正电子发射层析成像 (PET) 转运体蛋白 18 kDa (TSPO) 提供了一种非侵入性的手段来可视化 neuroinflammation 在脑疾病的发展和进展中的动态作用。本协议描述 TSPO-PET 和前体显影在小鼠缺血性中风模型中检测 neuroinflammation。
Neuroinflammation 是缺血性中风后病理级联的中心。非侵入性分子成像方法有可能对脑卒中某些 neuroimmune 相互作用的时间动力学和角色提供重要的洞察力。具体地说, 正电子发射断层扫描 (PET) 成像的转运体蛋白 18 kDa (TSPO), 一个标记的活化小胶质细胞和外周髓系体细胞, 提供了检测和跟踪 neuroinflammation在体内的手段。在这里, 我们提出了一个方法, 以准确量化 neuroinflammation 使用 [11C] N, n-二乙基-2-[2-(4-甲氧基苯基)-57-dimethylpyrazolo [15-a] 嘧啶-3-基] 乙酰胺 ([11C] DPA-713), 一个有希望的第二代 TSPO-PET放射性, 在大脑中动脉闭塞 (dMCAO) 与假手术小鼠相比。MRI 进行2天后 dMCAO 手术, 以确认中风和定义梗死的位置和体积。PET/计算机断层扫描 (CT) 成像术后6天 dMCAO, 以捕捉峰值增加的 TSPO 水平后中风。对 PET 图像进行定量测定, 以评估 dMCAO 和假鼠大脑和脾脏中 [11C] DPA-713 的摄取量, 以评估中枢和周围炎症水平。体内[11C]DPA-713 脑吸收是通过体内显影证实的。
中风是第五大死因, 也是美国1残疾的主要原因。缺血性中风是绝大多数这些病例 (87%), 发生在血液流向大脑的局部中断 (例如,由血块或脂肪堆积)。随后减少了对受影响地区的氧气和养分供应, 并启动了复杂的病理级联, 导致脑卒中核心 (梗塞) 内的神经元死亡, 除了周围地区。Neuroinflammation 是导致这种损害的途径中的一个关键组成部分, 包括居民脑免疫细胞和浸润性外周免疫细胞 (中性粒细胞、T 细胞、B 细胞和单核巨噬细胞), 认为这有助于破坏性级联2,3。活化小胶质细胞和巨噬菌是这 neuroinflammatory 反应的中心, 报告的有害和有益的影响后, 缺血性中风2。因此, 必须评估这些细胞在中风后的体内贡献。
PET 是一种强大的3维分子成像技术, 通过使用标记为正电子 (β +) 放射放射性核素的特定分子 (如11C、 13N), 可以在体内可视化生物过程, 15O 和18F。这种非侵入性方法比体外方法 (如免疫组化) 有许多优点, 因为它允许实时获取分子信息, 在活着的完整的主题, 并允许纵向调查。PET 成像的 TSPO, 一个标记的活化小胶质细胞和外周髓系体细胞, 提供了一种手段, 以量化和跟踪体内的先天免疫细胞反应, 并可用于评估中风后炎症和反应治疗干预。TSPO, 以前称为外周型苯二氮受体, 是一个 18 kDa 蛋白, 被认为是在胆固醇运输和合成神经甾体4的作用。此外, 证据表明, TSPO 参与了 neuroinflammation 和神经元存活5,6, 报告说, 在许多神经系统疾病包括中风7的表达增加,痴呆症8, 帕金森病9和多发性硬化症10。TSPO 位于外线粒体膜上, 在周围有高度表达, 特别是在类固醇相关组织 (如腺体) 中, 以及在心脏、肾脏和肺部10中可见的中层水平。然而在健康的大脑中, TSPO 水平低, 主要受限于胶质细胞6,11。在脑卒中观察到的神经元损伤后, 中枢神经系统 (CNS) TSPO 水平显著增加。这种观察到的上调 TSPO 可以被利用在体内图像 neuroinflammation, 表达水平提供了准确的炎症严重性指标。因此, 该方法的目的是准确量化 neuroinflammation 在小鼠脑缺血性中风模型中的作用, TSPO PET。
针对 neuroinflammation 的 PET 成像, 研制了多种 TSPO 示踪剂。在这里, TSPO-PET 成像被描述使用 [11C] DPA-71312, 一个有希望的第二代 TSPO 示踪器, 它显示了增强信号的噪声和较低的非特定绑定比历史上使用 [11C] PK11195 13.以此方法为例, 选择了 dMCAO 小鼠中风模型14。该模型包括颞侧开颅术和远端大脑中动脉的永久性结扎, 导致体感皮层局灶性缺血。这有利于临床前中风的研究, 由于缺血性损伤的高重现性和低死亡率相关的模型。到目前为止, TSPO PET 成像研究尚未在 dMCAO 啮齿动物模型中报道。然而, 以往的 PET 成像研究使用大脑中动脉闭塞 (MCAO) 模型, 一个更严重和可变中风模型, 在小鼠和大鼠, 报告 TSPO 表达增加从3天和峰值7天后中风15, 16,17,18。因此, 我们进行了6天后 dMCAO 的 PET 成像与高 TSPO 表达一致。[11C]在同侧 (梗塞) 和对侧半球评估脑 DPA-713 吸收。TSPO-PET 结合结构 MRI, 可精确划定梗死和对侧区域的兴趣 (ROIs)。在这里, 我们描述了基于 atlas 和 MRI 驱动的 ROI 方法来计算 [11C] DPA-713 的吸收。放射性在脾脏中的摄取量也被评估以调查组间炎症的周围水平。这种方法有可能为脑卒中和其他神经系统疾病的时空动力学和特定 neuroimmune 交互作用提供重要的洞察力。
该协议描述了使用 [11C] DPA-713-PET 对 dMCAO 和假鼠 neuroinflammation 进行量化的方法。TSPO PET 是目前最广泛研究的影像生物标志物, 用于可视化和测量 neuroinflammation。TSPO 表达是上调在脑胶质细胞炎症允许无创检测和量化的 neuroinflammation。此外, 它是一种高度翻译的技术, 使它成为一个宝贵的工具, 在临床和临床前的研究。该协议和代表性的结果突出了使用 [11C] DPA-713 PET 检测和监测中风和其他神经系统疾病在体内的 neuroinflammatory 改变的适用性。
本研究采用3月大的 C57BL/6 雌性小鼠进行 dMCAO 手术。这一模型的选择, 因为它导致一个高度可重现性梗塞局限于体感皮层, 提供了一个永久性局灶缺血的模型与其他中风模型 (如大脑中动脉, 低变异性)闭塞 (MCAO) 灯丝法)14。脑卒中模型的 PET 成像具有在大脑中包含一个内部参考区域的优势, 每个动物使用 ROIs 在对侧半球。由于手术后会产生一些炎症, 因此在研究设计中包括接受假手术的小鼠是很重要的, 即在没有动脉闭塞的情况下, 对脑膜进行开颅和手法治疗。单开颅手术可能会导致潜在的神经组织中断, 并引入病原体, 导致免疫应答独立于中风20。因此, 假手术后的一些炎症是预期的, 应该与 dMCAO 平行评估, 以排除仅因手术而导致信号的可能性。为了避免在 dMCAO 队列分析中包括没有中风的手术引起的炎症, mr 成像必须进行, 以确认成功的中风手术和梗塞的发展。MRI 也提供了一个结构参考框架, 这是必不可少的准确绘制梗死和对侧 ROIs。此外, 还需要准确的图像处理, 包括图像配准和 ROI 定义, 以确保可靠的量化。
当与 C-11 标记 radiotracers 进行 PET 和显影研究时, 必须牢记额外的限制。必须考虑短半衰期 (20.33 分钟) 的 C-11, 其使用一般限于研究机构, 现场回旋接入。必须事先确定适当的放射性运输路线、剂量管理和采集时间点, 并预先准备好实验工作流程的详细计划, 使团队能够快速有效地工作。这项研究的设计和建立已经概述, 以适应4小鼠的成像同时增加数据输出时, 使用 C-11 示踪剂。如果可能的话, 最好在 C-11 示踪器到达成像设备时, 让所有的老鼠空心化, 并在 CT 扫描中进行, 以确保注射前的放射性衰减最小。这一步步协议最好是由至少3位研究人员进行, 以便在重大放射性衰变之前快速插管、剂量测量、示踪剂注射、PET 扫描和脑切片。这需要两个人进行 PET 扫描和注射所有4只老鼠同时进行。在注射前开始 PET 采集的原因是为了保证血液和感兴趣区域的示踪剂分布的药代动力学和动力学得到准确和完全的捕获。许多步骤可能需要进行有力的训练和练习, 以确保实验的顺利运行。特别是, 这个协议依赖于成功的尾静脉插管的 C57BL/6 小鼠, 这可能是困难的, 因为深色的头发呈现在他们的尾巴上, 可能会变得更具挑战性的中风后发生或如果在多个时间点成像相同的老鼠.
PET 成像的另一个考虑因素包括仔细记录放射性剂量和残余活动测量, 包括确切的测量时间。这对于在扫描时注入剂量的精确衰减校正是必不可少的, 并且用于获得对每个 ROI 的示踪剂摄取量 (即% ID/g) 的精确测量。在扫描时, 要知道每只老鼠的放射性确切量, 以确保准确的图像分析。因此, 最好同步扫描仪计算机上的时钟和剂量校验仪, 以避免在使用 C-11 等短命同位素时出现错误。
精确的 PET 图像量化也可以被扫描仪的精度和设置所限制。因此, 为了确保准确量化的 PET/ct 图像, 重要的是进行质量控制检查的 CT 和 pet 部件的扫描仪。CT 质量控制检查包括 x 射线源调节, 暗/光, 和中心关闭设置校准。这些校准措施和正确的系统噪音, 必须在收购之前按照扫描仪制造商的建议执行。对 PET 扫描仪也应进行校准。这通常包括扫描 “标准/宠物幻影” 扫描, 其中包含已知的放射性浓度。在制定标准时, 最好使用与研究中使用的放射性同位素相同的放射性核素, 这一剂量与老鼠体内的一只小鼠相比, 与动物成像的采集参数相同。在本议定书中, 用放射性稀释的20毫升注射器作为标准, 随后的 PET 成像结果用于根据校准探测器测量的实际剂量计算校正系数。该校正比可应用于实验获得的成像数据, 以确保对 PET 图像感兴趣区域的示踪剂摄取进行准确量化。除了考虑扫描当天出现的任何背景活动外, 这也说明了放射性核素的正电子范围。由于剂量校验仪是这一校正因子生成的一个组成部分, 因此必须根据制造商指南定期校准该设备。
在进行体外显影时, 选择注射后安乐死的最佳时间点是很重要的, 以确保感兴趣区域的高信号到背景。三十分钟后注射是选择 [11C] DPA-713 显影使用在动态 PET 成像中获得的数据-即, 在体内动态口香糖作为指导, 同时也考虑到 C-11 的短半衰期和时间参与切片并在提取后暴露脑组织。考虑到这一点, [11C] DPA-713 显影必须在单独的一组小鼠上进行, 以允许注射更高的 [11C] DPA-713 剂量和30分钟的时间点用于麻醉下灌注和安乐死。在进行体外显影前对3-4 只小鼠进行小体内 PET 试验研究将有助于确定显影的最佳时间点。另外一个考虑的是体内显影是在注射后恢复小鼠, 还是将其麻醉直到安乐死。让他们麻醉模仿扫描的条件, 并确保放射性分布或排泄动力学不改变的恢复。此外, 这可以防止对小鼠的额外压力, 避免恢复和随后的诱导。最后, 一个有用的补充, 在前体协议将是评估的区域损害的脑切片用于显影通过免疫组化染色 (放射性衰变后), 以产生高分辨率图像的梗塞地点和体积。
由于使用基于 C-11 的跟踪器有限制, 因此可以很容易地修改此协议, 以便使用 F-18 (半衰期为109.77 分钟) 的 TSPO 跟踪程序, 这可能更适用于没有现场回旋加速器的位置。此外, 此协议还描述了使用4鼠标映像设置的情况。虽然这种高通量方法在使用 C-11 示踪器时是最佳的, 但对于使用单鼠标成像床的那些协议也可能进行修改。对本议定书所概述的技术进行周密的规划和一致的培训将导致使用 [11C] DPA-713 生成大量数据, 这可以很容易地用于探讨 neuroinflammation 在疾病表现中的作用和神经系统疾病的其他啮齿动物模型的进展。此外, 这项技术可以用来评估在体内对小胶质细胞的免疫调节疗法的反应。
The authors have nothing to disclose.
作者感谢 Buckwalter 实验室 (特别是托德. 彼得森博士) 提供老鼠模型和执行 dMCAO 和假手术。此外, 我们还要感谢 Invicro 的托马斯 Liguori 为他的技术援助与 VivoQuant 图像分析软件, Tim 道尔博士, 劳拉 Pisani, Frezghi 博士 Habte 从 SCi3 小动物成像设施在斯坦福的意见和协助开发这一成像协议, 和放射化学设施 (特别是钧博士公园) 为他们的帮助与综合 [11C] DPA-713。
Inveon PET/CT scanner | Siemens | Version 4.2 | |
MRI scanner | Varian | 7 Telsa | |
ParaVision software | Bruker | Version 6.0.1 | MRI operating software |
VivoQuant software | InVicro | Version 2.5 | Image analysis software |
Inveon Research Workspace software | Siemens | Version 4.2 | Scanner operating software. Includes microQView, the post-processing managing software |
Dose calibrator | Capintech | CRC-15 PET | |
Typhoon phosphor imager 9410 | GE Healthcare | 8149-30-9410 | |
Butterfly catheters | SAI Infusion Technologies | BFL-24 | 27.5 G needle |
1 mL syringes | BD | ||
Insulin syringes | BD | 329461 | 0.5 mL insulin syringes with needle |
20 mL syringe | VWR | BD302831 | BD Syringe Slip Tip Graduated |
Tissue glue | Santa Cruz Animal Health | sc-361931 | 3 mL |
Heat lamp | Fluker | 27002 | 5.5" reptile heat lamp with clamp and switch |
0.9% sterile saline | Pfizer | 00409-4888-10 | 0.9% sodium chloride for injection, 10 mL |
Eye lubricant | Watson Rugby | PV926977 | Artificial Tears Lubricant Eye Ointment, 1/8 oz |
Chux absorbent sheets | ThermoFisher Scientific | 1420662 | Disposable absorbent padding |
Iris scissors | World Precision Instruments | 503708-12 | 11.5cm, Straight, 12-pack |
Surgical tape | 3M Durapore | 1538-0 | 1/2"X10 yard roll, silk, hypoallergenic |
Mouse PET bed | In house | 4 mouse PET bed | |
Lighter | Bic | UDP2WMDC | |
Isoflurane | Henry Schein | NDC 11695-6776-2 | Isothesia, inhalation anesthetic, 250 mL |
Oxygen | Praxiar | UN1072 | Compressed gas |
Autoradiography cassette | Cole Palmer | EW-21700-34 | Aluminum, 8" x 10" |
Autoradiography film | GE Life Sciences | 28-9564-78 | Storage Phosphor Screen BAS-IP SR 2025 E Super Resolution, 20 × 25 cm, screen only |
Microtome blades | ThermoFisher Scientific | 30-508-35 | MB35 Premier Disposable, 34° cutting angle |
Microtome | Microm | HM 550 | |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | Superfrost™ Plus Microscope Slides |
OCT liquid | VWR | 25608-930 | Formulation of water-soluble glycols and resins for cryostat sectioning at temperatures of -10°C (14°F) and below |
Freezing molds | Poly sciences | 18646A-1 | Disposable paraffin molds |
Saran wrap | Saran | 25700001300 | |
Disinfectant | Virkon S |