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Articolo metodologico

Discriminazione dei sette sottoinsiemi delle cellule immuni di due-fluorocromo flusso Cytometry

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DOI:

10.3791/58955

5 marzo 2019

In questo articolo

Sommario

Qui, presentiamo un protocollo di cytometric di flusso per identificare CD4+ e CD8+ T cellule, γδ T, cellule B, cellule NK e monociti nel sangue periferico umano utilizzando solo due fluorocromi anziché sette. Con questo approccio, cinque ulteriori marcatori possono essere registrati sulla maggior parte dei citometri a flusso.

Abstract

Caratterizzazione delle cellule immuni si basa fortemente su multicolor flusso cytometry per identificare sottopopolazioni basate su espressione differenziale dei marcatori di superficie. Installazione di un pannello multicolor classico richiede strumenti high-end, gli anticorpi con etichettati personalizzati e attento studio design per minimizzare la sovrapposizione spettrale. Abbiamo sviluppato un'analisi multiparametrica per identificare le principali popolazioni umane immuni (CD4+ e CD8+ T cellule, cellule T γδ, cellule B, cellule NK e dei monociti) nel sangue periferico mediante la combinazione di sette indicatori di lignaggio utilizzando solo due fluorocromi. La nostra strategia si basa sull'osservazione che marcatori lignaggio costantemente sono espressi in una combinazione unica di ogni popolazione cellulare. Combinando queste informazioni con un'attenta titolazione degli anticorpi permette ai ricercatori di registrare cinque indicatori aggiuntivi, espandendo il limite ottico della maggior parte dei citometri a flusso. Confronto testa a testa ha dimostrato che la stragrande maggioranza delle popolazioni di cellule immuni nel sangue periferico può essere caratterizzata con precisione paragonabile tra il nostro metodo ed il classico "approccio di indicatore di un fluorocromo-uno", anche se quest'ultimo è ancora più precisi per l'identificazione di popolazioni come T γδ cellule e cellule NKT. Combinazione di sette indicatori utilizzando due fluorocromi permette l'analisi delle popolazioni delle cellule immuni complesse e campioni clinici su citometri a flusso fluorocromo conveniente 6-10 e anche su 2-3 strumenti di campo fluorocromo nelle aree con risorse limitate. Strumenti high-end possono inoltre beneficiare di questo approccio utilizzando fluorocromi supplementari per compire più profonda analisi di citometria a flusso. Questo approccio è anche molto adatto per lo screening di diverse popolazioni di cellule nel caso di campioni clinici con numero limitato di cellule.

Introduzione

Citometria a flusso è una tecnica che è stata sviluppata per analizzare più parametri su singole particelle ad una velocità di diverse migliaia di eventi al secondo1. Esempi di esemplari analizzati tramite flusso cytometry includono, ma non sono limitati a, cellule, perline, batteri, vescicole e cromosomi. Un sistema fluidico dirige le particelle nel punto di interrogatorio dove ogni particella si interseca il percorso con uno o più laser, e più parametri vengono registrati per ulteriori analisi. Disperde in avanti e laterali, generati dallo scattering della luce pura laser, vengono utilizzati per identificare la popolazione target e recuperare....

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Protocollo

Tutti gli studi dei materiali umani sono stati approvati da Johns Hopkins Institutional Review Board sotto l'Health Insurance Portability and Accountability Act. Campioni di pazienti e dei controlli sono stati de-identificati. PBMCs e sangue dai comandi sani sono stati ottenuti da consenso informato.

Nota: Questo protocollo è stato testato su fresco o congelato isolato cellule del sangue periferico e nel sangue intero.

1. cella preparazione

  1. Isolamento delle cellule del sangue periferico (PBMC) da sangue intero
    1. Prelievo di sangue in una provetta verde 10 mL co....

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Risultati

L'installazione e l'analisi di un esperimento di citometria a flusso delle cellule del sangue periferico umane macchiato con sette indicatori di lignaggio (anti-CD3,-CD4,-CD8, - CD14,-anticorpi γδ CD19, - CD56 e - TCR) utilizzando solo due fluorocromi sono presentati.

Risultati rappresentativi sono descritte per anti-CD8 e - CD56 titolazione di anticorpi. Per ogni anticorpo (in questo esempio, anti-CD8), sono stati registrati da.......

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Discussione

Il protocollo presentato qui ha dimostrato di essere abbastanza flessibile e insensibile ai cambiamenti di macchiatura buffer, la temperatura e la preparazione delle cellule del sangue periferico a causa l'alta espressione di marcatori di lignaggio sulla superficie delle cellule. La fase più critica per l'ottenimento di dati di alta qualità, riproducibili è la titolazione di anticorpi. Di nota, dato che la titolazione degli anticorpi deve sempre essere eseguita durante l'installazione di un pannello di cytometric di flus.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Ringraziamenti

Questo studio è stato sostenuto dall'Istituto nazionale dell'artrite e patologie del sistema muscoloscheletrico e malattie della pelle, < https://www.niams.nih.gov/>, premio numero P30-AR053503; La Fondazione Stabler, www.stablerfoundation.org; National Institute of Allergy and Infectious Disease, www.niaid.nih.gov, T32AI007247; Nina Irlanda programma per la salute del polmone (NIPLH), https://pulmonary.ucsf.edu/ireland/.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
CD3BD Biosciences562426Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_11152082
CD56BD Biosciences562751Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_2732054
TCRgdBD Biosciences331217Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_2562316
CD4BD Biosciences555347Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_395752
CD8BD Biosciences555367Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_395770
CD14BD Biosciences555398 Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_395799
CD19BD Biosciences555413Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_395813
CD3BD Biosciences555335Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_398591
CD56BD Biosciences555518Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_398601
TCRgdBD Biosciences331211Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_1089215
CCR7Biolegend353217Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_10913812
CD45RABD Biosciences560674Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_1727497
CCR4BD Biosciences561034Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_10563066
CCR6BD Biosciences353419Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_11124539
CXCR3BD Biosciences561730Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_10894207
CD57BD Biosciences562488Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_2737625
HLA-DRBD Biosciences563083Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_2737994
CD16BD Biosciences563784Anticorpo per la colorazione
RRID: AB_2744293
Cellule morteLife technologiesL-23105Vivo/morto discriminazione
Falcon 5 mL provetta in polistirene a fondo tondo con filtro cellulare tappo a scattoBD Bioscience 352235filtrare la sospensione cellulare prima di passare attraverso il citometro a flusso
Falcon 5 mL provetta in polistirene a fondo tondo Falcon 5 mLBD Bioscience352001per colorare il sangue intero
Recupero Coltura cellulare Mezzo di congelamentoThermo fisher12648010Celle
di congelamentoPiastra con fondo a V a 96 pozzettiThermo fisher249570piastra per colorazione
FACSAria IIu Cell SorterBD Biosciences Citometroflusso
FCS Express 6Software De NovoAnalisi FACS
GraphpadSoftwareAnalisi dei dati
a GraphPad

Riferimenti

  1. Bendall, S. C., Nolan, G. P., Roederer, M., Chattopadhyay, P. K. A deep profiler's guide to cytometry. Trends in Immunology. 33 (7), 323-332 (2012).
  2. Boin, F., et al. Flow cytometric discrimination of seven lineage markers by using two fluorochromes. PLoS ONE. 12<....

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Ristampe e permessi

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Cellule mononucleate del sangue perifericoTitolazione degli anticorpiAnalisi citofluorimetricaMarcatori di superficie cellulareGating dei linfocitiIsolamento delle PBMCCentrifugazione a gradiente di densitAnalisi multiparametrica