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Articolo metodologico

Un metodo di preparazione efficiente dei campioni per migliorare i segnali dello ione del carboidrato in spettrometria di massa di Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization

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DOI:

10.3791/57660

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29 luglio 2018

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In questo articolo

Sommario

Un protocollo per migliorare i segnali dello ione del carboidrato in spettrometria di massa MALDI di riforma delle strutture cristallina durante i processi di preparazione del campione è dimostrato.

Abstract

Preparazione del campione è un processo critico nell'analisi di spettrometria di massa (MS) dei carboidrati. Anche se matrix-assisted laser desorption/ionizzazione (MALDI) MS è il metodo di scelta nell'analisi del carboidrato, riproducibilità di segnali e dati di poveri dello ione di campioni di carboidrati continuano ad essere gravi problemi. Per l'analisi quantitativa dei carboidrati, è necessario un efficace protocollo analitico, fornendo la qualità superiore dei dati. Questo video dimostra protocolli di preparazione del campione per migliorare l'intensità del segnale e minimizzare la variazione dati di carboidrati in MALDI-MS. Dopo l'essiccazione e cristallizzazione di gocce di campione, la morfologia di cristallo è riformata dal metanolo prima analisi spettrometria totale. Il miglioramento nel segnale del carboidrato è esaminato con spettrometria di massa MALDI imaging (IMS). Risultati sperimentali dimostrano che la riforma di cristallo regola strutture cristalline e ridistribuisce carboidrati analiti. In confronto con il metodo di preparazione delle gocce essiccate in convenzionale MALDI-MS, riformando morfologie di cristallo del carboidrato con metanolo spettacoli significativamente migliore intensità del segnale, distribuzione di immagini di ioni e stabilità dei dati. Poiché i protocolli hanno dimostrati nel presente documento non comportano modifiche nella composizione del campione, sono generalmente applicabili a vari carboidrati e matrici.

Introduzione

Analisi del carboidrato sono un argomento importante e impegnativo. Carboidrati e loro derivati svolgono i ruoli importanti vivere organismi1,2,3. Queste molecole hanno complicate strutture e sono inclini a decomporsi. Molti di loro non può essere caratterizzati chiaramente a causa di difficoltà nella separazione e nella rilevazione. Anche se spettrometria di matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI) massa (MS) è stata applicata all'analisi di una vasta gamma di biomolecole, grazie alla sua sensibilità e risultati comprensibili4, analisi dei ....

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Protocollo

1. campione piatto precondizionamento

  1. Pulizia del piatto del campione
    1. Indossare guanti in nitrile per evitare la contaminazione del piatto del campione durante la pulizia.
    2. Lavare a mano piatto del campione ad 100,0 mL di soluzione detergente (1,0 mg/mL).
    3. Lavare a mano piatto del campione con acqua distillata deionizzata (DDW).
    4. Sciacquare la superficie della piastra campione con 30,0 mL di MeOH.
    5. Mettere il piatto di campione in un becher da 600 mL e riempire con DDW fino al piatto del campione è completamente immerso in acqua.
    6. Porre il becher in un ultrasuoni bagno (Vedi

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Risultati

Immagini di SEM rappresentative di SLeA mescolano con DHB preparato usando DD e ricristallizzazione metodi sono illustrati nella Figura 1. Una tipica morfologia DHB come preparato con il metodo DD è grandi cristalli aghiformi a cerchio e belle strutture cristalline nel centro di punti campione. Le lunghezze tipiche di tali cristalli aghiformi sono ~ 100 µm. Dopo ricristallizzazione da MeOH, il campione ha una più grande zona coperta uniformemente c.......

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Discussione

Eterogeneità di campione è che un problema cruciale in MALDI-MS. DD è il più diffuso metodo di preparazione del campione, ma i cristalli risultanti sono altamente eterogenei. Tali campioni mostrano riproducibilità povero segnale shot-to-shot e campione a campione. Di conseguenza, alla ricerca di "sweet spot" in aree campione durante l'acquisizione dei dati è una procedura comune in esperimenti di MALDI. Tali campioni eterogenei non sono adatti per quantificazione in analisi di routine.

Nello s.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori non hanno nessun ringraziamenti.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagente
Detersivo in polvereAlconox242985
MetanoloMerck106009
AcetonitrileMerck100003
Acido 2,5-diidrossibenzoico (DHB)Alfa AesarA11459
sialil-lewis A (SLeA)Sigma-AldrichS1782
MaltoeptaosioSigma-AldrichM7753
Puntali per pipetteMettler Toledo17005091
Provetta per microcentrifugaAxygenMCT-150-C
Equipment
Milli-Q sistema di purificazione dell'acquaMilliporeZMQS6VFT1
Guanti in nitrile senza polvereMicroflexSU-690
Becher da 600 mLDuran2110648
Pulitore ad ultrasuoniDeltaDC300H
IgrometroWisewind5330
Misuratore di portata di azoto gassosoDwyerRMA-6-SSV
Termocoppie di tipo KDigitron311-1670
Miscelatore a vorticeScientific Industries  SI-0236
Mini centrifugaSeleziona BioProductsForce Mini 
PipettaRaininpipet-lite XLS
StereomicroscopioOlympusSZX16
Camera di essiccazione a temperatura controllabileQuesto laboratorio
Ultraflex II TOF/TOF spettrometro di massaBruker Daltonics
MTP 384 piastra bersaglio acciaio lucido BCBruker Daltonics8280781
Flexcontrol Versione 3.4Bruker DaltonicsSoftware di controllo
Fleximaging Versione 2.1Bruker DaltonicsSoftware di imaging
Flexanalysis Versione 3.4Bruker DaltonicsSoftware di analisi

Riferimenti

  1. Holme, D. J., Peck, H. Analytical Biochemistry. , 3rd edn, Addison Wesley Longman Limited. (1998).
  2. Costello, C. E. Time, life ... and mass spectrometry - New techniques to address biological questions. Biophysical Chemistry. 68 (1-3), 173-188 (1997).
  3. Caroff, M., Karibian, D.

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Ristampe e permessi

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