Summary

Ferrichloridopløsning-induceret Canine carotis arterie trombose: En stor dyr Model af vaskulære skade

Published: September 07, 2018
doi:

Summary

Vi præsenterer her, de ændringer, der er nødvendige til en vel karakteriseret og almindeligt anvendte små ferrichloridopløsning-induceret (FeCl3) halspulsåren skade dyremodel til brug i en stor animalsk vaskulære skade model. Den resulterende model kan udnyttes til prækliniske forsøg vurdering af både forebyggende og trombolytisk farmakologiske og mekaniske interventioner.

Abstract

Okklusiv arteriel trombose fører til cerebral iskæmisk slagtilfælde og myokardieinfarkt bidrager til ~ 13 millioner dødsfald hvert år globalt. Her, har vi oversat vaskulære skade model fra en lille dyr i et stort dyr (hunde), med mindre ændringer, der kan bruges til præklinisk screening af profylaktisk og trombolytisk agenter. Udover de kirurgiske metoder beskriver den ændrede protokol de trinvise metoder til at vurdere halspulsåren kanalisering af angiografi, detaljerede instruktioner til at behandle både hjernen og halspulsåren for histologiske analyse at kontrollere carotis kanalisering og hjerneblødning og specifikke parametre til at gennemføre en vurdering af downstream thromboemboliske hændelser ved at udnytte magnetisk resonans imaging (MR). Derudover behandles bestemte proceduremæssige ændringer fra den tidligere veletableret lille dyr model nødvendigt at oversætte til en stor dyr (hunde) vaskulære skade.

Introduction

Slagtilfælde terapi er i vid udstrækning modelleret efter koronararterie sygdom behandling, hovedsagelig fordi interventioner i hjerte-kar-sygdom har reageret godt på medicin terapi og endovaskulære indgreb1. Disse behandlinger, men oversat ikke korrekt til cerebral infarkt. Vanskeligheder med den nuværende slagtilfælde behandling er at den rekombinante væv plasminogen aktivator (rTPA) ikke kan vendes, og at administrationen indebærer en betydelig 6,4% risiko for hæmoragisk konvertering2,3, 4. den resulterende sygelighed og dødelighed begrænser dets anvendelse til en lille, ofte uopnåeligt vindue5. Også, restenose og okklusion opstår ofte efter indledende trombolyse, tilbageføre oprindelige neurologiske forbedring. I sammendrag er der en smal tidsmæssige vindue til at administrere rTPA, der udelukker det store flertal (~ 90%) af patienter, der lider iskæmisk cerebrovaskulær fornærmelser.

Rollen som intravenøs antitrombotiske behandling har vist lovende i behandling af iskæmisk slagtilfælde med forbedret fartøj recanalization, overlevelse og resultatet2. Desværre, disse stoffer har en forudsigelig bivirkning af intra kraniel og ekstra kraniel blødning, hovedsagelig fordi der er ingen måde at tilstrækkeligt vende eller styre deres aktivitet2. Mens effektiv i forebyggelsen af trombocytaggregation, risikoen for blødning og manglende evne til at vende deres aktivitet har udelukket anvendelsen heraf i rutinemæssige pleje af apopleksi patienter. Behov, findes derfor for potent antitrombotisk narkotika, der fungerer alene eller i kombinationer for at forhindre og lyse blodpropper endnu har en sikkerhedsprofil, der giver mulighed for brug i en lukket, lav volumen plads som hjernen, hvor blødning er dårligt tolereret.

Forstå mekanisme af arteriel trombose og re-stenose, og evaluering af trombolytika og stoffer, der forhindrer re-stenose, kræver både små og store dyr modeller som en del af prækliniske stof udvikling. Ferrichloridopløsning-induceret vaskulære skade er en bredt udnyttede teknik til hurtigt og præcist inducere dannelse af trombi i udsatte blodkar af mus, rotter, marsvin, og kaniner6,7,8, 9 , 10 , 11 , 12. disse mindre arter tilbyder flere fordele, herunder brugervenlighed genmanipulation, billig animalske køb og lav dagpenge boligudgifter. Desværre, små dyreforsøg negere flere blod trækker under operationen til adgang trombocyt reaktivitet, blod gas analyse og inflammatorisk respons. Endnu vigtigere, efterligne store dyr langt mere nøje menneskelige trombocyt fysiologi6,13. FeCl3 halspulsåren skade model har spillet en fremtrædende rolle i studiet af Patofysiologi af trombose, validering af roman anti-trombocyttal og antikoagulerende medicin og opdagelsen af potentielle Trombolytika6 , 7 , 8 , 9 , 10 , 11 , 12. forrige modeller i mus, rotter, marsvin, og kaniner har givet lethed og fleksibilitet for genmanipulation, men oversætbare prækliniske modeller er afgørende for patient dosering og toksikologiske studier af potentielle therapeutics6 ,13. Selv om flere modeller af trombotiske lidelser er blevet udviklet i mus, store dyremodeller for trombose, der gælder for den Perifer vaskulær sygdom, er slagtilfælde og myokardieinfarkt få og langt. De første trombose modeller i aber, hunde og svin fokuseret på stenose, anvendelsen af hemostats og senere cylindre til fartøjer, ofte resulterer i cykliske flow reduktioner14,15,16. I stedet for en okklusiv blodprop i stedet for i endothelial skader som ferrichloridopløsning model, blodprop i disse modeller resulterede i cykliske trombose, distal embolisering og vende tilbage til normal blodgennemstrømning. I sammenligning, er ferrichloridopløsning model ændret her i et stort dyr, resulterer i en okklusiv blodprop på skaden site og stabiliseret og verificeret af angiografi før trombolytisk behandling. Forudsat at investigator har rigelig midler for per diem og køb af hjørnetænder og passende kirurgisk ekspertise, vi detalje her en stor canine model af vaskulære skade at tillade laboratorier til at studere trombose udnytter kirurgisk, billedbehandling og histologiske teknikker.

Protocol

De undersøgelser, der er beskrevet i overensstemmelse med retningslinjerne for pleje og anvendelse af forsøgsdyr af National Institutes of Health og blev godkendt af Ohio State University institutionelle Animal Care og brug Udvalget (#2015A00000029). Alle kirurgiske manipulationer blev udført under dyb anæstesi og dyrene oplever ikke smerte på noget tidspunkt under proceduren. Alle forsøg beskrives var manglende inddrivelse. 1. forberedelse Frisk forberede 50 mL ferrichloridopl…

Representative Results

Efter de detaljerede procedurer heri vil resultere i udviklingen af en model, der kan bruges til profylaktisk eller trombolytisk vurdering af okklusiv arteriel interventioner. Figur 1A viser baseline strømningshastighed og den resulterende blod flow hastighed før, under og efter behandling, registreres af en kommerciel software. Data fra denne optagelse kan bruges til at bestemme procentdelen af re perfusion med halspulsåren skade og behandling i denne can…

Discussion

FeCl3 induceret vaskulære skade model er almindeligt anvendt til at studere trombose i små dyr og er let at oversætte til et stort dyr, prækliniske model med et væld af fordele. Mindre ændringer at tilpasse protokollen til en canine tillade udnyttelse af begge magnetisk resonans at vurdere slagtilfælde og blødning mængder efter en farmakologisk intervention og angiografi til at vurdere fartøj kanalbygning før, under, og efter behandling. Andre trombotiske store dyremodeller har ikke studeret stabili…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke centeret for kognitive og adfærdsmæssige Brain Imaging ved The Ohio State University for deres finansielle og videnskabelig støtte til at udvikle og udføre canine magnetisk resonans.

Materials

1/8” umbilical tape  Jorgensen Laboratories Inc.,  #J0025UA  for ferric chloride application
4% paraformaldehyde in PBS Alfa Aesar AAJ61899AP
10% neutral buffered formalin  Richard-Allan Scientific 5701
 2% 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC in PBS, pH 7.4)  Sigma Aldrich T8877
ADP/Collagen cartridges Siemens Diagnostics B417021A
4.5 ml 3.2% sodium citrate blood vacutainer  Becton Dickinson BD 369714
4.5 ml lithium heparin vacutainer  Becton Dickinson BD 368056
EDTA K3 vacutainers  Becton Dickinson BD455036
Doppler flow probe Transonic Systems Inc MA2.5PSL
Hematoxylin 560  Surgipath 3801570
Eosin Surgipath 3801602
LabChart Software ADInstruments Inc.
Prisma Fit 3 tesla (3T) magnet Siemen's Diagnostics
Sodium heparin for injection (to coat blood gas syringe) NovaPlus 402525D
HUG-U-VAC positioning system   DRE Veterinary 1320

Riferimenti

  1. Adams, H. P. Stroke: a vascular pathology with inadequate management. Journal of Hypertension Supplement. 21 (5), S3-S7 (2003).
  2. Lansberg, M. G., Bluhmki, E., Thijs, V. N. Efficacy and safety of tissue plasminogen activator 3 to 4.5 hours after acute ischemic stroke: a metaanalysis. Stroke. 40 (7), 2438-2441 (2009).
  3. Nagel, S., et al. Therapy of acute basilar artery occlusion: intraarterial thrombolysis alone vs bridging therapy. Stroke. 40 (1), 140-146 (2009).
  4. Ciccone, A., Motto, C., Abraha, I., Cozzolino, F., Santilli, I. Glycoprotein IIb-IIIa inhibitors for acute ischaemic stroke. The Cochrane database of systematic reviews. 3 (3), (2014).
  5. The National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue Plasminogen Activator for Acute Ischemic Stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1588 (1995).
  6. Leadley, R., Chia, L., Rebellob, S., Gagnon, A. Contribution of in vivo models of thrombosis to the discovery and development of novel antithrombotic agents. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 43 (2), 101-116 (2000).
  7. Bodary, P. F., Eitzman, D. T. Animal Models of Thrombosis. Current Opinion In Hematology. 16 (5), 342-346 (2009).
  8. Sachs, U. J. H., Nieswandt, B. In vivo thrombus formation in murine models. Circulation Research. 100 (7), 979-991 (2007).
  9. Bonnard, T., Hagemeyer, C. E. Ferric Chloride-induced Thrombosis Mouse Model on Carotid Artery and Mesentery Vessel. Journal of Visualized Experiments. (100), e52838 (2015).
  10. Kurz, K. D., Main, B. W., Sandusky, G. E. Rat model of arterial thrombosis induced by ferric chloride. Thrombosis Research. 60 (4), 269-280 (1990).
  11. Karatas, H., Erdener, S. E., et al. Thrombotic distal middle cerebral artery occlusion produced by topical FeCl(3) application: a novel model suitable for intravital microscopy and thrombolysis studies. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 31 (6), 1452-1460 (2011).
  12. Li, W., McIntyre, T. M., Silverstein, R. L. Ferric chloride-induced murine carotid arterial injury: A model of redox pathology. Redox Biology. 1 (1), 50-55 (2013).
  13. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and Thrombosis: Insights from Large Animal Models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 1-12 (2011).
  14. Coller, B. S., Folts, J. D., Smith, S. R., Scudder, L. E., Jordan, R. Abolition of in vivo Platelet Thrombus Formation in Primates with Monoclonal Antibodies to the Platelet GPIIb/IIIa Receptor. Correlation with Bleeding Time, Platelet Aggregation, and Blockade of GPIIb/IIIa Receptors. Circulation. 80 (6), 1766-1774 (1989).
  15. Folts, J. An in vivo Model of Experimental Arterial Stenosis, Intimal Damage, and Periodic Thrombosis. Circulation. 83 (6 Suppl), (1991).
  16. Yasuda, T., et al. A canine model of coronary artery thrombosis with superimposed high grade stenosis for the investigation of rethrombosis after thrombolysis. Journal of the American College of Cardiology. 13 (6), 1409-1414 (1989).
  17. Schob, S., et al. Correlation Between Aquaporin 4 Expression and Different DWI Parameters in Grade I Meningioma. Molecular Imaging and Biology : MIB : the Official Publication of the Academy of Molecular Imaging. 19 (1), 138-142 (2017).
  18. Schob, S., et al. Diffusion-Weighted Imaging Using a Readout-Segmented, Multishot EPI Sequence at 3 T Distinguishes between Morphologically Differentiated and Undifferentiated Subtypes of Thyroid Carcinoma-A Preliminary Study. Translational Oncology. 9 (5), 403-410 (2016).
  19. Schob, S., et al. Diffusion-Weighted MRI Reflects Proliferative Activity in Primary CNS Lymphoma. Public Library of Science One. 11 (8), e0161386 (2016).
check_url/it/57981?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Huttinger, A. L., Wheeler, D. G., Gnyawali, S., Dornbos III, D., Layzer, J. M., Venetos, N., Talentino, S., Musgrave, N. J., Jones, C., Bratton, C., Joseph, M. E., Sen, C., Sullenger, B. A., Nimjee, S. M. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. J. Vis. Exp. (139), e57981, doi:10.3791/57981 (2018).

View Video