Summary

Transcranial Direct Current stimulering (TDC) hos möss

Published: September 23, 2018
doi:

Summary

Transkraniell likström stimulering (TDC) är en terapeutisk teknik föreslås att behandling av psykiska sjukdomar. En djurmodell är viktigt för att förstå de specifika biologiska förändringar som frammanade av TDC. Det här protokollet beskriver en modell av TDC-mus som använder en kroniskt inopererade elektroden.

Abstract

Transkraniell likström stimulering (TDC) är en icke-invasiv neuromodulation teknik föreslås som ett alternativ eller kompletterande behandling av flera neuropsykiatriska sjukdomar. De biologiska effekterna av TDC är inte helt klarlagda, vilket delvis förklaras på grund av svårigheten att erhålla mänsklig hjärnvävnad. Det här protokollet beskriver en modell av TDC-mus som använder en kroniskt inopererade elektroden så att studiet av de långvariga biologiska effekterna av TDC. I denna experimentella modell, TDC ändras det kortikala genuttrycket och erbjuder en framstående bidrag till förståelsen av den logiska grunden för dess terapeutiska användning.

Introduction

Transcranial Direct Current stimulering (TDC) är en icke-invasiv, låg kostnad, terapeutisk teknik, som fokuserar på neuronal modulering med hjälp av låg intensitet kontinuerliga strömmar1. För närvarande finns det två uppställningar (anodal och katodal) för TDC. Medan anodal stimulering utövar en nuvarande elektriska fältet för svag för att utlösa handlingspänningar, har elektrofysiologi studier visat att denna metod ger förändringar i synaptisk plasticitet2. Bevis visar exempelvis att TDC inducerar långsiktig potentiering (LTP) effekter såsom ökad maximal amplitud av excitatoriska postsynaptiska potentialer3,4 och modulering av kortikala upphetsning5.

Omvänt inducerar katodal stimulering hämning, vilket resulterar i membran hyperpolarisering6. En hypotes för denna mekanism är baserad på de fysiologiska rön där TDC beskrivs för att modulera aktionspotential frekvens och varaktighet i neuronala kropp3. Framför allt, denna effekt inte direkt framkalla handlingspänningar, men det kan skifta tröskeln depolarisation och underlätta eller hindra neuronala bränning7. Dessa kontrasterande effekter har visats tidigare. Till exempel produceras anodal och katodal stimulering motsatta effekter i konditionerat svar registrerats via Elektromyografi aktivitet i kaniner8. Studier har emellertid också visat att långvarig anodal stimulering sessioner kan minskar retbarhet och öka katodal strömmar kan leda till retbarhet, presentera själv kontrasterande effekter3.

Både anodal och katodal stimuli aggregera användningen av elektroden par. Exempelvis i anodal stimulering, ”aktiv” eller ”anod” placeras elektroden över hjärnregionen till moduleras medan ”referens” eller ”katod” elektroden ligger över en region där effekten av nuvarande antas vara obetydlig9. I katodal stimulering, är elektrod disposition inverterad. Stimulering intensiteten för effektiv TDC beror på nuvarande intensiteten och elektroden dimensioner som påverkar elektriskt fältet annorlunda10. I mest publicerade studier, är den genomsnittliga strömstyrkan mellan 0,10 till 2,0 mA och 0,1 mA till 0.8 mA för människa och möss, respektive6,11. Även om elektroden storlek 35 cm2 används vanligtvis i människor, det finns ingen ordentlig förståelse om elektroden dimensioner för gnagare och en mer grundlig undersökning är behövs6.

TDC har föreslagits i kliniska studier med försök av erbjuder ett alternativ eller kompletterande behandling för flera neurologiska och neuropsykiatriska störningar11 såsom epilepsi12, bipolär sjukdom13, stroke5 , major depression14, Alzheimers sjukdom15, multipel skleros16 och Parkinsons sjukdom17. Trots växande intresse för TDC och dess användning i kliniska prövningar, detaljerad cellulära och molekylära evoked förändringar i hjärnvävnaden, kort och långvariga effekter, samt beteendemässiga utfall, är ännu för att vara mer djupt undersökte18, 19. eftersom en direkt mänskliga förhållningssätt att grundligt studera TDC inte är livskraftiga, användning av en TDC djurmodell kan erbjuda värdefulla insikter i de cellulära och molekylära händelser de terapeutiska mekanismer av TDC på grund av tillgängligheten till den djurets hjärnvävnad.

Tillgängliga bevis är begränsad när det gäller TDC modeller i möss. De flesta rapporterade modeller används olika implantera layouter, elektrod dimensioner och material. Till exempel Winkler o.a. (2017) implanteras huvud elektroden (Ag/Granulatfyllda, 4 mm i diameter) fylld med koksaltlösning och fixade det till kraniet med akryl cement och skruvar20. Skiljer sig från vår inställning, deras bröst elektrod var implanterade (platina, 20 x 1,5 mm). Nasehi et al. (2017) används ett förfarande som är mycket lik vår, även om bröstkorg elektroden gjordes från en saltlösning-indränkt svamp (kol fylld, 9,5 cm2)21. En annan studie implanteras båda elektroderna i djurets huvud, som uppnåddes genom att använda fasta plattor och täcker djurets huvud med en hydrogel ledare22. Här, beskriver vi en modell av TDC-mus som använder en kroniskt inopererade elektroden genom enkla kirurgiska förfaranden och TDC setup (figur 1).

Protocol

Individuellt-inrymt manliga vuxen (8-12 veckor) C57BL/6 möss användes i detta experiment. Djuren fick ordentlig vård före, under och efter experimentella rutiner med mat och vatten ad lib. Alla förfaranden som godkändes av utskottet djuretik från federala universitet av Minas Gerais (protokoll nummer 59/2014). 1. elektrodplacering Sederande och fixerande djuret på stereotaxic apparaten Sterilisera alla nödvändiga kirurgiska inst…

Representative Results

Kirurgiska protokollet presenterade långsiktig implantatets stabilitet för minst en månad, med inga inflammatoriska signaler på webbplatsen stimuleras heller inga andra oönskade effekter. Alla djur överlevde de kirurgiska proceduren och TDC sessionerna (n = 8). I detta experiment, var TDC implantat placerad över de M1 och M2 cortices (+ 1,0 mm främre-bakre och 0,0 mm i sidled till bregma). En vecka senare, TDC (n = 3-4) och placebo (n = 3) möss var stimuleras under fem dagar unde…

Discussion

Under de senaste åren, har neurostimulering tekniker in i klinisk praxis som en lovande förfarande att behandla neuropsykiatriska störningar23. För att minska den begränsning som införts av bristen på kunskap av neurostimulering mekanismer, presenterade vi här en musmodell för TDC som transporterar en elektrod som kan rikta hjärnregioner. Eftersom elektroden är kroniskt implanterbara, möjliggör denna djurmodell utredningen av långvariga biologiska effekter frammanade av TDC (för min…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar Mr Rodrigo de Souza för hjälp att upprätthålla mus kolonier. L.A.V.M är postdoktor uddar. Detta arbete stöds av bidraget PRONEX (FAPEMIG: APQ-00476-14).

Materials

BD Ultra-Fine 50U Syringe BD 10033430026 For intraperitonially injection.
Shaver (Philips Multigroom) Philips (Brazil) QG3340/16 For surgical site trimming.
Surgical Equipment
Model 940 Small Animal Stereotaxic Instrument with Digital Display Console KOPF 940 For animal surgical restriction and positioning.
Model 922 Non-Rupture 60 Degree Tip Ear Bars KOPF 922 For animal surgical restriction and positioning.
Cannula Holder KOPF 1766-AP For implant positioning.
Precision Stereo Zoom Binocular Microscope (III) on Boom Stand WPI PZMIII-BS For bregma localization and implant positioning.
Temperature Control System Model  KOPF TCAT-2LV For animal thermal control.
Cold Light Source  WPI WA-12633 For focal brightness
Tabletop Laboratory Animal Anesthesia System with Scavenging VetEquip 901820 For isoflurane delivery and safety.
VaporGuard Activated Charcoal Adsorption Filter VetEquip 931401 Delivery system safety measures. 
Model 923-B Mouse Gas Anesthesia Head Holder KOPF 923-B For animal restriction and O2 and isoflurane delivery.
Oxygen regulator, E-cylinder  VetEquip 901305 For O2 regulation and delivery.
Oxygen hose – green  VetEquip 931503 For O2 and isoflurane delivery.
Infrared Sterilizer 800 ºC Marconi MA1201 For instrument sterilization.
Surgical Instruments
Fine Scissors – ToughCut Fine Science Tools 14058-11 For incision.
Surgical Hooks INJEX 1636 In House Fabricated – Used to clear the surgical site from skin and fur.
Standard Tweezers or Forceps For skin grasping.
Surgical Consumables
Vetbond 3M SC-361931 For incision closing.
Cement and Catalyzer KIT (Duralay) Reliance 2OZ For implant fixation.
Sterile Cotton Swabs (Autoclaved) JnJ 75U For surgical site antisepsis. 
24 Well Plate (Tissue Culture Plate) SARSTEDT 831,836 For cement preparation.
Application Brush parkell S286 For cement mixing and application.
Pharmaceutics
Xylazin (ANASEDAN 2%) Ceva Pharmaceutical (Brazil) P10160 For anesthesia induction.
Ketamine (DOPALEN 10%) Ceva Pharmaceutical (Brazil) P30101 For anesthesia induction.
Isoflurane (100%) Cristália (Brazil) 100ML For anesthesia maintenance.
Lidocaine (XYLESTESIN 5%) Cristal Pharma For post-surgical care.
Ketoprofen (PROFENID 100 mg) Sanofi Aventis 20ML For post-surgical care.
Ringer's Lactate Solution SANOBIOL LAB ############ For post-surgical care.
TobraDex (Dexamethasone 1 mg/g) Alcon 631 For eye lubrification and protection. 
Stimulation
Animal Transcranial Stimulator Soterix Medical 2100 For current generation.
Pin-type electrode Holder (Cylindrical Holder Base) Soterix Medical 2100 Electrode support (Implant).
Pin-type electrode (Ag/AgCl) Soterix Medical 2100 For current delivery (electrode). 
Pin-type electrode cap Soterix Medical 2100 For implant protection.
Body Electrode (Ag/AgCl Coated) Soterix Medical 2100 For current delivery (electrode). 
Saline Solution (0.9%) FarmaX ############ Conducting medium for current delivery.
Standard Tweezers or Forceps For tDCS setup.
Real Time Polymerase Chain Reaction
BioRad CFX96 Real Time System BioRad C1000 For qPCR
SsoAdvancedTM Universal SYBR Green Supermix (5 X 1mL) BioRad 1725271 For qPCR
Hard Shell PCR Plates PCT COM 50 p/ CFX96 BioRad HSP9601 For qPCR
Microseal "B" seal pct c/ 100 BioRad MSB1001 For qPCR

Riferimenti

  1. Filmer, H. L., Dux, P. E., Mattingley, J. B. Applications of transcranial direct current stimulation for understanding brain function. Trends in Neurosciences. 37 (12), 742-753 (2014).
  2. Nitsche, M. A., Paulus, W. Sustained excitability elevations induced by transcranial DC motor cortex stimulation in humans. Neurology. 57 (10), 1899-1901 (2001).
  3. Kronberg, G., Bridi, M., Abel, T., Bikson, M., Parra, L. C. Direct Current Stimulation Modulates LTP and LTD: Activity Dependence and Dendritic Effects. Brain Stimulation. 10 (1), 51-58 (2017).
  4. Pelletier, S. J., Cicchetti, F. Cellular and Molecular Mechanisms of Action of Transcranial Direct Current Stimulation: Evidence from In Vitro and In Vivo Models. International Journal of Neuropsychopharmacology. 18 (2), pyu047 (2015).
  5. Chang, M. C., Kim, D. Y., Park, D. H. Enhancement of cortical excitability and lower limb motor function in patients with stroke by transcranial direct current stimulation. Brain Stimulation. 8 (3), 561-566 (2015).
  6. Lefaucheur, J. P., et al. Evidence-based guidelines on the therapeutic use of transcranial direct current stimulation (tDCS). Clinical Neurophysiology. 128 (1), 56-92 (2017).
  7. Monai, H., et al. Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain. Nature Communications. 7, 11100 (2016).
  8. Marquez-Ruiz, J., et al. Transcranial direct-current stimulation modulates synaptic mechanisms involved in associative learning in behaving rabbits. Proc. Natl. Acad. Sci. 109, 6710-6715 (2012).
  9. Jackson, M. P., et al. Animal models of transcranial direct current stimulation: Methods and mechanisms. Clinical Neurophysiology. 127 (11), 3425-3454 (2016).
  10. Cambiaghi, M., et al. Brain transcranial direct current stimulation modulates motor excitability in mice. The European journal of neuroscience. 31 (4), 704-709 (2010).
  11. Monte-Silva, K., et al. Induction of late LTP-like plasticity in the human motor cortex by repeated non-invasive brain stimulation. Brain Stimulation. 6 (3), 424-432 (2013).
  12. San-Juan, D., et al. Transcranial Direct Current Stimulation in Mesial Temporal Lobe Epilepsy and Hippocampal Sclerosis. Brain Stimulation. 10 (1), 28-35 (2017).
  13. Brunoni, A. R., et al. Transcranial direct current stimulation (tDCS) in unipolar vs. bipolar depressive disorder. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 35 (1), 96-101 (2011).
  14. Brunoni, A. R., et al. Trial of Electrical Direct-Current Therapy versus Escitalopram for Depression. New England Journal of Medicine. 376 (26), 2523-2533 (2017).
  15. Boggio, P. S., et al. Prolonged visual memory enhancement after direct current stimulation in Alzheimer’s disease. Brain Stimulation. 5 (3), 223-230 (2012).
  16. Cosentino, G., et al. Anodal tDCS of the swallowing motor cortex for treatment of dysphagia in multiple sclerosis: a pilot open-label study. Neurological Sciences. , 7-9 (2018).
  17. Kaski, D., Dominguez, R. O., Allum, J. H., Islam, A. F., Bronstein, A. M. Combining physical training with transcranial direct current stimulation to improve gait in Parkinson’s disease: A pilot randomized controlled study. Clinical Rehabilitation. 28 (11), 1115-1124 (2014).
  18. Monai, H., et al. Calcium imaging reveals glial involvement in transcranial direct current stimulation-induced plasticity in mouse brain. Nature Communications. 7, 11100 (2016).
  19. Fritsch, B., et al. Direct current stimulation promotes BDNF-dependent synaptic plasticity: potential implications for motor learning. Neuron. 66 (2), 198-204 (2010).
  20. Winkler, C., et al. Sensory and Motor Systems Anodal Transcranial Direct Current Stimulation Enhances Survival and Integration of Dopaminergic Cell Transplants in a Rat Parkinson Model. New Research. 4 (5), 17-63 (2017).
  21. Nasehi, M., Khani-Abyaneh, M., Ebrahimi-Ghiri, M., Zarrindast, M. R. The effect of left frontal transcranial direct-current stimulation on propranolol-induced fear memory acquisition and consolidation deficits. Behavioural Brain Research. 331 (May), 76-83 (2017).
  22. Souza, A., et al. Neurobiological mechanisms of antiallodynic effect of transcranial direct current stimulation (tDCS) in a mice model of neuropathic pain. Brain Research. 1682 (14-23), (2018).
  23. Woods, A. J., et al. A technical guide to tDCS, and related non-invasive brain stimulation tools. Clinical Neurophysiology. 127 (2), 1031-1048 (2016).
  24. Cogan, S. F., et al. Tissue damage thresholds during therapeutic electrical stimulation. Journal of Neural Engineering. 13, 2 (2017).
  25. Podda, M. V., et al. Anodal transcranial direct current stimulation boosts synaptic plasticity and memory in mice via epigenetic regulation of Bdnf expression. Scientific reports. 6 (October 2015), 22180 (2015).
check_url/it/58517?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
de Souza Nicolau, E., de Alvarenga, K. A. F., Tenza-Ferrer, H., Nogueira, M. C. A., Rezende, F. D., Nicolau, N. F., Collodetti, M., de Miranda, D. M., Magno, L. A. V., Romano-Silva, M. A. Transcranial Direct Current Stimulation (tDCS) in Mice. J. Vis. Exp. (139), e58517, doi:10.3791/58517 (2018).

View Video