Summary

Utarbeidelse av Poly(pentafluorophenyl acrylate) Functionalized SiO2 perler for Protein rensing

Published: November 19, 2018
doi:

Summary

En protokoll for utarbeidelse av poly (pentafluorophenyl acrylate) (poly(PFPA)) podet silica perler er presentert. Poly(PFPA) functionalized overflaten er så immobilisert med antistoffer og brukt med hell i protein separasjon gjennom immunoprecipitation.

Abstract

Vi viser en enkel metode for å forberede poly (pentafluorophenyl acrylate) (poly(PFPA)) podet silica perler for antistoff immobilisering og påfølgende immunoprecipitation (IP) program. Poly(PFPA) podet overflaten forberedes via en enkel prosess. I det første trinnet, settes 3-aminopropyltriethoxysilane (APTES) inn som et koblingsfunksjonalitet molekyl på silica overflaten. I det andre trinnet er poly(PFPA) homopolymer, syntetisert via reversibel tillegg og fragmentering kjeden overføring (FLÅTEN) polymerisasjon, podet til koblingsfunksjonalitet molekylet gjennom exchange reaksjonen pentafluorophenyl (PFP)-enheter på den polymer og Amin gruppene i APTES. Avsetning av APTES og poly(PFPA) på silika partikler er bekreftet av X-ray photoelectron spektroskopi (XPS), samt overvåket av partikkel størrelse endringen målt via dynamisk lysspredning (DLS). Forbedre den overflaten hydrophilicity av perler, delvis substitusjon av poly(PFPA) med Amin-functionalized poly(ethylene glycol) (amino-PEG) er også utført. PEG-substituert poly(PFPA) podet silica perler er så immobilisert med antistoffer for IP-programmet. For demonstrasjon, et antistoff mot protein kinase RNA-aktivert (PKR) er ansatt og IP effektivitet bestemmes av vestlige blotting. Analyseresultatene viser at antistoff immobilisert perlene kan faktisk brukes til å berike PKR mens uspesifisert protein interaksjoner er minimal.

Introduction

Reaktiv polymer børster har mottatt stor interesse i de senere år. De kan brukes til nakkens funksjonelle molekyler på organisk eller uorganisk materiale å lage aktivert overflater med programmer innenfor områder som gjenkjenning og separasjon1,2,3,4, 5. Blant de reaktive polymerer rapportert, er som inneholder pentafluorophenyl ester enheter spesielt nyttig på grunn av deres høye kryssreaksjon med aminer og motstand mot hydrolyse6. En slik polymer er poly(PFPA), og det kan være lett functionalized etter polymerisasjon med molekyler som inneholder primære eller sekundære aminer7,8,9,10. I ett eksempel var poly(PFPA) børster reagert med amino-spiropyrans å lage lys svarer overflatene7.

Utarbeidelse av poly(PFPA) og tilhørende programmer er beskrevet i flere tidligere publikasjoner6,7,8,9,10,11,12 ,,13,,14,,15,,16,,17. Spesielt rapporterte Theato og medarbeidere syntese av poly(PFPA) børster via både “pode til” og “pode fra” metoder7,8,10,11,12 . I den “pode å” tilnærming, en poly (methylsilsesquioxane)-poly (pentafluorophenyl acrylate) (poly(MSSQ-PFPA)) hybrid polymer ble syntetisert8,10,11,12. Komponenten poly(MSSQ) kunne skjemaet sterk vedheft med en rekke ulike organiske og uorganiske overflater, slik at poly(PFPA) komponenten til en pensel laget på bestrøket materialoverflaten. I den “pode fra” tilnærming, overflate initiert reversibel tillegg og fragmentering kjeden overføring (SI-FLÅTEN) polymerisasjon var ansatt å forberede poly(PFPA) børster7. I dette tilfellet ble en overflate immobilisert kjeden forflytning agent (SI-CTA) først covalently knyttet til underlaget via silika-silane reaksjon. Immobilisert SI-CTA deltok i SI-FLÅTEN polymerisasjon av PFPA monomerer, genererer tettpakkede poly(PFPA) børster stabil kovalente kobling til underlaget.

Ved å benytte poly(PFPA) børster syntetisert via SI-FLÅTEN polymerisasjon, viste vi nylig immobilisering av antistoffer poly(PFPA) podet silika partikler og deres anvendelse i protein rensing18. Bruk av poly(PFPA) børster for antistoff immobilisering fant for å løse mange problemer forbundet med dagens protein skille gjennom IP. Konvensjonelle IP er avhengig av bruken av Protein A/G som et linker for antistoff immobilisering19,20,21. Siden bruken av Protein A/G kan antistoffer skal festes i en bestemt retning, er høye målet antigen utvinning effektivitet oppnådd. Men lider bruk av Protein A/G av ikke-spesifikk protein samhandling samt tap av antistoffer under protein utvinning, begge bidrar til høy bakgrunnsstøy. Du kan løse disse svakhetene ved har direkte crosslinking av antistoffer mot en solid støtte vært utforsket22,23,24. Effektiviteten av slike teknikker er vanligvis lav på grunn av tilfeldig orienteringen av krysskoblet antistoffer. Av poly(PFPA) podet underlaget er immobilisering av antistoffer permanent, oppnådd gjennom exchange reaksjon mellom PFP enheter og Amin funksjonaliteten på antistoffer. Selv om antistoff retningen er fortsatt tilfeldig, fordeler systemet av å ha mange reaktive PFP områder, kontrollerbar av graden av polymerisasjon. Videre vi viste at ved delvis substitusjon av PFP enheter med amino-pinne, overflate hydrophilicity stilles, ytterligere forbedre protein utvinning effektiviteten av systemet18. Samlet ble poly(PFPA) podet silika partikler vist å være et effektivt alternativ til tradisjonelle IP med rimelig effektivitet samt mye renere bakgrunnen.

I denne bidrag rapportere vi en alternativ metode å forberede poly(PFPA) podet overflaten antistoff immobilisering og IP søknad. I en enkelt prosess, som vist i figur 1, en APTES koblingsfunksjonalitet molekyl er først avsatt på silica overflaten, så poly(PFPA) polymer er covalently knyttet til koblingsfunksjonalitet molekylet gjennom reaksjonen PFP enhetene på den polymer og Amin funksjonene på APTES. Denne forberedelse metoden tillater permanent crosslinking av poly(PFPA) til et substrat overflate, men unngår mange komplikasjoner knyttet til SI-CTA syntese og SI-FLÅTEN polymerisering av poly(PFPA) børster. Delvis substitusjon av PFP-enheter med amino-pinne kan fremdeles utføres, slik at finjustering av polymer børste overflaten egenskapene. Vi viser poly(PFPA) podet silica perlene dermed forberedt kan immobilisert med antistoffer og brukt for protein berikelse IP. Den detaljerte perle forberedelse prosedyren antistoff immobilisering og IP testing er dokumentert i denne artikkelen, for leserne interessert i søker et alternativ til konvensjonelle Protein A/G basert IP.

Protocol

1. forberedelse av Poly(PFPA) Homopolymer Recrystallization av SHTS Kombiner 5 g av 2,2′-azobis(2-methylpropionitrile) (SHTS) med 25 mL av metanol i en 250 mL kanne. Fordype begeret i en 60 ° C olje bad og kraftig rør blandingen med en røre bar til SHTS er fullstendig oppløst. Filtrere varm løsningen gjennom filter papir (5-8 μm partikkel oppbevaring) og lagre filtratet på 4 ° C tillate krystaller form sakte. Samle inn den recrystallized SHTS ved filtrering. Kombiner samlet…

Representative Results

En skjematisk for utarbeidelsen av poly(PFPA) podet SiO2 perler, med eller uten PEG substitusjon er vist i figur 1. For å overvåke APTES og poly(PFPA) pode prosessen, nakne SiO2 perler, APTES functionalized SiO2 perler og poly(PFPA) podet SiO2 perler er preget av både DLS (figur 2) og XPS (Figur 3). IP effektiviteten av perler bestemmes av vestlige blott…

Discussion

Syntese av poly(PFPA) podet SiO2 perler er illustrert i figur 1. Ved å bruke APTES som et koblingsfunksjonalitet molekyl, kan poly(PFPA) børster covalently podet til SiO2 underlaget tilberedes via en enkel prosess. Selv om noen av PFP enhetene er ofret for reaksjon med APTES, er et stort antall PFP enhetene forventet å være tilgjengelig for senere reaksjon med amino-pinne eller antistoffer. PFP-grupper er kjent til lav energi overflater poly(PFPA) børster gjøre ik…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av byrået for Defense utvikling (Grant nr. UD170039ID).

Materials

2,2-Azobisisobutyronitrile, 99% Daejung Chemicals 1102-4405
Methyl alcohol for HPLC, 99.9% Duksan Pure Chemicals d62
Phenylmagnesium bromide solution 1.0 M in THF Sigma-Aldrich 331376
Carbon disulfide anhydrous, ≥99% Sigma-Aldrich 335266
Benzyl bromide, 98% Sigma-Aldrich B17905
Petroleum ether, 90% Samchun Chemicals P0220
Ethyl ether, 99% Daejung Chemicals 4025-4404
Magnesium sulfate anhydrous, powder, 99% Daejung Chemicals 5514-4405
Pentafluorophenyl acrylate Santa Cruz Biotechnology sc-264001 contains inhibitor
Aluminium oxide, activated, basic, Brockmann I Sigma-Aldrich 199443
Sodium Chloride (NaCl) Daejung Chemicals 7548-4400
Anisole anhydrous, 99.7% Sigma-Aldrich 296295
Silica nanoparticle Microparticles GmbH SiO2-R-0.7 5% w/v aqueous suspension
3-Aminopropyltrimethoxysilane, >96.0% Tokyo Chemical Industry T1255
Dimethyl sulfoxide for HPLC, ≥99.7% Sigma-Aldrich 34869
Amino-terminated poly(ethylene glycol) methyl ether Polymer Source P16082-EGOCH3NH2
Phosphate buffered saline tablet Takara T9181
Tween-20 Calbiochem 9480
Tris-HCl (pH 8.0) Invitrogen AM9855G
KCl Invitrogen AM9640G
NP-40 VWR E109-50ML
Glycerol Invitrogen 15514-011
Dithiothreitol Biosesang D1037
Protease inhibitor Merck 535140-1MLCN
Bromo phenol blue Sigma-Aldrich B5525-5G
Tris-HCl (pH 6.8) Biosolution BT033
Sodium dodecyl sulfate Biosolution BS003
2-Mercaptoethanol Gibco 21985-023
PKR Antibody Cell Signaling Technology 12297S
GAPDH Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-32233
Normal Rabbit IgG Cell Signaling Technology 2729S
HeLa Korea Cell Line Bank 10002
Sonicator DAIHAN Scientific WUC-D10H
Ultrasonicator BMBio BR2006A
Centrifuge I Eppendorf 5424 R
Centrifuge II LABOGENE 1736R
Rotator FINEPCR ROTATOR/AG
Vacuum oven DAIHAN Scientific ThermoStable OV-30
Gel permeation chromatography (THF) Agilent Technologies 1260 Infinity II
X-ray photoelectron spectrometer Thermo VG Scientific Sigma Probe
Dynamic light scattering Malvern Instruments ZEN 3690

Riferimenti

  1. Johnsson, B., Löfås, S., Lindquist, G. Immobilization of proteins to a carboxymethyldextran-modified gold surface for biospecific interaction analysis in surface plasmon resonance sensors. Analytical Biochemistry. 198 (2), 268-277 (1991).
  2. Kurzawa, C., Hengstenberg, A., Schuhmann, W. Immobilization method for the preparation of biosensors based on pH shift-induced deposition of biomolecule-containing polymer films. Analytical Chemistry. 74 (2), 355-361 (2002).
  3. You, C. C., et al. Detection and identification of proteins using nanoparticle-fluorescent polymer ‘chemical nose’ sensors. Nature Nanotechnology. 2 (5), 318-323 (2007).
  4. Roberts, M. W., Ongkudon, C. M., Forde, G. M., Danquah, M. K. Versatility of polymethacrylate monoliths for chromatographic purification of biomolecules. Journal of Separation Science. 32 (15-16), 2485-2494 (2009).
  5. Sandison, M. E., Cumming, S. A., Kolch, W., Pitt, A. R. On-chip immunoprecipitation for protein purification. Lab on a Chip. 10 (20), 2805-2813 (2010).
  6. Das, A., Theato, P. Activated Ester Containing Polymers: Opportunities and Challenges for the Design of Functional Macromolecules. Chemical Reviews. 116 (3), 1434-1495 (2016).
  7. Choi, J., et al. Functionalization and patterning of reactive polymer brushes based on surface reversible addition and fragmentation chain transfer polymerization. Journal of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry. 50 (19), 4010-4018 (2012).
  8. Kessler, D., Jochum, F. D., Choi, J., Char, K., Theato, P. Reactive surface coatings based on polysilsesquioxanes: universal method toward light-responsive surfaces. ACS Applied Materials & Interfaces. 3 (2), 124-128 (2011).
  9. Son, H., et al. Penetration and exchange kinetics of primary alkyl amines applied to reactive poly(pentafluorophenyl acrylate) thin films. Polymer Journal. 48 (4), 487-495 (2016).
  10. Kessler, D., Roth, P. J., Theato, P. Reactive surface coatings based on polysilsesquioxanes: controlled functionalization for specific protein immobilization. Langmuir. 25 (17), 10068-10076 (2009).
  11. Kessler, D., Theato, P. Reactive surface coatings based on polysilsesquioxanes: defined adjustment of surface wettability. Langmuir. 25 (24), 14200-14206 (2009).
  12. Kessler, D., Nilles, K., Theato, P. Modular approach towards multi-functional surfaces with adjustable and dual-responsive wettability using a hybrid polymer toolbox. Journal of Materials Chemistry. 19 (43), 8184-8189 (2009).
  13. Eberhardt, M., Mruk, R., Zentel, R., Theato, P. Synthesis of pentafluorophenyl(meth)acrylate polymers: new precursor polymers for the synthesis of multifunctional materials. European Polymer Journal. 41 (7), 1569-1575 (2005).
  14. Jochum, F. D., Forst, F. R., Theato, P. PNIPAM copolymers containing light-responsive chromophores: a method toward molecular logic gates. Macromolecular Rapid Communications. 31 (16), 1456-1461 (2010).
  15. Schattling, P., Pollmann, I., Theato, P. Synthesis of CO2-responsive polymers by post-polymerization modification. Reactive & Functional Polymers. 75, 16-21 (2014).
  16. He, L., Szameit, K., Zhao, H., Hahn, U., Theato, P. Postpolymerization modification using less cytotoxic activated ester polymers for the synthesis of biological active polymers. Biomacromolecules. 15 (8), 3197-3205 (2014).
  17. Arnold, R. M., McNitt, C. D., Popik, V. V., Locklin, J. Direct grafting of poly(pentafluorophenyl acrylate) onto oxides: versatile substrates for reactive microcapillary printing and self-sorting modification. Chemical Communications. 50 (40), 5307-5309 (2014).
  18. Son, H., Ku, J., Kim, Y., Li, S., Char, K. Amine-Reactive Poly(pentafluorophenyl acrylate) Brush Platforms for Cleaner Protein Purification. Biomacromolecules. 19 (3), 951-961 (2018).
  19. Cullen, S. E., Schwartz, B. D. An improved method for isolation of H-2 and Ia alloantigens with immunoprecipitation induced by protein A-bearing staphylococci. The Journal of Immunology. 117 (1), 136-142 (1976).
  20. Sisson, T. H., Castor, C. W. An improved method for immobilizing IgG antibodies on protein A-agarose. Journal of Immunology Methods. 127 (2), 215-220 (1990).
  21. Peritz, T., et al. Immunoprecipitation of mRNA-protein complexes. Nature Protocols. 1 (2), 577-580 (2006).
  22. Zhang, Z., Chen, S., Jiang, S. Dual-functional biomimetic materials: nonfouling poly (carboxybetaine) with active functional groups for protein immobilization. Biomacromolecules. 7 (12), 3311-3315 (2006).
  23. Yao, Y., et al. NHS-ester functionalized poly(PEGMA) brushes on silicon surface for covalent protein immobilization. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 66 (2), 233-239 (2008).
  24. Ma, J., et al. Facile fabrication of microsphere-polymer brush hierarchically three-dimensional (3D) substrates for immunoassays. Chemical Communications. 51 (31), 6749-6752 (2015).
  25. Chong, Y., et al. Thiocarbonylthio compounds [SC (Ph) S− R] in free radical polymerization with reversible addition-fragmentation chain transfer (RAFT Polymerization). Role of the free-radical leaving group (R). Macromolecules. 36 (7), 2256-2272 (2003).
  26. Jochum, F. D., Theato, P. Temperature- and Light-Responsive Polyacrylamides Prepared by a Double Polymer Analogous Reaction of Activated Ester Polymers. Macromolecules. 42 (16), 5941-5945 (2009).
  27. JoVE Science Education Database. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. The Western Blot. JoVE. , (2018).
  28. Chua, G. B. H., Roth, P. J., Duong, H. T. T., Davis, T. P., Lowe, A. B. Synthesis and Thermoresponsive Solution Properties of Poly[oligo(ethylene glycol) (meth)acrylamide]s: Biocompatible PEG Analogues. Macromolecules. 45 (3), 1362-1374 (2012).
check_url/it/58843?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kim, S., Ku, J., Park, J., Kharbash, R., Li, S. Preparation of Poly(pentafluorophenyl acrylate) Functionalized SiO2 Beads for Protein Purification. J. Vis. Exp. (141), e58843, doi:10.3791/58843 (2018).

View Video