Qui, presentiamo un protocollo per determinare la specificità di proteasi in tessuto grezzo del mouse estratti usando spettrometria MALDI-TOF.
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Articolo metodologico
Qui, presentiamo un protocollo per determinare la specificità di proteasi in tessuto grezzo del mouse estratti usando spettrometria MALDI-TOF.
Proteasi hanno diverse funzioni biologiche, tra cui la digestione della proteina di attivazione/inattivazione e cibo. Identificazione della proteasi specificità è importante per rivelare la funzione di proteasi. Il metodo proposto in questo studio determina la specificità della proteasi misurando il peso molecolare dell'unici substrati utilizzando Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization spettrometria di massa di tempo di volo (MALDI-TOF). I substrati contengono iminobiotin, mentre il sito fenduto è composto da aminoacidi, e il distanziatore è costituito da polietilene glicole. Il substrato fenduto genererà un unico peso molecolare usando un aminoacido spaccato. Uno dei meriti di questo metodo è che può essere effettuata in una pentola utilizzando campioni di greggi, ed è anche adatto per valutare campioni multipli. In questo articolo, descriviamo un metodo sperimentale semplice ottimizzato con campioni estratti dal tessuto polmonare di topo, compresa l'estrazione del tessuto, inserimento di substrati digestivi in campioni, purificazione dei substrati digestivi in condizioni di pH diversi e la misurazione del peso molecolare dei substrati utilizzando la spettrometria di massa MALDI-TOF. In sintesi, questa tecnica consente l'identificazione della specificità di proteasi in campioni grezzi derivati da estratti di tessuto mediante spettrometria di massa MALDI-TOF, che facilmente può essere scalata per elaborazione di campione più.
Proteasi regolano processi fisiologici fendendo proteine, e l'avvio di attività di proteasi a orari specifici e posizioni è regolato1. Pertanto è importante per identificare l'espressione e l'attività dei tessuti che sono regolate localmente e per sviluppare un nuovo metodo per rilevare le proteasi. Il metodo proposto questo studio mira a identificare le specificità di proteasi in parallelo al rilevamento di proteasi.
Ci sono alcuni metodi per la rilevazione di specificità di proteasi. Il metodo azocaseina è ben noto per il suo utilizzo nella rilevazione di proteasi2 ma è limitato nella sua ca....
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Protocolli sperimentali animali erano approvati dal comitato etico dell'Università Nihon Pharmaceutical ed eseguiti in conformità con le linee guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio dell'Università Nihon Pharmaceutical. Il protocollo è stato regolato per estratti di tessuto derivati da topi ICR. Topi ICR sono stati acquistati da Nippon SLC Ltd. (Shizuoka, Giappone)
1. preparazione del substrato con etichetta Iminobiotin
Il substrato subisce sintesi in fase solida utilizzando gruppo 9-fluorenylmethyloxycarbonyl (Fmoc)-protetti aminoacidi come descritto di seguito11. Utilizzare
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Valutazione del metodo per l'identificazione della specificità di proteasi di proteasi di modello
L'efficienza di questo sistema è stata valutata usando TPCK-tripsina e V8 proteasi, cui specificità del substrato sono state ottenute. TPCK-tripsina e V8 proteasi sono stati stimati a fendere la sequenza dell'amminoacido al C-terminale dei residui di lisina e arginina e sul lato di carboxy del acido aspartico e acido glutammico residui.......
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Questo protocollo utilizza la spettrometria di massa MALDI-TOF per identificare specificità di proteasi in campioni grezzi derivati da estratti di tessuto e facilmente può essere scalato per elaborazione di campione più. In particolare, abbiamo maneggiato pH per causare un cambiamento nella specificità di substrato.
Il metodo (ABC) complesso avidina-biotina, che è stato ampiamente usato in biochimica a causa della sua specificità di legame, è stato utilizzato nel nostro protocollo. A causa del.......
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Gli autori non dichiarano alcun conflitto di interessi.
Questo lavoro è stato supportato in parte da Nihon farmaceutica University Research Grant da Nihon Pharmaceutical University (2016) e il JP17854179 di numero di MEXT KAKENHI Grant.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Resina Fmoc-NH-SAL(-[2,4-Dimetossifenil-N-(9-fluorenilmetossicarbonil) amminometil]fenossi resina) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00102 | |
| N,N-dimetilformammide (DMF) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00185 | |
| piperidina | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00176 | |
| acido trinitrobenzensolfonico (TNBS) | WAKO Chemical | 209-1483 | |
| O-(6-cloro-1H-benzotriazol-1-il)-N,N,N',N'-tetrametiluronio esafluorofosfato (HCTU) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00067 | |
| 1-idrossi-1H-benzotriazolo, monoidrato (HOBt) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00014 | |
| diisopropiletilamina (DIPEA) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00030 | |
| triisopropilsilano (TIS) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00170 | |
| ethanedithiol (EDT) | Watanabe Chemical Co., Ltd. | A00057 | |
| acido trifluoroacetico (TFA) | Millipore | S6612278 403 | |
| acetonitrile | Kokusan Chemical | 2153025 | |
| C18 colonna cartuccia | Acque | WAT051910 | |
| poli(ossietilene) ottilfenile etere | WAKO Chemical | 168-11805 | Triton X-100 |
| omogeneizzatore di miscelazione | Kinematica | PT3100 | omogeneizzatore polytron |
| Coomassie Brilliant Blue (CBB) -G250 | Nakarai Chemical | 094-09 | |
| glicerolo | Nakarai Chemical | 170-18 | |
| N-tosil-L-fenilalanina clorometil chetone (TPCK)-tripsina | Sigma-Aldrich | T1426 | |
| dimetil solfossido (DMSO) | WAKO Chemical | 043-07216 | |
| streptavidina sefarosio | GE Healthcare | 17-511-01 | |
| ZipTipC18 | Millipore | ZTC18S096 | |
| &alfa;-ciano-4-idrossicinnamico acido (CHCA) | Sigma-Aldrich | C2020 | |
| MALDI-TOF spettrometria di massa | Bruker Daltonics, Germania | autoflex | |
| 2-iminobiotina | Sigma-Aldrich | I4632 | |
| Fmoc-aminoacidi | Watanabe Chemical Co., Ltd. |
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