Summary

低酸素の条件の下で培養された細胞から内因性の核蛋白質を用いた Co 免疫沈降試験

Published: August 02, 2018
doi:

Summary

ここで低酸素の条件の下で内因性の核蛋白質間蛋白質蛋白質の相互作用を研究する co 免疫沈降プロトコルについて述べる。このメソッドは、転写因子と低酸素で転写共役因子との相互作用のデモンストレーションに適しています。

Abstract

低酸素レベル (低酸素) は、さまざまな低酸素誘導因子 1 (HIF 1) マスターの調整装置として複雑な適応応答をトリガーします。HIF 1 ヘテロ二量体酸素によって調節される α サブユニット (HIF-1 α) から成り、血管新生を含む多様なプロセスに関与する遺伝子を調節する β サブユニット (HIF 1 β) として知られている芳香族炭化水素受容体核移行因子 (ARNT) されて、赤芽球および解糖系。HIF 1 相互作用するタンパク質の同定は、低酸素シグナル伝達経路を理解する鍵です。HIF-1 α の安定性の規則、ほか低酸素症はまた HIF-1 α ARNT など多くの転写因子の核内移行をトリガーします。特に、このようなタンパク質-タンパク質相互作用 (Ppi) を研究するために使用する現在の方法のほとんどは、タンパク質レベルは人為的に蛋白過剰発現を増加させるシステムに基づいています。多くの蛋白の過剰発現は、時空の成果物から生じる非生理的結果に します。ここで変更された co-免疫沈降を記述プロトコルの内因性の核蛋白質を使用して低酸素血症の治療の後、HIF-1 α と ARNT の相互作用を表示する概念の証拠として。このプロトコルでは低酸素細胞が低酸素の条件の下で収穫された、ダルベッコの (DPBS) Phosphate-Buffered 生理食塩水洗浄バッファーも感受タンパク質分解やタンパク質複合体を軽減するために使用する前にあらかじめ釣合い再酸素化中に解離します。さらに、核の一部分を集中、内因性の核蛋白質の安定化と蛋白過剰発現時にしばしば見られる誤った結果を避けるために抽出した後。このプロトコルは、転写因子と低酸素の条件の下で転写共役因子と内因性とネイティブ相互作用を実証する使用できます。

Introduction

低酸素は、細胞や体の組織に十分な酸素が供給されてときに発生します。幹細胞の分化、炎症やがん1,2など様々 な生理学的および病理学的プロセスの重要な役割を果たします。低酸素症誘引可能な要因 (HIFs) は、酸素によって調節される α サブユニットと恒常発現 β サブユニットとして知られている ARNT3から成るヘテロとして機能します。HIF α サブユニット (HIF-1 α、HIF 2α、HIF 3 α) と 3 つの HIF β サブユニット (ARNT/HIF-1 β、ARNT2、ARNT3) の 3 つのアイソ フォームは、日付に確認されています。HIF 2α、HIF 3 α、ARNT2 および ARNT3 はより表現パターン4を制限されているに対し、HIF-1 α と ARNT は表現普遍的。HIF 1 タンパク質複合体は、低酸素応答のキーのレギュレータです。低酸素の条件の下で HIF-1 α 化が安定、核に移行し、ARNT5とされています。その後、この複合体は低酸素応答要素 (HREs) として知られている特定のヌクレオチドに結合し、血管新生、赤血球、解糖系の6を含む多様なプロセスに関与する標的遺伝子の発現を調節します。この「標準」の応答に加えて低酸素シグナル伝達経路も知られているクロストークにシグナル伝達経路のノッチと核因子 κ B (NF-κ B) など複数の細胞応答と7,8,9

小説 HIF 1 相互作用するタンパク質の同定は、低酸素シグナル伝達経路の理解にとって重要です。ARNT は、酸素濃度に鈍感と恒常発現と対照をなして HIF-1 α タンパク質レベルは細胞の酸素濃度によって堅く調整されます。常 (21% 酸素)、HIF-1 α タンパク質は急速に劣化した10,11。常に HIF-1 α の短い半減期は、HIF 1 α 相互作用するタンパク質の同定のためだけでなく、細胞抽出液からの蛋白質を検出するための特定の技術的な課題を提示します。さらに、HIF 1 複合体のそれらを含むいくつかの転写因子は、低酸素条件12,13,14下核に若し。PPI の研究のための現在の方法のほとんどは、非生理的な発現タンパク質を使用して実行されます。このような蛋白の過剰発現は、リソースの過負荷、化学量論的不均衡、無差別相互作用および経路変調15,16を含む複数のメカニズムを通して異なる携帯電話の不具合が発生する報告されています。PPI の研究面で蛋白過剰発現は偽肯定的、またはも偽陰性、タンパク質の特性と発現タンパク質の機能によって結果につながることができます。したがって、PPI の研究の現在の方法は、低酸素条件下での生理関連 PPIs を明らかにするために変更する必要。我々 は以前、HIF 1 と Ets ファミリー転写因子Hes1プロモーターの低酸素17レスポンスに貢献する低酸素の P19 細胞における GA 結合タンパク質 (GABP) との間の相互作用を実証しました。ここでは、低酸素条件下で内因性の核蛋白質間 PPIs を勉強する co 免疫沈降プロトコルについて述べる。HIF-1 α と ARNT の相互作用は、コンセプトの証明として表示されます。このプロトコルは転写因子と低酸素の条件の下で転写共役因子間の相互作用を示す適して、HIF 1 相互作用するタンパク質の同定に限定されません。

Protocol

人間の萌芽期の腎臓 293A を使用して、このプロトコル セクション (HEK293A) セル s ナンヤン工科大学、シンガポールの人間研究倫理委員会のガイドラインに従います。 1 HEK293A 細胞における低酸素誘導 4 つの 10 cm 皿とダルベッコ修飾イーグル培地 (DMEM、4.5 G/L グルコース) 2 mM L-グルタミン, 10% 牛胎児血清 (FBS) を添加した 10 mL の皿あたり 10 の6 HEK293A 電池 × 3-…

Representative Results

式低酸素細胞の応答を評価するためにレベルと HIF 1 複雑な次低酸素治療のコンポーネントの内局在を検討しました。4 h の低酸素の条件の下で培養の HEK293A セルまたはコントロールとして常に続けた。全細胞 HIF-1 α と ARNT のタンパク質レベルを調べたまたは西部のしみによって核/細胞質を抽出します。予想される、合計 HIF-1 α のレベル合計のセル lysates の ARNT レベ?…

Discussion

HIF 1 複合体細胞酸素恒常性のマスター調節因子は、低酸素に異なる細胞適応応答に関与する遺伝子の茄多を調節する.新規 HIF 1 相互作用するタンパク質の同定は、低酸素シグナル伝達機構を理解するために重要です。一般的に Co 免疫沈降実験 PPIs 研究細胞シグナル伝達経路の線引きされます。しかし、蛋白過剰発現はまだ広く使用されて、これは実験の成果物につながる可能性があります。?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我々 は低酸素ワークステーション用准教授罪ティオン ・ オングを感謝します。この作品は、次によって支えられた: シンガポールの教育省、南洋工科大学創業助成金 M4230003 (P.O.B.) に内科のビジネススクール、MOE2015-T2-2-087 (ワイ ・ エイ) に萌え 1T1-02/04 スウェーデン研究評議会、家族 – スウェーデンペーションアー財団、ノボ ノルディスク財団、スティヒティング af Jochnick 財団、スウェーデン糖尿病協会、スカンジア保険会社、糖尿病の研究、健康財団、バース ・ フォン ・ Kantzow、カロリンスカ研究所、アリス バレンベリー財団し ERC ERC 2013 AdG 338936-Betalmage、クヌートの糖尿病戦略研究プログラムです。

Materials

Material
1.0 M Tris-HCl Buffer, pH 7.4  1st BASE 1415
Protein A/G Sepharose beads Abcam ab193262
Natural Mouse IgG protein Abcam ab198772
EDTA Bio-Rad 1610729
2x Laemmli Sample Buffer Bio-Rad 1610737
2-Mercaptoethanol Bio-Rad 1610710
Nitrocellulose Membrane    Bio-Rad 1620112
Blotting-Grade Blocker Bio-Rad 1706404 Non-fat dry milk for western blotting applications
10x Tris Buffered Saline (TBS) Bio-Rad 1706435
10% Tween 20 Bio-Rad 1610781
10x Tris/Glycine/SDS Bio-Rad 1610732
10x Tris/Glycine Buffer  Bio-Rad 1610771
Precision Plus Protein Dual Color Standards Bio-Rad 1610374
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody Cell Signaling 7074
Anti-mouse IgG, HRP-linked Antibody  Cell Signaling 7076
SignalFire ECL Reagent Cell Signaling 6883
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline Corning 21-030-CV
Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) Merck Millipore 52332
ARNT/HIF-1 beta Antibody  Novus Biologicals NB100-124  Concentration: 1.4 mg/mL
HIF-1 alpha Antibody Novus Biologicals NB100-479 Concentration: 1.0 mg/mL
YY1 Antibody Novus Biologicals NBP1-46218 Concentration: 0.2 mg/mL
Qproteome Nuclear Protein Kit Qiagen 37582 Lysis buffer NL and Extraction Buffer NX1 are provied in the kit
GAPDH Antibody Santa Cruz sc-47724 Concentration: 0.2 mg/mL
Glycerol (≥99%) Sigma G5516
Potassium chloride Sigma P9541
RIPA buffer Sigma R0278
Sodium Chloride (NaCl) Sigma 71376
NP-40 Sigma 127087-87-0
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM, 4.5 g/L glucose) Thermo Fisher Scientific 11995065
Dithiothreitol (DTT) Thermo Fisher Scientific R0861
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 10270106
HEK293A cell line Thermo Fisher Scientific R70507
Methanol  Thermo Fisher Scientific 67-56-1
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122
Pierce Protease Inhibitor Tablets  Thermo Fisher Scientific 88660
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 23225
QSP gel loading tip  Thermo Fisher Scientific QSP#010-R204-Q-PK 1-200 uL
Equipment/Instrument
Thick Blot Filter Paper, Precut, 7.5 x 10 cm Bio-Rad 1703932
Mini-PROTEAN Tetra Vertical Electrophoresis Cell for Mini Precast Gels, with Mini Trans-Blot Module and PowerPac Basic Power Supply Bio-Rad 1658034
4–15% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels Bio-Rad 4561083
ChemiDoc XRS+ System Bio-Rad 1708265
I-Glove BioSpherix I-Glove
Synergy HTX Multi-Mode Microplate Reader  BioTek BTS1LFTA
Costar 5mL Stripette Serological Pipets Corning 4487
Costar 10mL Stripette Serological Pipets Corning 4488
Costar 25mL Stripette Serological Pipets Corning 4251
Corning 96-Well Clear Bottom Black Polystyrene Microplates Corning 3631
15mL High Clarity PP conical Centrifuge Tubes Corning 352095
Small Cell Scraper Corning 3010
Gilson Pipetman L 4-pipettes kit  Gilson F167370 P2, P20, P200, P1000 and accessories
1.5mL Polypropylene Microcentrifuge Tubes Greiner Bio-One  616201
PIPETBOY acu 2 Pipettor INTEGRA Biosciences 155 000 
Justrite Flammable Liquid Storage Cabinets Justrite Manufacturing Co. 896000
Vortex mixer Labnet S0200
CO2 incubator NuAire NU-5820
Orbital shakers Stuart SSL1
Tube rotator SB3 Stuart SB3
MicroCL 21R Microcentrifuge Thermo Fisher Scientific 75002470
Sorvall ST 16 Centrifuge Thermo Fisher Scientific 75004240
Tissue Culture Dishes (100 mm) Thermo Fisher Scientific 150350
Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Device Thermo Fisher Scientific 69580 10K MWCO, 0.1 mL
Float Buoys for 0.1mL Slide-A-Lyzer MINI Dialysis Devices Thermo Fisher Scientific 69588
LSE Digital Dry Bath Heaters Thermo Fisher Scientific 1168H25
Thermo Scientific 1300 Series A2 Class II, Type A2 Bio Safety Cabinets Thermo Fisher Scientific 13-261-308
Software
Image Lab Software Bio-Rad 1709691

Riferimenti

  1. Semenza, G. L. Hypoxia-inducible factors in physiology and medicine. Cell. 148 (3), 399-408 (2012).
  2. Bartels, K., Grenz, A., Eltzschig, H. K. Hypoxia and inflammation are two sides of the same coin. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (46), 18351-18352 (2013).
  3. Jiang, B. H., Rue, E., Wang, G. L., Roe, R., Semenza, G. L. Dimerization, DNA binding, and transactivation properties of hypoxia-inducible factor 1. J Biol Chem. 271 (30), 17771-17778 (1996).
  4. Semenza, G. L. HIF-1: mediator of physiological and pathophysiological responses to hypoxia. J Appl Physiol. 88 (4), 1474-1480 (2000).
  5. Kallio, P. J., et al. Signal transduction in hypoxic cells: Inducible nuclear translocation and recruitment of the CBP/p300 coactivator by the hypoxia-inducible factor-1alpha. EMBO J. 17 (22), 6573-6586 (1998).
  6. Ke, Q., Costa, M. Hypoxia-inducible factor-1 (HIF-1). Mol Pharmacol. 70 (5), 1469-1480 (2006).
  7. Gustafsson, M. V., et al. Hypoxia requires notch signaling to maintain the undifferentiated cell state. Dev Cell. 9 (5), 617-628 (2005).
  8. Zheng, X., et al. Interaction with factor inhibiting HIF-1 defines an additional mode of cross-coupling between the Notch and hypoxia signaling pathways. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (9), 3368-3373 (2008).
  9. D’Ignazio, L., Bandarra, D., Rocha, S. NF-kappaB and HIF crosstalk in immune responses. FEBS J. 283 (3), 413-424 (2016).
  10. Wang, G. L., Jiang, B. H., Rue, E. A., Semenza, G. L. Hypoxia-inducible factor 1 is a basic-helix-loop-helix-PAS heterodimer regulated by cellular O2 tension. Proc Natl Acad Sci U S A. 92 (12), 5510-5514 (1995).
  11. Zheng, X., et al. Cell-type-specific regulation of degradation of hypoxia-inducible factor 1 alpha: Role of subcellular compartmentalization. Mol Cell Biol. 26 (12), 4628-4641 (2006).
  12. Depping, R., et al. Nuclear translocation of hypoxia-inducible factors (HIFs): involvement of the classical importin alpha/beta pathway. Biochim Biophys Acta. 1783 (3), 394-404 (2008).
  13. Wei, H., et al. Hypoxia induces oncogene yes-associated protein 1 nuclear translocation to promote pancreatic ductal adenocarcinoma invasion via epithelial-mesenchymal transition. Tumour Biol. 39 (5), (2017).
  14. Chang, H. Y., et al. Hypoxia promotes nuclear translocation and transcriptional function in the oncogenic tyrosine kinase RON. Cancer Res. 74 (16), 4549-4562 (2014).
  15. Moriya, H. Quantitative nature of overexpression experiments. Mol Biol Cell. 26 (22), 3932-3939 (2015).
  16. Prelich, G. Gene overexpression: Uses, mechanisms, and interpretation. Genetica. 190 (3), 841-854 (2012).
  17. Zheng, X., et al. A Notch-independent mechanism contributes to the induction of Hes1 gene expression in response to hypoxia in P19 cells. Exp Cell Res. 358 (2), 129-139 (2017).
  18. Farris, M. H., Ford, K. A., Doyle, R. C. Qualitative and quantitative assays for detection and characterization of protein antimicrobials. J Vis Exp. (110), e53819 (2016).
  19. Chilov, D., et al. Induction and nuclear translocation of hypoxia-inducible factor-1 (HIF-1): heterodimerization with ARNT is not necessary for nuclear accumulation of HIF-1alpha. J Cell Sci. 112 (Pt 8), 1203-1212 (1999).
  20. Yin, S., et al. Arylsulfonamide KCN1 inhibits in vivo glioma growth and interferes with HIF signaling by disrupting HIF-1alpha interaction with cofactors p300/CBP. Clin Cancer Res. 18 (24), 6623-6633 (2012).
  21. Holmquist-Mengelbier, L., et al. Recruitment of HIF-1alpha and HIF-2alpha to common target genes is differentially regulated in neuroblastoma: HIF-2alpha promotes an aggressive phenotype. Cancer Cell. 10 (5), 413-423 (2006).
  22. Koh, M. Y., Powis, G. Passing the baton: The HIF switch. Trends Biochem Sci. 37 (9), 364-372 (2012).
  23. Dumetz, A. C., Snellinger-O’brien, A. M., Kaler, E. W., Lenhoff, A. M. Patterns of protein protein interactions in salt solutions and implications for protein crystallization. Protein Sci. 16 (9), 1867-1877 (2007).
  24. Graven, K. K., Troxler, R. F., Kornfeld, H., Panchenko, M. V., Farber, H. W. Regulation of endothelial cell glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase expression by hypoxia. J Biol Chem. 269 (39), 24446-24453 (1994).
  25. Caradec, J., et al. Desperate house genes’: The dramatic example of hypoxia. Br J Cancer. 102 (6), 1037-1043 (2010).

Play Video

Citazione di questo articolo
Zheng, X., Ho, C. Q. W., Zheng, X., Lee, K. L., Gradin, K., Pereira, T. S., Berggren, P., Ali, Y. Co-immunoprecipitation Assay Using Endogenous Nuclear Proteins from Cells Cultured Under Hypoxic Conditions. J. Vis. Exp. (138), e57836, doi:10.3791/57836 (2018).

View Video