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Articolo metodologico

Seguendo i movimenti del tessuto Endocardial tramite cella fotoconversione nell'embrione di pesce zebra

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DOI:

10.3791/57290

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20 febbraio 2018

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive un metodo per fotoconversione di Kaede proteina fluorescente in cellule endocardial del vivente degli embrioni di zebrafish che consente il tracciamento delle cellule endocardial durante lo sviluppo di valvola atrioventricolare del cuore e del canale atrioventricolare .

Abstract

Durante l'embriogenesi, le cellule subiscono cambiamenti dinamici nel comportamento delle cellule e decifrare la logica cellulare dietro a questi cambiamenti è un obiettivo fondamentale nel campo della biologia dello sviluppo. La scoperta e lo sviluppo di proteine di fotoconvertibile hanno aiutato la nostra comprensione di questi cambiamenti dinamici fornendo un metodo per evidenziare otticamente cellule e tessuti. Tuttavia, mentre fotoconversione, time-lapse microscopia e analisi delle immagini successive hanno dimostrato di essere molto successo nel scoprire dinamica cellulare in organi come il cervello o l'occhio, questo approccio è generalmente non utilizzato nel cuore in via di sviluppo a causa sfide posate dal movimento rapido del cuore durante il ciclo cardiaco. Questo protocollo è costituito da due parti. La prima parte descrive un metodo per photoconverting e successivamente tracking endocardial cellule (EdCs) durante lo sviluppo di valvola atrioventricolare del cuore e zebrafish canale atrioventricolare (AVC). Il metodo prevede di fermare temporaneamente il cuore con un farmaco in ordine per fotoconversione accurata a prendere posto. I cuori sono permesso di riprendere pestaggio dopo l'estrazione della droga e lo sviluppo embrionale prosegue normalmente fino a quando il cuore è fermato di nuovo per l'imaging ad alta risoluzione di photoconverted CDE in un momento dello sviluppo più tardi. La seconda parte del protocollo descrive un metodo di analisi di immagine per quantificare la lunghezza di una regione photoconverted o non photoconverted in AVC in giovani embrioni mappando il segnale fluorescente dalla struttura tridimensionale su una mappa bidimensionale . Insieme, le due parti del protocollo permette di esaminare l'origine e il comportamento delle cellule che compongono il zebrafish AVC e valvola cardiaca atrioventricolare e potenzialmente può essere applicato per lo studio di mutanti, morphants o embrioni che sono stati trattati con reagenti che interrompono lo sviluppo AVC e/o la valvola.

Introduzione

Zebrafish è attualmente uno dei più importanti modelli vertebrati per studiare i processi cellulari e dello sviluppo in vivo. Ciò è in gran parte dovuto trasparenza ottica di zebrafish e disponibilità allo studio della genetica, che lo rende un potente modello per l'applicazione di tecniche ottiche che coinvolgono geneticamente codificato fotoresponsivi proteina tecnologie1. Specifico per lo studio dello sviluppo del cuore, zebrafish ricevere sufficiente ossigeno tramite diffusione tale che persino mutanti senza battito cardiaco possono sopravvivere attraverso la prima settimana di sviluppo, permettendo analisi sugli effetti dei geni d....

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Protocollo

1. preparazione di stampi e montaggio dell'agarosi

  1. Creare uno stampo con le dimensioni riportate in Figura 1 utilizzando una stampante 3D o strumenti di officina meccanica tradizionale.
  2. Pipettare circa 1,5 mL di agarosio all'1% fuso in un piatto di montaggio in plastica 35 mm. Posizionare lo stampo plastica in agarosio liquido, avendo cura di evitare di inglobare aria tra lo stampo e l'agarosio. Posizionare il piatto a 4 ° C, aspetta che indurisce l'agarosio (l'operazione dura circa 5 minuti), quindi rimuovere la muffa di plastica.
  3. Per memorizzare il piatto di montaggio per un uso successivo, coprire il piatt....

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Risultati

Un esempio di un embrione photoconverted 48 hpf e ripreso nuovamente a 80 hpf è illustrato nella Figura 2, film 1 e 2. Esponendo Kaede a 405 nm luce irreversibilmente converte dalla proteina dalla sua forma verde fluorescente fluorescente rosso forma, consentendo il comportamento delle cellule identificate con il verde o loro forma rosso da seguire con rispettano alla loro differenzialmente colorata vicini di casa durante la .......

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Discussione

Temporizzazione di fotoconversione: Kaede anche se rimane brillantemente espressa in EdCs anche a 96 hpf, va notato che l'embrione cresce, luce laser diffonde più prima che raggiunga l'AVC, rendendo più difficile la fotoconversione ristretti di Kaede. At embrionale fasi oltre 55 hpf, la mongolfiera del ventricolo e l'atrio significa anche che il raggio laser viola utilizzato per fotoconversione non può raggiungere le cellule AVC senza passare per l'atrio o ventricolo. Ciò significa che oltre 55 hpf, al fine di f.......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Vorremmo ringraziare Anne-Laure Duchemin, Denise Duchemin, Nathalie Faggianelli e Basile Gurchenkov per aiutare a progettare e realizzare lo stampo descritto nel presente protocollo. Questo lavoro è stato supportato da FRM (DEQ20140329553), l'ANR (ANR-15-CE13-0015-01, ANR-12-ISV2-0001-01), il programma di EMBO Young Investigator, la Comunità europea, ERC CoG N ° 682938 Evalve e dalla concessione ANR-10-LABX-0030-INRT, un fondo di stato francese gestito da Agence Nationale de la Recherche sotto il telaio programma Investissements d'Avenir etichettato ANR-10-IDEX-0002-02.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Materiali
Attrezzatura necessaria per allevare pesci e raccogliere uova (vedi il Zebrafish Book22 per i dettagli).
Stereomicroscopio
Microscopio confocale verticale (Dotato di laser operanti a 488 nm, 561 nm e 405 nm, un laser multifotone sintonizzabile e un obiettivo Leica HCX IRAPO L, 25 volte, N.A. 0,95)LeicaLeica SP8
Blocco termicoThermoScientific88870001
35 mm x 10 mm Piatto per coltura tissutaleFalcon353001
Piastra a 6 pozzettiFalcon353046
Petri
Pinze Pipetta
in vetro
Stampo
Reagenti
8 mg/mL Soluzione madre di tricaina 
1 M Soluzione
Agarosio ultrapuro a basso punto di fusioneInvitrogen16520-050
AgarosioLonza50004
PTU (1-fenil-2-tiourea)Sigma AldrichP7629
Terreno embrionale: 30x soluzione
Software
Matlab dotato di strumenti per l'analisi delle immagini, l'adattamento della curva, i bioformatiMathWorks
8 mg/mL Soluzione madre di tricaina
200 mg di tricaina in polvere (acido etil-3-amminobenzoato metansolfonico)Sigma-AldrichE10521
25 mL Danieau
Regolare a pH 7, aliquotare e conservare a -20 gradi C 
1 M Soluzione madre BDM
1 g BDMSigma-Aldrich112135
10 mL ddH2O
Aliquotare e conservare a -20 ° C
Embryo medium: 30x soluzione madre
50,7 g NaClSigma-Aldrich7647-14-5
0,78 g KClSigma-Aldrich7447-40-7
1,47 g Solfato di magnesioSigma-Aldrich  7487-88-9
2,1 g Nitrito di calcio tetraidratoSigma-Aldrich13477-34-4
19,52 g HEPES (acido 4-(2-idrossietil)-1-piperazineetansolfonico)Sigma-Aldrich7365-45-9
Regolare a pH 7,2 e conservare a temperatura
Mold
PlasCLEAR resinaAsiga
Plus 39  Stampante 3D Pico a forma liberaAsiga
madre BDM madre ambiente

Riferimenti

  1. Chow, R. W., Vermot, J. The rise of photoresponsive protein technologies applications in vivo: a spotlight on zebrafish developmental and cell biology. F1000Res. 6, (2017).
  2. Sehnert, A. J. Cardiac troponin T is essenti....

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Ristampe e permessi

Tag

Cellule endocardichetecnica di fotoconversionesviluppo della valvola cardiacacanale atrioventricolaremicroscopia confocaleimaging time-lapseanalisi delle immaginitrattamento con BDMfluorescenza Kaede