Summary

Databas-guidad-flödescytometri för utvärdering av benmärgen myeloida Cell mognad

Published: November 03, 2018
doi:

Summary

MDS diagnosen är svår i avsaknad av morfologiska kriterier eller icke-informativa cytogenetik. MFC kunde bidra till att förfina den diagnostiska processen för MDS. För att bli användbart för klinisk praxis, MFC analysen måste baseras på parametrar med tillräcklig specificitet och känslighet, och data bör vara reproducerbar mellan olika operatörer.

Abstract

En arbetsgrupp som initierats inom franska flödescytometri Association (AFC) utvecklades för att harmonisera tillämpningen av multiparametrar flödescytometri (MFC) för myeloisk sjukdomsdiagnos i Frankrike. Det protokoll som presenteras här var överenskomna och tillämpad mellan September 2013 och November 2015 i sex franska diagnostiska laboratorier (universitetssjukhusen i Saint-Etienne, Grenoble, Clermont-Ferrand, Nice, och Lille och Institut Paoli-Calmettes i Marseille) och tillät en standardisering av benmärgen prov förberedelse och datainskaffning. Tre mognad databaser har utvecklats för neutrofiler, monocytic, och erytroid härstamningar med benmärg från ”friska” givare individer (individer utan bevis på en hematopoetisk sjukdom). En robust metod för analys av varje myeloisk härstamning bör tillämpas för rutinmässig diagnostisk användning. Nya fall kan analyseras på samma sätt och jämfört mot de vanliga databaserna. Således, kvantitativa och kvalitativa fenotypiska avvikelser kan identifieras och dessa ovanstående 2SD jämföras med data av normal benmärg prover övervägas vägledande av patologi. Den största begränsningen är det högre variabilitet mellan data som uppnås med de monoklonala antikroppar erhållits med de metoder utifrån Hybridomteknik tekniker och för närvarande används i klinisk diagnos. Ställer upp kriterier för teknisk validering av de uppgifter som erhållits kan bidra till att förbättra användbarheten av MFC för MDS diagnostik. Fastställandet av dessa kriterier kräver analys mot en databas. Minskningen av prövaren subjektivitet i analys av data är en viktig fördel med denna metod.

Introduction

I avsaknad av fenotypiska markörer specifika att de dysplastiska förändringar som sker i myeloida celler under MDS initiering och progression, har en ny strategi föreslagits under de senaste åren baserat på utvärderingen av den mognad vägar (förändrat uttryck av myeloisk antigener under produktionen av mogen myeloida celler) eller onormala fördelningen av olika celltyper i benmärgen (BM) cell fack1,2.

Denna artikel presenterar en ny metod för standardiserade tillämpningen av MFC för att upptäcka dysplastiska förändringar i BM myeloida cell fack relaterade till myelodysplastiska syndrom (MDS) eller annan myeloisk blodsjukdomar. Denna studie visar också verktyget att använda mognad databaser för MFC dataanalys.

Standardisering av provet arbetsgången, datainsamling och analys med hjälp av databaserna skulle möjliggöra identifiering av den mest relevanta fenotypiska avvikelser relaterade till dysplastiska förändringar i BM myeloida celler. Därför krävs statistiskt utvalda undergrupper baserat på väl märkta och välkänt format (automatisk befolkningen Separator (APS) diagram, histogram och dot tomter) för att utveckla en analys strategi som kan användas i efterföljande analys rundor. Upptäckten av robust fenotypiska avvikelser i MDS skulle underlätta diagnosen i fall med eller utan minimal morfologiska dysplasi och utan cytogenetiska aberrancies. Identifiering av diskriminerande parametrar möjliggör en minskning av immunophenotypic paneler kan förenkla den nuvarande noter2, tillåter deras tillämplighet i klinisk patologi laboratorier.

Den här metoden begränsar de subjektiva tolkningarna av flödescytometri data, som har varit signalerade i MDS diagnos3. Detta steg är en förutsättning för utveckling av automatiserade verktyg för bearbetning och analys av flöde data4.

MDS omfattar en heterogen grupp av klonala hematopoetiska stamceller (HSC) sjukdomar där de spliceosome mutationerna samarbeta med specifika epigenetiska modifierare att ge MDS fenotypen. Det är nu känt att, tillsammans med HSC mutationer, andra mekanismer är inblandade i MDS patofysiologi, som avvikande immunmedierad inflammation och interaktioner mellan maligna Förenta och den stromal mikromiljö av BM. Dessa mekanismer är dock fortfarande dåligt förstådd. MDS breda kliniska och biologiska heterogenitet gör diagnos och val av den optimala terapin en utmaning. Under det senaste decenniet har flera studier visat att MFC är ofta mer känsliga att upptäcka dysplasi2 än morfologi, men tekniska och ekonomiska begränsningar gör denna teknik svårt att standardisera, med resultat ofta beroende på den erfarenhet av tolk3. Dessutom är det oklart hur MFC kan rubba balansen mot MDS i fall med eller utan minimal morfologiska dysplasi och i avsaknad av cytogenetiska avvikelser eller i gränsfall såsom hypocellular MDS, med en låg blast räkna, från andra icke-klonal BM störningar såsom benmärgssvikt (dvs., aplastisk anemi). Det är också fortfarande svårt att skilja gränsfall av MDS med ett överskott av Blaster från akut myeloisk leukemi (AML). Av alla dessa skäl integrerar de kliniska riktlinjerna inte MFC testning i den slutliga diagnosen MDS. I 2011 rekommenderade den amerikanska nationella omfattande Cancer Network (NCCN) MFC för uppskattning av andelen CD34 + celler, upptäckt av paroxysmal nattlig hemoglobinuri kloner, och förekomsten av cytotoxiska T-celler kloner i hypocellular MDS5. Dessa två sistnämnda situationer också innebära ett terapeutiskt mål eftersom kliniska data har visat ett bra svar av dessa patienter på immunsuppressiv behandling6. 2017 NCCN riktlinjerna, med hänvisning till internationella arbetar gruppen (IWG) rekommendationer, listade avvikande immunophenotyping upptäckt av MFC bland Co kriterierna för MDS diagnos, men utan att göra någon specifikationer6. Den nyligen publicerade WHO-klassifikationen stadgar dessutom att MFC resultaten enbart inte är tillräckligt för att fastställa en primärdiagnos på MDS i avsaknad av avgörande morfologiska och/eller cytogenetiska uppgifter7. MFC kan dock användas som en ytterligare test visar dysreglering av myeloida cell mognad mönster och kvantifiera ”avståndet från normala” för en patient vid en viss tidpunkt i sjukdomsförloppet.

Denna metod är tillämplig på kliniska laboratorier intresserade av utvärderingen av dysplasi i BM myeloida celler med MFC immunophenotyping, för att förfina diagnosen MDS eller andra myeloiska sjukdomar med dysplastiska avvikelser.

Protocol

Protokollet som anges nedan har godkänts av den ”Comité de Protection des Personnes” (oberoende etisk kommitté) Sud-Est 1 från universitet sjukhus av Saint-Etienne, Frankrike. 1. Cytometer inställningar Obs: Cytometer inställningarna utfördes enligt Frankrike Flow rekommendationer, i enlighet med EuroFlow förfarande ”EuroFlow Standard Operating Protocol (SOP) för instrumentet Setup och ersättning (https://www.euroflow.org/usr/pub/protocols.php). <o…

Representative Results

De 54 BM prover som skördats i K-EDTA antikoagulans inkluderades i studien. MFC data analyserades i avsaknad av någon information om patienterna. Retrospektiv studie visade att BM proverna var från 7 friska donatorer (5 hanar och 2 honor med en medianålder av 47,4 [35-48], 11 individer utan tecken på en hematopoetisk sjukdom (8 hanar och 3 honor med en medianålder av 57,9 [35-72]) och 36 fall med olika sjukdomstillstånd: 1 fall med anemi och lågt kreatinin nivå, 3 fall med anemi…

Discussion

Kvaliteten på BM aspirera skulle kunna inverka på de slutliga resultaten. Hemodilution av den BM aspirera snedvrida fördelning av celler i olika stadier av mognad på grund av avsaknad av föräldraparets eller prekursorer celler. Förmodligen anställa en bulk lyseringslösning metod kan hjälpa normalisering av BM enkelarmade för hemodilution i flödescytometrisk flödesanalyser. Dessutom är de kritiska steg för utvärdering av BM myeloisk dysplasi av flödescytometri prov beredning och färgning, datainsamling o…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De antikroppar som används i denna studie gavs av BD Biosciences. Författarna vill tacka sin kollega, Dr Pascale Flandrin-Gresta, från Institutionen för molekylärbiologi, hematologi laboratorium, University Hospital i Saint-Etienne, Frankrike, som lämnat kompetens för tolkning av NGS data för andra MDS-fall. Författarna är tacksamma för de klinikern hematologer för deras intresse och engagemang i denna studie och för patienter och friska donatorer för deras avtal att delta i denna studie. Författarna vill även tacka stiftelsen ”Les Amis de Rémi” finansiellt stöd för publikation.

Materials

BD FACSCanto II flow-cytometer BD Biosciences, CA, USA SN: V33896301336 3-laser, 4-2-2 configuration, Filters and mirrors details: https://www.bdbiosciences.com/documents/BD_FACSCanto_II_FilterGuide.pdf
Awel C48-R Centrifuge AWEL Industries, FR SN: 910120016; Model No: 320002001 low speed centrifuges; capacity 60 FACS tubes
Pipetts of 10µl and 200µl
Pasteur pipettes
15 mL Falcon tubes
polypropylene tube for FACS
Mouse Anti-Human HLA-DR BD Biosciences, CA, USA 655874 clone L243
Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome Horizon V450
(Ex max 404 nm/
Em max 448 nm)
Mouse Anti-Human CD45 BD Biosciences, CA, USA 560777 clone HI30
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome Horizon V500 (Ex max 415 nm/
Em max 500 nm)
Mouse Anti-Human CD16 BD Biosciences, CA, USA 656146 clone CLB/fcGran1 Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD13 BD Biosciences, CA, USA 347406 clone L138
Mouse BALB/c X C57BL/6 IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD34 BD Biosciences, CA, USA 347222 clone 8G12
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PerCP-Cy5.5
(Ex max 482 nm/
Em max 678 nm)
Mouse Anti-Human CD117 BD Biosciences, CA, USA 339217 clone 104D2
Mouse BALB/c IgG1
Fluorochrome PE-Cy7
(Ex max 496 nm/
Em max 785 nm)
Mouse Anti-Human CD11b BD Biosciences, CA, USA 333143 clone D12
Mouse BALB/c IgG2a, κ
D12, Fluorochrome APC
(Ex max 650 nm/
Em max 660nm
Mouse Anti-Human CD10 BD Biosciences, CA, USA 646783 clone HI10A
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Mouse Anti-Human CD35 BD Biosciences, CA, USA 555452 clone E11
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD64 BD Biosciences, CA, USA 644385 clone 10.1
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD300e Immunostep IREM2A-T100 clone UP-H2
Mouse BALB/c IgG1, k
Fluorochrome APC
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD14 BD Biosciences, CA, USA 641394 clone MoP9
Mouse BALB/c IgG2b, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Mouse Anti-Human CD36 BD Biosciences, CA, USA 656151 clone CLB-IVC7
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD105 BD Biosciences, CA, USA 560839 clone 266
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD33 345800 clone P67.6
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome APC
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD71 BD Biosciences, CA, USA 655408 clone M-A712
Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Lysing Solution 10X Concentrate (IVD) BD Biosciences, CA, USA 349202
FACSFlow Sheath Fluid BD Biosciences, CA, USA 342003
FACSDiva CS&T IVD beads BD Biosciences, CA, USA 656046
RAINBOW CALIBRATION PARTICLES, 8 PEAKS Cytognos, Salamanca, Spain SPH-RCP-30-5A lots EAB01, EAC01, EAD05, EAE01, EAF01, EAG01, EAH01, EAI01, EAJ01, EAK01
Compensation Particles Multicolor CompBeads(CE/IVD) BD Biosciences, CA, USA ref. #51-90-9001229 + #51-90-9001291
Diva software versions 6.1.2 and 6.1.3 BD Biosciences, CA, USA
Phosphate buffered saline tablets R&D Systems, Minneapolis, USA 5564
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich, France A9647
Sodium azide 99% Sigma-Aldrich, France 199931
Infinicyt software version 1.8.0.e Cytognos, Salamanca, Spain

Riferimenti

  1. Orfao, A., Ortuño, F., de Santiago, M., Lopez, A., San Miguel, J. Immunophenotyping of Acute Leukemias and Myelodysplastic Syndromes. Cytometry Part A. 58, 62-71 (2004).
  2. Porwit, A., et al. Revisiting guidelines for integration of flow cytometry results in the WHO classification of Myelodysplastic Syndromes – proposal from the International/European LeukemiaNet Working Group for Flow Cytometry in MDS (IMDSFlow). Leukemia. 28 (9), 1793-1798 (2014).
  3. Westers, M. T., et al. Implementation of flow cytometry in the diagnostic work-up of myelodysplastic syndromes in a multicenter approach: Report from the Dutch Working Party on Flow Cytometry in MDS. Leukemia Research. 36, 422-430 (2012).
  4. Meehan, S., et al. AutoGate: automating analysis of flow cytometry data. Immunologic Research. 58, 218-223 (2014).
  5. Greenberg, P. L., et al. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology: myelodysplastic syndromes. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 9, 30-56 (2011).
  6. Greenberg, P. L., et al. Myelodysplastic Syndromes, Version 2.2017, Clinical Practice Guidelines in Oncology. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 15, (2017).
  7. Swerdlow, S. H., et al. . WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues. Revised 4th Edition. (2), 86-128 (2017).
  8. . https://lists.purdue.edu/pipermail/cytometry/2009-March/036889.html Available from: https://lists.purdue.edu/pipermail/cytometry/2009-March/036889.html (2018)
  9. . . Composition of EuroFlow panels and technical information on reagents Version 1.5. , (2017).
  10. . . EuroFlow Standard Operating Procedure (SOP) for sample preparation and staining Version 1.2.1. , (2015).
  11. Kalina, T., et al. EuroFlow standardization of flow cytometer instrument settings and immunophenotyping protocols. Leukemia. 26, 1986-2010 (2012).
  12. van Dongen, J. J. M., et al. EuroFlow antibody panels for standardized n-dimensional flow cytometric immunophenotyping of normal, reactive and malignant leukocytes. Leukemia. 26, 1908-1975 (2012).
  13. Matarraz, S. Introduction to the Diagnosis and Classification of Monocytic-Lineage Leukemias by Flow Cytometry. Cytometry Part B (Clinical Cytometry). 92 (3), 218-227 (2015).
  14. Westers, M. T. Immunophenotypic analysis of erythroid dysplasia in myelodysplastic syndromes. A report from the IMDSFlow working group). Haematologica. 102, 308-319 (2017).
  15. Shen, Q., et al. Flow cytometry immunophenotypic findings in chronic myelomonocytic leukemia and its utility in monitoring treatment response. European Journal of Haematology. 95, 168-176 (2015).
check_url/it/57867?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Aanei, C. M., Jacob, M., Veyrat-Masson, R., Picot, T., Rosenthal-Allieri, M. A., Lhoumeau, A., Ticchioni, M., Dumezy, F., Campos Catafal, L. Database-guided Flow-cytometry for Evaluation of Bone Marrow Myeloid Cell Maturation. J. Vis. Exp. (141), e57867, doi:10.3791/57867 (2018).

View Video