Summary

Bruker Robotic systemer til å behandle og legge Colonic Murine prøver for histologiske analyser

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Mangelen på standardisering for murine vev behandling reduserer kvaliteten på murine histopathological analyse i forhold til menneske prøver. Her presenterer vi en protokoll for å utføre histopatologisk undersøkelse av murine betente og uninflamed colonic vev å vise muligheten for robotic systemer rutinemessig brukes for behandling og innebygging prøver fra mennesker.

Abstract

Forståelsen av menneskelige sykdommer er blitt betydelig utvidet takk til studiet av dyremodeller. Likevel må histopathological evaluering av eksperimentelle modeller være så strenge som brukes for menneskelig prøver. Faktisk er trekke pålitelig og nøyaktig konklusjoner kritisk påvirket av kvaliteten på vev delen forberedelse. Her beskriver vi en protokoll for histopathological analyse av murine vev som implementerer flere automatiserte trinn under prosedyren, fra innledende forberedelse til parafin innebygging av murine prøvene. Reduksjon av metodologiske variabler gjennom strenge protokollen standardisering fra automatisert prosedyrer bidrar til generelle påliteligheten av murine patologisk analyse. Spesielt denne protokollen beskriver bruken av automatiserte behandling og innebygging robotic systemer, rutinemessig brukes for vev behandling og parafin innebygging av prøver fra mennesker, behandle murine eksemplarer av intestinal betennelser. Vi konkludere med at påliteligheten av histopatologisk undersøkelse av murine vev er betydelig økt ved innføring av standardiserte og automatisert teknikker.

Introduction

I de siste tiårene, er flere eksperimentelle modeller utviklet for å analysere patogene mekanismer fører til menneskelige sykdommer1,2. For å vurdere alvorlighetsgraden av en sykdommen, må forskere evaluere effekten av behandling og studere fargemaskin og histologiske arkitektoniske variasjoner eller mengden av betennelse3. Du kan utføre på disse eksperimentelle modeller, er detaljerte histopathological analyser nødvendig, ofte sammenligne murine og menneskelige4,5.

Dessuten prøver fra mennesker vanligvis behandles og scoret av histopatologi kjernen fasiliteter og erfarne menneskelige patologer gjennom standardisert histopathological kriterier og metoder. Derimot er murine vev vanligvis fast, innebygd og analysert av forskere rydding av histopathological protokoller. Kvaliteten og påliteligheten av histopathological eksamen begynner med utarbeidelse av høy kvalitet vev deler. Flere faktorer bidrar kritisk å forhøye eller nedgang kvaliteten på den endelige analysen, inkludert fiksering, makroskopisk skjæring, behandling, parafinen innebygging og innebygging av prøver6,7.

Alle disse passasjene som involverer manipulering av prøven er utsatt for manuelle feil, inkludert manuell innebygging av prøvene og, i mindre grad, manuell mikrotomen snitting og flekker. I dag bruker hele prosessen med murine vev forberedelse til histologiske evaluering protokoller som varierer fra laboratoriet til laboratoriet og manuell protokoller. Målet med denne studien er å implementere standardiserte automatisert protokoller for å redusere feil og variasjon i murine histopathological eksamen.

Vi vet beskriver vi her første protokollene for helautomatisk vev behandling og innebygging av histologiske evalueringen av murine vev; disse brukes rutinemessig i patologi enheter for analyser av menneskelig. Som et praktisk eksempel på muligheten for metoden, en murine modell av intestinale betennelsen er analysert, i.e., kronisk kolitt modellen skyldes gjentatt utfylling av dekstran natrium sulfat (DSS) i drikkevann8 ,9. Denne eksperimentelle innstillingen tett ligner menneskelige inflammatorisk tarm sykdommer (IBD)10 siden DSS-behandlede dyr forevise underskriver av intestinal betennelser, f.eks vekttap, løs mage eller diaré og forkorte den kolon samt fibrose 8,9,11. Som observert i menneskelige IBD pasienter, genererer DSS behandling et komplisert sykdom kurs. I denne sammenheng må forseggjort histologiske evalueringer forstå dyptgripende endring av vev arkitektur. Dermed gjennomføringen av beskrevet protokoller for å øke eksempel forberedelse kvalitet kan ha nytte forskere avhengig tolkning av histologiske og immunohistochemical analyserer for murine eksperimentelle innstillinger. Murine eksperimentelle modeller av menneskelige sykdommer som involverer forandringer av vev arkitektur, mobilnettet vev infiltrere eller betennelse i ulike vev og organer (tarmen, hjerne, lever, hud) kan bruke den økte kvaliteten på den eksempel forberedelse til histopathological eksamen.

Protocol

Animal prosedyrer ble godkjent av det italienske Forsvarsdepartementet helse (Auth. 127/15, 27/13) og fulgt retningslinjene dyr omsorg European Institute of onkologi IACUC (dyr institusjon og bruk Committee) 1. kronisk kolitt induksjon av repeterende DSS administrasjon Egen alder og kjønn matchet mus i 2 grupper (behandling DSS vs control H2O, minst 5 mus littermates per forsøksgruppen). Administrere 2,5% DSS (40 kDa) i drikkevannet i 7 dager til behandling gru…

Representative Results

Eksperimentell kronisk kolitt indusert av gjentatte administrasjon av DSS i drikkevannet er et murint intestinale betennelsen ligner menneskelige IBD8,9. Figur 1 beskriver virkningene av DSS behandling, inkludert kolon forkortelse (figur 1A), brukte parameter å score tilstedeværelsen av DSS-indusert betennelser og colonic uttrykk av pro-inflammatoriske gener inkludert <…

Discussion

Vi benytter automatisert fremgangsmåten under utarbeidelsen av murine vev for histopathologic analyse. Denne protokollen tar sikte på å gi tekniske tips for å øke reproduserbarhet og standardisering av hele prosessen, dermed forsterke den generelle kvaliteten på den endelige histopathological evalueringen. Vi implementert automatisert instrumenter og metoder for utarbeidelse og innebygging av vev, rutinemessig brukes i patologi kjernen anlegg for studiet av menneskelig prøver.

For å de…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Institutt for patologi på IRCCS Policlinico Hospital, Milan kundestøtte og IEO dyr anlegget for hjelp i dyr.

Materials

Absolute Ethanol anhydrous Carlo Erba 414605 reagent
Absolute ETOH Honeywell 02860-1L reagent
Aluminium Potassium Sulfate SIGMA A6435 reagent
Aniline Blue SIGMA 415049 reagent
carbol Fuchsin SIGMA C4165 reagent
CD11b (clone M1/70) TONBO biosciences 35-0112-U100 antibody
CD20 IHC (clone SA275A11) Biolegend 150403 antibody
CD3 (17A2) TONBO biosciences 35-0032-U100 antibody
CD4 (GK1.5) BD Biosciences 552051 antibody
CD45.2 (clone 104) BioLegend 109837 antibody
CD8 (53-6.7) BD Biosciences 553031 antibody
Citrate Buffer pH 6 10X SIGMA C9999 reagent
Dab Vector Laboratories SK-4100 reagent
DPBS 1X Microgem L0615-500 reagent
DSS TdB Consultancy DB001 reagent
EDTA SIGMA E9884 reagent
EnVision Flex Peroxidase-Blocking Reagent DAKO compreso in GV80011-2
EnVision Flex Substrate DAKO compreso in GV80011-2
EnVision Flex/HRP DAKO compreso in GV80011-2
EnVision Flex+ Rat Linker DAKO compreso in GV80011-2
Eosin VWR 1.09844 reagent
F4/80 (clone BM8) BioLegend 123108 antibody
Formalin PanReac 2,529,311,215 reagent
glacial acetic acid SIGMA 71251 reagent
Goat-anti-Rat-HRP Agilent DAKO P0448 antibody
Haematoxylin DIAPATH C0303 reagent
LEICA Rotary microtome (RM2255) Leica RM2255 equipment
Ly6g (clone 1A8) BD Biosciences 551459 antibody
Mercury II Oxide SIGMA 203793 reagent
Omnis Clearify Clearing Agent DAKO CACLEGAL reagent
Omnis EnVision Flex TRS DAKO GV80011-2 reagent
Orange G SIGMA O3756 reagent
Paraffin Sakura 7052 reagent
Peloris LEICA equipment
Percoll SIGMA P4937 reagent
RPMI 1640 without L-Glutamine Microgem L0501-500 reagent
STS020 Leica equipment
Tissue-Teck Paraform Sectionable Cassette SAKURA 7022 equipment
Tissue-Tek Automated paraffin embedder Sakura equipment
Xylene J.T.Baker 8080.1000 reagent

Riferimenti

  1. Gibson-Corley, K. N., et al. Successful Integration of the Histology Core Laboratory in Translational Research. Journal of histotechnology. 35, 17-21 (2012).
  2. Olivier, A. K., et al. Genetically modified species in research: Opportunities and challenges for the histology core laboratory. Journal of histotechnology. 35, 63-67 (2012).
  3. Gibson-Corley, K. N., Olivier, A. K., Meyerholz, D. K. Principles for valid histopathologic scoring in research. Veterinary pathology. 50, 1007-1015 (2013).
  4. Stolfi, C., et al. Involvement of interleukin-21 in the regulation of colitis-associated colon cancer. The Journal of experimental medicine. 208, 2279-2290 (2011).
  5. Begley, C. G., Ellis, L. M. Drug development: Raise standards for preclinical cancer research. Nature. 483, 531-533 (2012).
  6. Peters, S. R. . A Practical Guide to Frozen Section Technique. , (2010).
  7. Rosai, J. . Rosai and Ackerman’s Surgical Pathology. , (2011).
  8. Blumberg, R. S., Saubermann, L. J., Strober, W. Animal models of mucosal inflammation and their relation to human inflammatory bowel disease. Current opinion in immunology. 11, 648-656 (1999).
  9. Wirtz, S., Neufert, C., Weigmann, B., Neurath, M. F. Chemically induced mouse models of intestinal inflammation. Nature. 2, 541-546 (2007).
  10. Kaser, A., Zeissig, S., Blumberg, R. S. Inflammatory bowel disease. Annual review of immunology. 28, 573-621 (2010).
  11. Cribiù, F. M., Burrello, C., et al. Implementation of an automated inclusion system for the histological analysis of murine tissue samples: A feasibility study in DSS-induced chronic colitis. European Journal of Inflammation. 16, 1-12 (2018).
check_url/it/58654?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Cribiù, F. M., Burrello, C., Tacchi, R., Boggio, F., Ricca, D., Caprioli, F., Ferrero, S., Facciotti, F. Using Robotic Systems to Process and Embed Colonic Murine Samples for Histological Analyses. J. Vis. Exp. (143), e58654, doi:10.3791/58654 (2019).

View Video