ראשנים של צפרדע רפואית להציע פלטפורמה ייחודית לחקור את תפקוד מערכת העצבים ויוו. אנו מתארים מתודולוגיות להערכה של עיבוד מידע חוש הריח חי צפרדע רפואית הזחלים בתנאים נורמליים לגידול או לאחר פגיעה.
ראשנים של צפרדע רפואית להציע פלטפורמה ייחודית לחקור את תפקוד מערכת העצבים. הם מספקים יתרונות ניסיוני מרובים, כגון נגישות רבות הדמיה גישות, שיטות אלקטרופיזיולוגיות של מבחני התנהגות. מערכת הריח של ראשן צפרדע רפואית מתאימה במיוחד כדי לחקור את הפונקציה של הסינפסות הוקמה במהלך התפתחות נורמלית או רפורמה לאחר פציעה. כאן, אנו מתארים מתודולוגיות להערכה של עיבוד מידע חוש הריח חי צפרדע רפואית הזחלים. אנחנו חלוקה לרמות בשילוב של מדידות ויוו של סידן presynaptic תגובות ב glomeruli של הנורה הריח עם מבחני התנהגות מונחות על חוש הריח. ניתן לשלב שיטות חיתוך של הריח עצבים לומד הטיפולי של קישוריות סינפטית. ניסויים מוצגים באמצעות בעלי חיים פראי-סוג והן מהונדס גנטית, המבטאת GFP כתבים תאי מערכת העצבים המרכזית. יישום גישות תיאר ראשנים מהונדסים יכול להיות שימושי עבור להתיר היסודות המולקולריים המגדירים את התנהגות חוליות.
צפרדע רפואית ראשנים מהווים מודל חיה מצוינת ללמוד על תפקוד תקין של מערכת העצבים. שקיפות, הגנום במלואו ברצף1,2וכן נגישות כירורגי, אלקטרופיזיולוגיות טכניקות הדמיה הם מאפיינים ייחודיים של הזחלים צפרדע רפואית לאפשר חקירת עצביים פונקציות ויוו3 . חלק מהאפשרויות ניסיוני מרובים של מודל זה בעל חיים מומחשים על ידי מחקרים יסודיים מתבצע על ראשן ורפלקסי מערכות4,5,6. מעגל עצביים במיוחד מתאים היטב ללמוד היבטים רבים של מידע עיבוד ברמה של הסינפסות היא מערכת הריח ראשן צפרדע רפואית 7. ראשית, קישוריות סינפטית שלה היא מוגדרת היטב: קולטני ריח נוירונים (ORNs) פרוייקט הנורה הריח ולבסס קשרים סינפטיים עם דנדריטים של המסתם הדו-צניפי/מצויץ תאים בתוך glomeruli ליצירת מפות ריח. שנית, ORNs שלה ברציפות מופקים על ידי נוירוג’נסיס לאורך החיים כדי לשמור את הפונקציונליות של מסלולים חוש הריח8. שלישית, כי מערכת הריח מראה יכולת ההתחדשות הגדול, ראשנים של צפרדע רפואית הם מסוגלים לחלוטין רפורמה הנורה הריח שלהם אחרי אבלציה9.
בנייר זה, אנו מתארים גישות לשלב הדמיה של חוש הריח glomeruli ב ראשנים חיים עם ניסויים התנהגותיים ללמוד את הפונקציונליות של מסלולים חוש הריח. השיטות שתוארו כאן שימשו כדי ללמוד התאוששות פונקציונליות של קישוריות glomerular בהנורה הריח אחרי חיתוך עצב הריח10. נתונים שהושגו ב ראשנים של צפרדע רפואית הם נציג של חולייתנים מאז עיבוד חוש הריח הוא אבולוציוני והתפאורה.
בשיטות המתוארות הן ביטוי באמצעות X. tropicalis , אבל הם בקלות ניתן ליישם ב- X. זריזה. למרות גודל גדול יותר מבוגר X. laevis, שני המינים דומים בשלבים ראשן. ההבדלים העיקריים לשכון באותה רמת גנומית. X. laevis מציג ללקוחות שלנו גנטי המסכן, נקבע בעיקר על ידי הגנום allotetraploid שלה ואת משך זמן דור (כ- 1 שנה). לעומת זאת, X. tropicalis הוא נוטה יותר שינויים גנטיים בשל זמן דור קצר (5-8 חודשים) שלה הגנום דיפלואידי. הניסויים נציג מומחשים חיות פראי-סוג, שלושה קווים הטרנסגניים שונים: Hb9:GFP (X. tropicalis), NBT:GFP (X. tropicalis), tubb2:GFP (X. laevis).
למתודולוגיות המתוארים העבודה הנוכחית להתייחס לצד התקדמות גנטי בתחום צפרדע רפואית . הפשטות ואת יישום קל של טכניקות הציג הופך אותם שימושי במיוחד להערכת מוטציות שתואר כבר11, כמו גם קווי צפרדע רפואית שנוצרו על-ידי טכנולוגיית CRISPR-Cas912. אנו מתארים גם הליך כירורגי נהגה transect עצבי הריח זה יכול להיות מיושם במעבדה כל גישה ראשנים של צפרדע רפואית . הגישות המשמש להערכת תגובות סידן presynaptic, התנהגות מונחות על חוש הריח דורשת ציוד ספציפי, אמנם לרשותכם קו מתון עלתה. מתודולוגיות מוצגים בצורה פשוטה על מנת לקדם את השימוש בקבוצות מחקר, אפשר להגדיר הבסיסים של מבחני מורכב יותר או על-ידי הטמעת שיפורים או על ידי האגודה טכניקות אחרות, קרי, היסטולוגית או מחלה גנטית גישות.
מאמר זה מתאר טכניקות שימושיות לחקור את הפונקציונליות של חוש הריח מסלולים חי ראשנים של צפרדע רפואית . בפרוטוקול הנוכחי שימושי במיוחד עבור מעבדות האלה לעבוד, או גישה צפרדע רפואית; עם זאת, זה גם מעניין עבור אלה החוקרים ללמוד הבסיסים תאית ומולקולרית של התחדשות עצביים ותיקון. התוצאות …
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי מענקים y El Ministerio de Economía Competitividad (MINECO; SAF2015-63568-R) cofunded על ידי אירופה אזורי פיתוח קרן (ERDF), על ידי פרסי מחקר תחרותיים מן האחווה מ ג פ Fuortes ממוריאל, סטיבן. וו קופלר במלגת הקרן, לורה ו ארתור Colwin ניחן הקיץ מלגת קרן מחקרים , המשפחה Fischbach, קרן דור גדול של מעבדה ביולוגית ימית, את נבחרת צפרדע רפואית משאבים RRID:SCR_013731 (חור ביער, MA) שבו נערך חלק של עבודה זו. אנו מודים גם תוכנית סרקא / Generalitat דה קטלוניה לתמיכה מוסדית. א. ל הוא עמית Húnter סרה.
Salts for aquariums (Instant Ocean Salt) | Tecniplast | XPSIO25R | |
Tricaine (Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate) | Sigma-Aldrich | E10521 | |
Tweezers #5 (tip 0.025 x 0.005 mm) | World Precision Instruments | 501985 | |
Vannas Scissors (tip 0.015 x 0.015) | World Precision Instruments | 501778 | |
Whatman qualitative filter paper | Fisher Scientific | WH3030917 | |
X. laevis tubb2-GFP | National Xenopus Resource (NXR), RRID:SCR_013731 | NXR_0.0035 | |
X.tropicalis NBT-GFP | European Xenopus Resource Center (EXRC) RRID:SCR_007164 | ||
CellTracker CM-DiI | ThermoFisher Scientific | C-7001 | |
Calcium Green dextran, Potassium Salt, 10,000 MW, Anionic | ThermoFisher Scientific | C-3713 | |
Borosilicate capillaries for microinjection | Sutter Instrument | B100-75-10 | O.D.=1.0 mm., I.D.=0.75 mm. |
Puller | Sutter Instrument | P-97 | |
Microinjector | Parker Instruments | Picospritzer III | |
Sylgard-184 | Sigma-Aldrich | 761028-5EA | |
Microfil micropipettes | World Precision Instruments | MF28G-5 | |
Upright microscope | Zeiss | AxioImager-A1 | |
Master-8 stimulator | A.M.P.I. | ||
CCD Camera | Hamamatsu | Image EM | |
Solenoid valves | Warner Instruments | VC-6 Six Channel system | |
Dow Corning High Vacuum Grease | VWR Scientific | 636082B | |
Tubocurarine hydrochloride | Sigma-Aldrich | T2379 | |
CCD Camera | Zeiss | MRC-5 Camera | Controlled by Zen software |
camera lens | Thorlabs | MVL8ML3 | There are multiple possibilities that should be adapted to the camera model used |
Epoxy resin | RS Components | ||
Manifold | Warner Instruments | MP-6 perfusion manifold | |
Micromanipulator for local delivery of solutions | Narishige | MN-153 | |
Mini magnetic clamps | Warner Instruments | MAG-7, MAG-6 | |
Polyethylene tubing | Warner Instruments | 64-0755 | O.D.=1.57 mm., I.D.=1.14 mm. |