Summary

설치류의 시스테 마그나에 정 맥 주입

Published: May 23, 2018
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Summary

여기는 시스테 마그나 cannulation (CMc), 뇌 척추 액체 (CSF)에 추적기, 기판 및 신호 분자를 제공 하는 최소 침 습 방법을 수행 하는 프로토콜에 설명 합니다. 다른 이미지 형식으로 결합, CMc glymphatic 시스템 및 CSF 역학 평가 뿐만 아니라 다양 한 화합물의 두뇌 전체 배달 수 있습니다.

Abstract

시스테 마그나 cannulation (CMc) 두개골 또는 뇌 실질에 요원 손상 없이 뇌 척추 액체 (CSF)에 직접 액세스할 수 있게 하는 간단한 절차 이다. 마 취 설치류, 목 근육의 무딘 해 부에 의해 dura mater의 노출 시스테 마그나 (CM)에 정 맥의 삽입을 허용합니다. 구성 좋은 비스듬한 바늘 또는 모 세관, 붕 정 주사기에 폴 리 에틸렌 (PE) 관을 통해 붙어 있다. 주사기 펌프를 사용 하 여, 분자 수 다음 주입 제어 속도에서 거미 막 밑 공간으로 연속은 CM에 직접. 거미 막 밑 공간에서 우리 중간 액체로 (ISF) 용 질 교환 발생 관통 arterioles, 주위 혈관 주위 공간으로 대류 흐름에 의해 CSF 플럭스를 추적할 수 있습니다. CMc 수행할 수 있습니다 수술 직후 급성 주사 또는 마 취 또는 깨어 나중 주입으로 만성 이식 설치류를 자유롭게 이동. Epifluorescence, 2-광자 현미경 검사 법, 그리고 삽입 된 분자의 physico-화학 특성에 따라 자기 공명 영상 (MRI), 뇌 실질에 추적 프로그램 배포의 정량을 수행할 수 있습니다. 따라서, 다양 한 이미징 기술 함께에서 CMc glymphatic 시스템 및 CSF 역동성 및 기능 평가 위한 강력한 도구를 제공합니다. 또한, CMc 신호 분자와 달리 혈액 뇌 장벽 (BBB)를 교차 하지 수 대사 기판의 빠르고, 뇌 전체 배달에 대 한 도관으로 활용할 수 있습니다.

Introduction

뇌 척추 액체 (CSF) 심 실 시스템 전체와는 해부학 정의 공간에서 연속체에 심, 두뇌 및 척수를 둘러싸는 거미 막 밑 공간에 따라 중앙 신경 시스템 (CNS)를 목욕. CSF의 주요 기능 중 하나는 대사와 뇌 실질에서 용액의 클리어런스에 대 한 경로 제공 것입니다. 클리어런스는 최근에 발견 된 glymphatic 시스템1, 뇌 주변 림프 시스템에 아날로그를 통해 촉진 된다. 여기, 우리가 설명 하 고 시스테 마그나 cannulation (CMc), CSF에 분자의 직접 배달 하는 최소 침 습 방법을 토론. CMc는 glymphatic 함수를 공부 하는 주요 방법입니다. CSF 역학 연구 및 혈관 주위 공간에 따라 뇌 실질에 비 혈액 뇌 장벽 (BBB) 침투성 분자의 빠르고, 뇌 전체 배달 또한, CMc의 적용할 수도 있습니다.

CMc는 시스테 마그나 (CM)의 CSF 가득한 공간으로 레이블이 지정 된 추적 분자 또는 마약을 제공 하는 CNS 통해 CSF 운동 역학의 생리 적 원리를 이용 한다. 분자는 CM. 분자 다음 CSF 대량 흐름 paravascular 공간1를 통해 뇌 실질에 의해 실행 된다 atlanto-후 두 경 막 막 덮 음에 이식 정 맥을 통해 주입 됩니다. CMc를 통해 주입 하는 추적 프로그램 또는 대비 에이전트 뇌 실질 입력 레이블된 분자의 강도 레벨을 측정 하 여 CSF 운동 및 glymphatic 유입의 평가 허용 CSF의 움직임을 다음과 같습니다. CMc 다른 이미징 기술로 epifluorescence, 2-광자 현미경 검사 법, 자기 공명 영상 (MRI)와 호환 됩니다. 또한,이 평가 될 수 있다 vivo에서 또는 비보 전을 수행. 중요 한 것은, CMc에서 마 취 또는 자연 수 면 중 뿐만 아니라 깨어 있는, 자유롭게 움직이는 동물에 glymphatic 시스템의 시각화 할 수 있습니다.

CMc 기술은 유체 역학, CSF에서의 다양 한 측면을 공부 하는 이용 될 수 있다 하지만 glymphatic 시스템을 공부 하는 데 특히 유용 것을 입증 했다. Glymphatic 활동 astrocytic 관 포장 endfeet의 막에 닿는 aquaporin-4 (AQP-4) 물 채널을 통해 periarterial 공간에서 CSF의 대류 흐름을 드라이브. 대류 흐름 CSF와 뇌 실질 내의 간 질 성 액체 (ISF)의 교환 수 있습니다. CSF/ISF 신진 대사 폐기물 및 용액을 포함 하는 perivenous 공간2,3를 통해 뇌 실질에서 다음 제거 됩니다. 궁극적으로, CSF/ISF 최근 설명된 듀 럴 림프 혈관4,5를 통해 주변에 도달합니다. Glymphatic 시스템은 아 밀 로이드 β2와 같은 유해한 폐기물 대사 산물의 정리를 위한 중요 한 보였다. 또한, glymphatic 클리어런스 장애인 당뇨병89알 츠 하이 머 병 동물 모델에서 노화6, 외상 성 뇌 부상7, 후에 이다. 특히, glymphatic 활동은 종속, 또는 깨어1에 비해 마 취 중 상당히 높은 활동을 보여주는 상태. 실제로, 젊은 마 취 동물 가장 높은 glymphatic 활동을 전시 한다. 따라서, glymphatic 활동의 실험 부 량이 건강과 질병에서의 역할을 공부 하는 경우 중요 합니다.

여러 연구 결과 CSF 역동성 및 뇌 실질에 중간 액체로 (ISF)의 교환 언급. 그러나, 레이블이 분자 전달 되는 메서드는 오히려 침략, 트리거링 뇌 실질 손상 intracranial 압력 (ICP)에 변화 (참조10검토). 몇 가지 예는 intraventricular 또는 intraparenchymal 주사 craniotomy 또는 한 버의 시추를 포함 두개골에 구멍. 이러한 절차 변경 ICP, 따라서 glymphatic 함수2방해 하 보였다. 또한, 이러한 침략 방법 astrogliosis을 유발 하 고 뇌 실질 손상 된 지역 및 그 주변11,12AQP-4 immunoreactivity를 증가. 이다, AQP-4 glymphatic 시스템의 핵심 요소는, CMc는 그것의 연구에 대 한 선택의 방법입니다. 더 많은 침략 적 절차에 비해 CMc의 주요 이점은, ICP 변경 및 astrogliosis, 각각 피하는 그대로 두개골과 뇌 실질의 유지 이다. 따라서, 다른 이미징 도구와 함께에서 CMc glymphatic 시스템 뿐 아니라 역학을 공부 하는 가능성의 광범위 및 신경 질환의 동물 모델에서 뿐만 아니라 항상성, 유체 흐름의 메커니즘에 대 한 열립니다.

시스테 마그나 cannulation (CMc) 절차는 뇌 척추 액체 (CSF)에 간단 하 고 직접 액세스할 수 있습니다. 다른 분자 (예: 형광 추적기, MRI 조 영제) 주입 하 여는 실험 CSF 구획 내의 그들의 움직임을 추적 하 고 glymphatic 시스템의 활동을 평가할 수 있습니다. 다음 프로토콜 모두 급성 CMc를, 수술, 그리고 동물이 나중 주입에 대 한 수술에서 복구 하는 정 만성 이식 직후 주사에 대해 설명 합니다. 급성과 만성 이식의 가장 중요 한 차이점은 만성 이식 깨어 쥐에 glymphatic 활동의 연구에 대 한 수 있습니다.

Protocol

모든 절차와 동물 연구를 위한 유럽 지침 2010/63/EU에 따라 수행 했다 덴마크어 정부 환경 및 음식 (2015-15-0201-00535)에서 동물 실험 위원회에 의해 승인 했다. 1입니다. Cannulation 절차 정 준비참고: 비 멸 균 장갑과 정을 만지지 마십시오. 30 G 치과 바늘 바늘 홀더를 사용 하 여의 경사진된 금속 팁을 끊다. PE10의 30의 cm 길이에 경사진된 금속 팁 (약 0.3 cm)를 삽…

Representative Results

쥐 또는 쥐 stereotaxic 프레임에서의 고정, 시 후 두도 머리 지역 목 근육은 퉁 명 스럽게 시스테 마그나 (CM)을 폭로 해 부. CM의 삼각형 구조는 소 뇌의 꼬리 부분과 모 (그림 1A-1 C) 사이 쉽게 인식 된다. 정은 부드럽게 atlanto 후 두 막 (그림 1D)를 관통 하 여 1-2 m m은 CM에 삽입 됩니다. 경질 막 힘든 구조 이며는 캐 뉼 러 ?…

Discussion

우리는 시스테 마그나 cannulation (CMc), CSF 구획에 레이블이 분자를 제공 하는 간단한 방법을 제공 합니다에 대 한 자세한 절차를 설명 하는 프로토콜을 제시 했습니다. CMc는 CSF 역동성, vivo에서 그리고 vivo, 전 다른 이미징 형식 또는 조직학을 사용 하 여 다음 시각화 수 있습니다.

CMc 기술의 주요 장점 중 하나는 craniotomy를 뇌를 노출 하지 않고도 거미 막 밑 공간에 ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 Novo Nordisk 기초 및 신경 성 질환의 국가 학회 및 치기, NINDS/NIH (M.N.) 지원 되었다. A.L.R.X. 및 S.H R은 각각 박사 친교와 Lundbeck 재단에서 박사 학위 장학금 받는 사람.

Materials

SOPIRA Carpule 30G 0.3 x 12mm Kulzer AA001
Polyethylene Tubing 0.024” OD x 0.011” ID Scandidact PE10-CL-500
30G x ½” 0.3 x 12 mm Luer-Lock Chirana T. Injecta CHINS01
Chlorhexidine 0.5% (chlorhexidine digluconate) Meda AS no catalogue number, see link in comments http://www.meda.dk/behandlingsomrader/desinfektion/desinfektion-af-hud/klorhexidin-sprit-medic-05/
Alcohol Swab 70% Isopropyl Alcohol 30 x 60mm Vitrex Medical A/S 520213
Viskoese Oejendraeber Ophtha Ophtha 145250
Wooden applicator, Double cotton bud (Ø appr. 4 – 5 mm, length appr. 12 mm) Heinz Herenz 1032018
Eye spears Medicom A18005
Ferric chloride 10% solution Algeos NV0382
Kimtech Science Precision Wipes Tissue Wipers Kimberly Clark Professional 05511
Loctite Super Glue Precision 5g Loctite no catalogue number, see link in comments http://www.loctite-consumer.dk/da/produkter/superglue-liquid.html 
Insta-Set CA Accelerator Bob Smith Industries BSI-152
Dental Cement Powder A-M Systems 525000
Surgical weld  Kent Scientific Corporation INS750391
Hamilton syringe GASTIGHT® , 1700 series, 1710TLL, volume 100 μL, PTFE Luer lock Hamilton syringes 1710TLL
LEGATO 130 Syringe pump KD Scientific 788130
Paraformaldehyde powder, 95% Sigma Aldrich 158127
Phosphate buffered saline (PBS; 0.01M; pH 7.4) Sigma Aldrich P3813
Ovalbumin, Alexa Fluor 647 Conjugate Thermo Fisher Scientific O34784

DAPI (diamidino-2-phenylindole) Solution (1 mg/mL)
Thermo Fisher Scientific 62248
Dextran, Fluorescein, 3000 MW, Anionic Thermo Fisher Scientific D3305
E-Z Anesthesia EZ-7000 Classic System E-Z Systems EZ-7000
Attane Isofluran 1000 mg/g ScanVet 55226
Euthanimal 200mg/mL (sodium pentobarbital) ScanVet 545349
Ketaminol Vet 100 mg/mL (ketamine) Intervet International BV 511519
Rompin Vet 20 mg/mL (xylazin) KVP Pharma + Veterinär Produkte GmbH 148999
Xylocain 20 mg/mL (lidocain) AstraZeneca 158543
Marcain 2.5 mg/mL (bupivacain) AstraZeneca 123918
Bupaq Vet 0.3 mg/mL (buprenorphine) Richter Pharma AG 185159 

Riferimenti

  1. Xie, L., et al. Sleep Drives Metabolite Clearance from the Adult Brain. Science. , 373-377 (2013).
  2. Iliff, J. J., et al. A paravascular pathway facilitates CSF flow through the brain parenchyma and the clearance of interstitial solutes, including amyloid β. Sci. Transl. Med. 4, 147ra111 (2012).
  3. Jessen, N. A., Munk, A. S. F., Lundgaard, I., Nedergaard, M. The Glymphatic System: A Beginner’s Guide. Neurochem. Res. 40, 2583-2599 (2015).
  4. Louveau, A., et al. Structural and functional features of central nervous system lymphatic vessels. Nature. , (2015).
  5. Aspelund, A., et al. A dural lymphatic vascular system that drains brain interstitial fluid and macromolecules. J. Exp. Med. 212, 991-999 (2015).
  6. Kress, B. T., et al. Impairment of paravascular clearance pathways in the aging brain. Ann. Neurol. 76, 845-861 (2014).
  7. Plog, B. A., et al. Biomarkers of Traumatic Injury Are Transported from Brain to Blood via the Glymphatic System. J. Neurosci. 35, 518-526 (2015).
  8. Jiang, Q., et al. Impairment of glymphatic system after diabetes. J. Cereb. Blood Flow Metab. , (2016).
  9. Peng, W., et al. Suppression of glymphatic fluid transport in a mouse model of Alzheimer’s disease. Neurobiol. Dis. 93, 215-225 (2016).
  10. Orešković, D., Klarica, M. The formation of cerebrospinal fluid: Nearly a hundred years of interpretations and misinterpretations. Brain Res. Rev. 64, 241-262 (2010).
  11. Dusart, I., Schwab, M. E. Secondary Cell Death and the Inflammatory Reaction After Dorsal Hemisection of the Rat Spinal Cord. Eur. J. Neurosci. 6, 712-724 (1994).
  12. Eide, K., Eidsvaag, V. A., Nagelhus, E. A., Hansson, H. -. A. Cortical astrogliosis and increased perivascular aquaporin-4 in idiopathic intracranial hypertension. Brain Res. , (2016).
  13. Pullen, R. G., DePasquale, M., Cserr, H. F. Bulk flow of cerebrospinal fluid into brain in response to acute hyperosmolality. Am. J. Physiol. 253, F538-F545 (1987).
  14. Ichimura, T., Fraser, P. A., Cserr, H. F. Distribution of extracellular tracers in perivascular spaces of the rat brain. Brain Res. 545, 103-113 (1991).
  15. Iliff, J. J., et al. Brain-wide pathway for waste clearance captured by contrast-enhanced MRI. J. Clin. Invest. 123, 1299-1309 (2013).
  16. Ratner, V., et al. Optimal-mass-transfer-based estimation of glymphatic transport in living brain. Proc. SPIE–the Int. Soc. Opt. Eng. 9413, (2015).
  17. Lee, H., et al. The Effect of Body Posture on Brain Glymphatic Transport. J. Neurosci. 35, 11034-11044 (2015).
  18. Nouri, S., Sharif, M. R., Sahba, S. The effect of ferric chloride on superficial bleeding. Trauma Mon. 20, e18042 (2015).
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Citazione di questo articolo
Xavier, A. L., Hauglund, N. L., von Holstein-Rathlou, S., Li, Q., Sanggaard, S., Lou, N., Lundgaard, I., Nedergaard, M. Cannula Implantation into the Cisterna Magna of Rodents. J. Vis. Exp. (135), e57378, doi:10.3791/57378 (2018).

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