Summary

Eksperimentell protokoll for bruke Drosophila som en virvelløse modellsystem for toksisitet Testing i laboratoriet

Published: July 10, 2018
doi:

Summary

I dette papiret gir vi en detaljert protokoll for å utsette arter i slekten Drosophila til forurensning med mål å studere virkningen av eksponering på en rekke fenotypiske utganger på ulike utviklingsstadier og mer enn én generasjon.

Abstract

Emergent egenskaper og eksterne faktorer (populasjon-nivå og økosystem-nivå interaksjoner, spesielt) spille viktige roller i formidling økologisk viktige endepunkter, men de anses sjelden i toksikologiske studier. D. melanogaster fremstår som en toksikologi modell for opptreden, nevrologiske og genetisk virkningene av giftstoffer, for å nevne noen. Enda viktigere, kan arter i slekten Drosophila benyttes som et modellsystem for rammeverk tilnærming å innlemme emergent egenskaper og svare økologisk relevante spørsmål i toksikologi forskning. Målet med denne utredningen er å gi en protokoll for å utsette arter i slekten Drosophila til miljøgifter som skal brukes som et modellsystem for en rekke fenotypiske utganger og økologisk relevante spørsmål. Mer spesifikt, kan denne protokollen brukes til 1) koble flere biologiske nivåer av organisasjonen og forstå virkningen av giftstoffer på både enkelt – og befolkningen-nivå fitness; 2) test virkningen av giftstoffer på ulike stadier av utviklingsmessige eksponering; 3) test multigenerational og evolusjonære implikasjoner av; og 4) teste flere forurensninger og stressors samtidig.

Introduction

Hvert år er ca 1000 nye kjemikalier innført av kjemisk industri1,2; Imidlertid er miljøvirkningene av bare en liten prosentandel av disse kjemikaliene testet før distribusjon2,3. Selv om store katastrofer er uvanlig, sublethal og kronisk eksponering til et stort utvalg av stoffer er utbredt i både mennesker og dyr4,5. Historiske fokus økotoksikologi og miljømessige toksikologi var å teste dødelighet, enkelt kjemisk eksponering, akutt eksponering og fysiologiske effekter av eksponering, som en måte å måle virkningen av miljøgifter på overlevelse6, 7 , 8 , 9 , 10. selv om det er en dreining mot etiske og ikke-invasive metoder å dyreforsøk, dagens tilnærminger er begrensende rolle som utvikling, emergent egenskaper og eksterne faktorer (for eksempel populasjon-nivå og økosystem-nivå interaksjoner) spille i formidling økologisk viktige endepunktene8. Derfor er det behov for metoder som inneholder en mer holistisk tilnærming uten å ofre dyr og/eller virveldyr i laboratoriet.

Virvelløse modellsystemer, for eksempel Drosophila melanogaster, er et attraktivt alternativ til møte behovet for en mer helhetlig tilnærming til toksisitet testing. D. melanogaster, ble opprinnelig utviklet som en virvelløse modellsystem for menneske-relaterte genetisk forskning om århundre siden11. D. melanogaster fremtredende brukes nå som virveldyr modell alternativ for flere grunner: 1) bevaring av gener og veier mellom D. melanogaster og mennesker; 2) kort generasjonstid i forhold til vertebrate modeller; 3) rimelig pris for vedlikehold; 4) lette generere store utvalgene; og 5) mengde fenotypiske og økologisk-relevante endepunktene tilgjengelig for testing11,12,13,14,15,16,17 .

Flere laboratorier11,15,16,17,18,19,20,21,22, 23 , 24 , 25 nå bruker D. melanogaster som virveldyr modell alternativ for toksisitet tester for å forstå konsekvensene av forurensning på mennesker. Lokale arter av Drosophila kan benyttes, også, som toksisitet modeller for dyr og mennesker svare økologisk-, behaviorally-, og evolusjonært relevante spørsmål på flere biologiske nivåer av organisasjonen. Med arter i slekten Drosophila som modell, er flere målbare endepunktene mulig11,15,16,18,19,20 ,,21,,22,,23,,24,,25. In addition, bruker Drosophila modellen, toxicologists kan: 1) etisk koble effekter på flere biologiske nivåer av organisasjonen; 2) innlemme rollen emergent faktorer og utvikling; 3) studere økologisk viktige sluttpunkt (i tillegg til medisinsk viktige endepunktene); 4) teste flere stressfaktorer samtidig; 5) og test langsiktige multigenerational (f.eks evolusjonære og transgenerational) virkningene av stressfaktorer. Derfor gjør bruker Drosophila som et modellsystem en rekke tilnærminger, ikke begrenset å studere mekanistisk tilnærminger med innavlet stammer av D. melanogaster i laboratoriet.

I dette papiret presentere vi metoder for oppdrett og samle Drosophila å svare ulike toksikologiske spørsmål. Mer spesifikt, beskriver vi metodikken for 1) oppdrett Drosophila medium laced med én eller flere stoffer; 2) samle Drosophila gjennom utvikling (f.eks vandrende tredje-skikkelsen larver, pupal tilfeller, nylig-eclosed voksne og eldre voksne); og 3) oppdrett Drosophila i forurensede medium å test intergenerational samt transgenerational overføring og evolusjonære konsekvensene av langvarig toxicant eksponering. Med denne protokollen, tidligere forfattere18,19,20,21,22,23,24har,25 rapportert forskjellige fysiologiske, genetisk og behavioral virkninger av utviklingsmessige bly (Pb2 +) eksponering. Denne protokollen kan toxicologists bruke en mer helhetlig toksikologiske tilnærming som er nødvendig for å forstå hvordan stoffer er risikofaktorer for både mennesker og dyr i et stadig mer forurenset miljø.

Protocol

Følgende-protokollen er en eksperimentell brukt til bakre arter i Drosophila slekten på forurenset medium når oralt inntak av en gift er aktuelle; andre former for eksponering er mulig å bruke Drosophila modellen11,15,16,26. Metodene som er beskrevet i denne protokollen har tidligere blitt beskrevet av Hirsch et al. 19 og Peterson et al…

Representative Results

Av muntlig utsette Drosophila for en contaminant(s) gjennom utvikling, kan diverse toksikologiske spørsmål testes ved å utsette Drosophila på ulike nivåer av biologisk organisasjon. Denne delen presenterer representant resultatene bruker denne protokollen i tidligere publiserte artikler23,24. Spesielt ble denne protokollen tidligere brukt til å vurdere akkumulering, eliminering og lagring av bly (Pb) til sa…

Discussion

Drosophila melanogaster har blitt etablert som en kraftig modell for en rekke biologiske prosesser på grunn av omfattende bevaring av gener og veier mellom D. melanogaster og mennesker13,14. Av samme grunn at det er en kraftig modell for medisinsk vitenskap har Drosophila framstått som en passende modell-system for å studere virkningen av menneskeskapt forurensning på en rekke toksikologiske endepunktene. Flere laboratorier bruker v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne publikasjonen ble støttet av et stipend fra Institutt for utdanning (PR Award #P031C160025-17, prosjekttittel: 84.031 C) til Colorado State University-Pueblo (CSU-Pueblo) fellesskap å bygge aktive STEM engasjement (C-BASE). Vi takker gjeldende zoologi og Elsevier for å gi rettigheter til å bruke representant resultatene publisert i tidligere artikler, i tillegg til redaktørene av JoVE for å gi oss muligheten til å publisere denne protokollen. Vi ønsker også å takke C-BASE Program, Dr. Brian Vanden Heuvel (C-BASE og biologisk Institutt, CSU-Pueblo), CSU-Pueblo biologi avdeling, Thomas Graziano, Dr. Bernard Possidente (Institutt for biologi, Skidmore College) og Dr. Claire Varian Ramos (Biologisk Institutt, Colorado State University-Pueblo) for deres støtte og hjelp.

Materials

Carolina Biological Instant Drosophila Medium Formula 4-24 Carolina Biological 173204
Drosophila vials, Narrow (PS), Polystyrene, Superbulk, 1000 vials/unit Genessee Scientific 32-116SB Used to store flies
Flugs Closures for vials and bottles, Narrow plastic vials Genessee Scientific 49-102 Used to store flies
Cardboard trays, trays only, narrow Genessee Scientific 32-124 Used to organize populations of flies
Cardboard trays, dividers only, narrow Genessee Scientific 32-126 Used to organize populations of flies
Thermo Scientific Nalgene Square Wide-Mouth HDPE Bottles with Closure Fischer Scientific 03-312D Useful for storage of contaminants
Thermo Scientific Nalgene Color-Coded LDPE Wash Bottles Fischer Scientific 03-409-17C Useful for storage of contaminants
Eppendorf Repeater M4 Manual Handheld Pipette Dispenser Fischer Scientific 14-287-150 Used to prepare medium
Combitips Advanced Pipetter Tips – Standard, Eppendorf Quality Tips Fischer Scientific 13-683-708 Used to prepare medium
Flypad, Standard Size (8.1 X 11.6cm) Genessee Scientific 59-114 Used to anesthetize flies
Flystuff foot valve Genessee Scientific 59-121 Used to anesthetize flies
Tubing, green (1 continguous foot/unit) Genessee Scientific 59-124G Used to anesthetize flies
Mineral Oil, Light, White, High Purity Grade, 500 mL HDPE Bottle VWR 97064-130 Used to make a morgue
Glass Erlenmeyer Flask Set – 3 Sizes – 50, 150 and 250ml, Karter Scientific 214U2 Walmart Not applicable Used to make a morgue
BGSET5 Glass Beaker Set Of 5 Walmart
Inbred or wildtype line of Drosophila Bloomington Drosophila Stock Center at Indiana University https://bdsc.indiana.edu
Wild popultions of Drosophila UC San Diego Drosophila Stock Center https://stockcenter.ucsd.edu/info/welcome.php

References

  1. Postel, S. . Defusing the Toxics Threat: Controlling Pesticides and Industrial Waste. , (1987).
  2. Vitousek, P. M., Mooney, H. A., Lubchenco, J., Melillo, J. M. Human domination of earth’s ecosystems. Science. 277, 494-499 (1997).
  3. United Nations Environment Program (UNEP). . Saving Our Planet: Challenges and Hopes. , (1992).
  4. Hansen, L. J., Johnson, M. L. Conservation and toxicology: Integrating the disciplines. Conservation Biology. 13, 1225-1227 (1999).
  5. Johnston, E. L., Mayer-Pinto, M., Crowe, T. P. REVIEW: Chemical contaminant effects on marine ecosystem functioning. Journal of Applied Ecology. 52, 140-149 (2015).
  6. Dell’Omo, G. . Behavioral ecotoxicology. , (2002).
  7. Clotfelter, E. D., Bell, A. M., Levering, K. R. The role of animal behaviour in the study of endocrine-disrupting chemicals. Animal Behaviour. 68, 665-676 (2004).
  8. Peterson, E. K., Buchwalter, D. B., Kerby, J. L., LeFauve, M. K., Varian-Ramos, C. W., Swaddle, J. P. Integrative behavioral ecotoxicology: bringing together fields to establish new insight to behavioral ecology, toxicology, and conservation. Current Zoology. 63, 185-194 (2017).
  9. Scott, G. R., Sloman, K. A. The effects of environmental pollutants on complex fish behaviour: Integrating behavioural and physiological indicators of toxicity. Aquatic Toxicology. 68, 369-392 (2004).
  10. Zala, S. M., Penn, D. J. Abnormal behaviors induced by chemical pollution: A review of the evidence and new challenges. Animal Behaviour. 68, 649-664 (2004).
  11. Abolaji, A. O., Kamdem, J. P., Farombi, E. O., Rocha, J. B. T. Drosophila melanogaster as a promising model organism in toxicological studies. Archives of Basic & Applied Medicine. 1, 33-38 (2013).
  12. Jennings, B. H. Drosophila-a versatile model in biology and medicine. Materials Today. 14, 190-195 (2011).
  13. Pandey, U. B., Nichols, C. D. Human disease models in Drosophila melanogaster and the role of the fly in therapeutic drug discovery. Pharmacology Reviews. 63, 411-436 (2011).
  14. Rubin, G. M., et al. Comparative genomics of the eukaryotes. Science. 287, 2204-2215 (2000).
  15. Rand, M. D. Drosophotoxicology: The growing potential for Drosophila in neurotoxicology. Neurotoxicol Teratol. 32, 74 (2010).
  16. Rand, M. D., Montgomery, S. L., Prince, L., Vorojeikina, D. Developmental toxicity assays using the Drosophila model. Current Protocols in Toxicology. 59, 1.12.1-1.12.20 (2015).
  17. Burke, M. K., Rose, M. R. Experimental evolution with Drosophila. American Journal of Physiology: Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 296, R1847-R1854 (2009).
  18. He, T., Hirsch, H. V. B., Ruden, D. M., Lnenicka, G. A. Chronic lead exposure alters presynaptic calcium regulation and synaptic facilitation in Drosophila larvae. NeuroToxicology. 30, 777-784 (2009).
  19. Hirsch, H. V., et al. Behavioral effects of chronic exposure to low levels of lead in Drosophila melanogaster. NeuroToxicology. 24, 435-442 (2003).
  20. Hirsch, H. V. B., et al. Variations at a quantitative trait locus (QTL) affect development of behavior in lead-exposed Drosophila melanogaster. NeuroToxicology. 30, 305-311 (2009).
  21. Morley, E. J., Hirsch, H. V. B., Hollocher, K., Lnenicka, G. A. Effects of chronic lead exposure on the neuromuscular junction in Drosophila larvae. NeuroToxicology. 24, 35-41 (2003).
  22. Ruden, D. M., et al. Genetical toxicologenomics in Drosophila identifies master- modulatory loci that are regulated by developmental exposure to lead. NeuroToxicology. 30, 898-914 (2009).
  23. Peterson, E. K., et al. Accumulation, elimination, sequestration, and genetic variation of lead (Pb2+) loads within and between generations of Drosophila melanogaster. Chemosphere. 181, 368-375 (2017).
  24. Peterson, E. K., et al. Asymmetrical positive assortative mating induced by developmental lead (Pb2+) exposure in a model system, Drosophila melanogaster. Current Zoology. 63, 195-203 (2017).
  25. Peterson, E. K. . Consequences of developmental lead (Pb2+) exposure on reproductive strategies in Drosophila. , (2016).
  26. Chifiriuc, M. C., Ratiu, A. C., Popa, M., Ecovolu, A. A. Drosophotoxicology: An emerging research area for assessing nanoparticles interaction with living organisms. International Journal of Molecular Sciences. 17, 36 (2016).
  27. Lachaise, D., Cariou, M. L., David, J. R., Lemeunier, F., Tsacas, L., Ashburner, M. Historical biogeography of the Drosophila melanogaster species subgroup. Evolutionary Biology. 22, 159-225 (1988).
  28. Elgin, C. R., Miller, D. W., Ashburner, M., Wright, T. R. F. Mass rearing of flies and mass production and harvesting of embryos. The Genetics and Biology of Drosophila. 2a, 112-121 (1978).
  29. Shaffer, C. D., Wuller, J. M., Elgin, C. R. Chapter 5: Raising large quantities of Drosophila for biochemical experiments. Methods in Cell Biology. 44, 99-108 (1994).
  30. Stocker, H., Gallant, P. Getting started: an overview on raising and handling Drosophila. Methods in Molecular Biology. 420, 27-44 (2008).
  31. Jennings, J. H., Etges, W. J., Schmitt, T., Hoikkala, A. Cuticular hydrocarbons of Drosophila montana: geographic variation, sexual dimorphism and potential roles as pheromones. Journal of Insect Physiology. 61, 16-24 (2014).
  32. Markow, T. A., O’Grady, P. M. . Drosophila: A Guide to Species Identification and Use. , (2005).
  33. Werner, T., Jaenike, J. . Drosopholids of the midwest and northeast. , (2017).
  34. Greenspan, R. J. The basics of doing a cross. Fly Pushing: The theory and practice of Drosophila genetics. , 3-24 (1997).
  35. JoVE Science Education Database. . . Biology I: yeast, Drosophila and C. elegans. Drosophila Maintenance. , (2018).
  36. Castañeda, P. L., Muñoz, G. L. E., Durán, D. A., Heres, P. M. E., Dueñas, G. I. E. LD50 in Drosophila melanogaster. fed on lead nitrate and lead acetate. Drosophila Information Service. 84, 44-48 (2001).
  37. Massie, H. R., Aiello, V. R., Whitney, S. J. P. Lead accumulation during aging of Drosophila and effect of dietary lead on life span. Age. 15, 47-49 (1992).
  38. Akins, J. M., Schroeder, J. A., Brower, D. L., Aposhian, H. V. Evaluation of Drosophila melanogaster as an alternative animal for studying the neurotoxicity of heavy metals. BioMetals. 5, 111-120 (1992).
  39. Zhou, S., et al. The genetic basis for variation in sensitivity to lead toxicity in Drosophila melanogaster. Environmental Health Perspectives. 124, 1062-1070 (2016).
  40. Pitnick, S., Markow, T. A., Spicer, G. S. Delayed male maturity is a cost of producing large sperm in Drosophila. Proceedings of National Academy of Sciences USA. 92, 10614-10618 (1995).
  41. Beauchemin, D. Inductively Coupled Plasma Mass Spectrometry. Analytical Chemistry. 82, 4786-4810 (2010).
  42. Tyler, M. S., Tyler, M. S. Development of the fruit fly Drosophila melanogaster. Developmental Biology, a Guide for Experimental Study. , 8-27 (2000).
  43. Ortiz, J. G., Opoka, R., Kane, D., Cartwright, I. L. Investigating arsenic susceptibility from a genetic perspective in Drosophila reveals a key role for glutathione synthetase. Toxicological Sciences. 107, 416-426 (2009).
  44. Bonilla, E., Contreras, R., Medina-Leendertz, S., Mora, M., Villalobos, V., Bravo, Y. Minocycline increases the life span and motor activity and decreases lipid peroxidation in manganese treated Drosophila melanogaster. Toxicology. 294, 50-53 (2012).
  45. Guarnieri, D. J., Heberlein, U. Drosophila melanogaster, a genetic model system for alcohol research. International Review of Neurobiology. 54, 199-228 (2003).
  46. Posgai, R., Cipolla-McCulloch, C. B., Murphy, K. R., Hussain, S. M., Rowe, J. J., Nielsen, M. G. Differential toxicity of silver and titanium dioxide nanoparticles on Drosophila melanogaster development, reproductive effort, and viability: size, coatings and antioxidants matter. Chemosphere. 85, 34-42 (2011).
  47. Gupta, S. C., et al. Adverse effect of organophosphate compounds, dichlorvos and chlorpyrifos in the reproductive tissues of transgenic Drosophila melanogaster: 70kDa heat shock protein as a marker of cellular damage. Toxicology. 238, 1-14 (2007).
  48. Wasserkort, R., Koller, T. Screening toxic effects of volatile organic compounds using Drosophila melanogaster. Journal of Applied Toxicology. 17, 119-125 (1997).
  49. Markow, T. A., O’Grady, P. O. Reproductive ecology of Drosophila. Functional Ecology. 22, 747-759 (2008).
  50. Dev, K., Chahal, J., Parkash, R. Seasonal variations in the mating-related traits of Drosophila melanogaster. Journal of Ethology. 31, 165-174 (2013).
  51. Salminen, T. S., Vesala, L., Laiho, A., Merisalo, M., Hoikkala, A., Kankare, M. Seasonal gene expression kinetics between diapause phases in Drosophila virilus group species and overwintering differences between diapausing and non-diapausing females. Nature Scientific Reports. 5, 11197 (2015).
  52. Miller, R. S., Thomas, J. L. The effects of larval crowding and body size on the longevity of adult Drosophila melanogaster. Ecology. 39, 118-125 (1958).
  53. Peterson, E. K., Ghiradella, H., Possidente, B., Hirsch, H. Transgenerational epigenetic effects of lead exposure on behavior in Drosophila melanogaster. 11, 492-493 (2012).
  54. Soares, J. J., et al. Continuous liquid feeding: New method to study pesticides toxicity in Drosophila melanogaster. Analytical Biochemistry. 537, 60-62 (2017).
check_url/57450?article_type=t&slug=experimental-protocol-for-using-drosophila-as-an-invertebrate-model

Play Video

Cite This Article
Peterson, E. K., Long, H. E. Experimental Protocol for Using Drosophila As an Invertebrate Model System for Toxicity Testing in the Laboratory. J. Vis. Exp. (137), e57450, doi:10.3791/57450 (2018).

View Video