom designed assay Integrated DNA Technologies (IDT) NA F) GCTGCAGTTTCACTTTTAGTG
(R) ACTTTGAATCGGGTGTCGAG
(P)/FAM/CGGTCGACAAAGGACAGCCTATT/TAMRA/
[dPCR optimized assay concentrations: 900 nM (F),        900 nM (R), 250 nM (P)]
QuantStudio 3D Digital PCR 20K Chip Kit v2 Thermo Fisher Scientific A26316
Heraeus Biofuge Fresco Thermo  Scientific 75002402
Thermocycler (Labcycler) Sensoquest 011-103
GeneAmp PCR System 9700 Thermo Fisher Scientific N805-0200
Dual Flat Block Sample Module Thermo Fisher Scientific 4425757
QuantStudio 3D Tilt Base for Dual Flat Block GeneAmp PCR System 9700 Thermo Fisher Scientific 4486414
QuantStudio 3D Digital PCR Chip Adapter Kit for Flat Block Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific 4485513
QuantStudio 3D Digital PCR Chip Loader Thermo Fisher Scientific 4482592
QuantStudio 3D Digital PCR Instrument with power cord Thermo Fisher Scientific 4489084

Riferimenti

  1. van Roy, F., Berx, G. The cell-cell adhesion molecule E-cadherin. Cell Mol Life Sci. 65 (23), 3756-3788 (2008).
  2. Carneiro, P., et al. E-cadherin dysfunction in gastric cancer: cellular consequences, clinical applications and open questions. FEBS Lett. 586 (18), 2981-2989 (2012).
  3. Corso, G., et al. Somatic mutations and deletions of the E-cadherin gene predict poor survival of patients with gastric cancer. J Clin Oncol. 31 (7), 868-875 (2013).
  4. Pinheiro, H., et al. Transcription initiation arising from E-cadherin/CDH1 intron2: a novel protein isoform that increases gastric cancer cell invasion and angiogenesis. Hum Mol Genet. 21 (19), 4253-4269 (2012).
  5. Abou Khouzam, R., et al. Digital PCR identifies changes in CDH1 (E-cadherin) transcription pattern in intestinal-type gastric cancer. Oncotarget. 8 (12), 18811-18820 (2017).
  6. Taylor, S. C., Laperriere, G., Germain, H. Droplet Digital PCR versus qPCR for gene expression analysis with low abundant targets: from variable nonsense to publication quality data. Sci Rep. 7 (1), (2017).
  7. Basu, A. S. Digital Assays Part I: Partitioning statistics and digital PCR. SLAS Technol. 22 (4), 369-386 (2017).
  8. Huggett, J. F., Whale, A. Digital PCR as a novel technology and its potential implications for molecular diagnostics. Clin Chem. 59 (12), 1691-1693 (2013).
  9. Alikian, M., et al. RT-qPCR and RT-Digital PCR: A comparison of different platforms for the evaluation of residual disease in chronic myeloid leukemia. Clin Chem. 63 (2), 525-531 (2017).
  10. Hoshino, T., Inagaki, F. Molecular quantification of environmental DNA using microfluidics and digital PCR. Syst Appl Microbiol. 35 (6), 390-395 (2012).
  11. Salvi, S., et al. Circulating AR copy number and outcome to enzalutamide in docetaxel-treated metastatic castration-resistant prostate cancer. Oncotarget. 7 (25), 37839-37845 (2016).
  12. Tessitore, M. V., et al. Detection of newly produced T and B lymphocytes by digital PCR in blood stored dry on nylon flocked swabs. J.Transl.Med. 15 (1), (2017).
  13. Sho, S., et al. Digital PCR Improves mutation analysis in pancreas fine needle aspiration biopsy specimens. PLoS One. 12 (1), e0170897 (2017).
  14. Conte, D., et al. Novel method to detect microRNAs using chip-based QuantStudio 3D digital PCR. BMC Genomics. 16, 849 (2015).
  15. Sanders, R., Mason, D. J., Foy, C. A., Huggett, J. F. Evaluation of digital PCR for absolute RNA quantification. PLoS One. 8 (9), e75296 (2013).

Play Video

Citazione di questo articolo
Molinari, C., Abou Khouzam, R., Salvi, S., Rossi, T., Ranzani, G. N., Calistri, D. Detection of a CDH1 Rare Transcript Variant in Fresh-frozen Gastric Cancer Tissues by Chip-based Digital PCR. J. Vis. Exp. (132), e57066, doi:10.3791/57066 (2018).

View Video