Summary

En fluorescens-basert metode å studere bakteriell Gene regulering i infiserte vev

Published: February 19, 2019
doi:

Summary

Beskrevet her er en metode for å analysere bakteriell genuttrykk dyr vev på cellenivå. Denne metoden gir en ressurs for å studere fenotypiske mangfoldet innenfor en bakteriell befolkning svar på vev miljøet under en infeksjon.

Abstract

Bakteriell virulens gener er ofte regulert på transcriptional nivå av flere faktorer som svarer til ulike Miljøsignaler. Noen faktorer handle direkte på virulens gener; andre kontrollere patogenesen ved å justere uttrykk for nedstrøms regulatorer eller akkumulering av signaler som påvirker regulator aktivitet. Mens regulering har vært studert under i vitro vekst, er relativt lite kjent om hvordan genuttrykk justeres under infeksjon. Slik informasjon er viktig når en bestemt gen er en kandidat for terapeutisk intervensjon. Transcriptional tilnærminger som kvantitative, real-time RT PCR og RNA-Seq er effektive måter å undersøke genuttrykk på globalt nivå men lider mange tekniske utfordringer, inkludert lav overflod av bakteriell forhold til verten RNA og utvalg degradering av RNases. Evaluere regulering med fluorescerende journalister er relativt lett og kan være multiplekset med fluorescerende proteiner med unike spectral egenskaper. Metoden gir encellede, spatiotemporal analyse av genuttrykk i vev som viser komplekse tredimensjonale arkitektur og physiochemical forløpninger som påvirker bakteriell regulatoriske nettverk. Slik informasjon er tapt når dataene er gjennomsnitt over bulk befolkningen. Her, beskriver vi en metode for å kvantifisere byggkorn under bakteriell patogener i situ. Metoden er basert på enkel vev behandling og direkte observasjon av fluorescens fra reporter proteiner. Vi viser nytten av dette systemet ved å undersøke uttrykket av Staphylococcus aureus thermonuclease (nuc), med gene produktet kreves for immun evasion og full virulens ex vivo og in vivo. Vi viser at nuc-gfp er sterkt uttrykt i nyre abscesser og avsløre heterogene genuttrykk grunn delvis til tilsynelatende romlige regulering av nuc promoter aktivitet i abscesser blir engasjert i immunforsvaret. Metoden kan brukes på alle bakterie med manipulatable genetisk system og noen infeksjon modell, gir verdifull informasjon for prekliniske studier og narkotika utvikling.

Introduction

Bakterier reagerer på endre fysiologiske forhold og endringer i miljøet ernæringsmessige staten ved narkotikalovgivningen uttrykke genene kreves for tilpasning og overlevelse. For eksempel koloniser opportunistiske patogener overflater ved relativt lav tetthet, og er ofte harmløse. Men når bakterien har trengt fysiske og kjemiske barrierer, må det kjempe med verten immun cellen mot forsvar og begrenset næringsstoffer tilgjengelighet1. Som et eksempel, Staphylococcus aureus colonizes omtrent en tredjedel av befolkningen asymptomatically men er også årsaken til ødeleggende huden og bløtvevet infeksjoner, osteomyelitt, endokarditt og bacteremia2. Suksess for S. aureus som en patogen er ofte knyttet til metabolske fleksibiliteten samt et arsenal av knyttet til overflaten, utskilles virulens faktorer som aktiverer bakterien rømme blodet og gjenskape i perifere vev 3,4,5. Verten død på grunn av stafylokokk sykdom er en evolusjonær blindspor og grenser overføring til nye verter6, må forpliktelse til virulens faktor produksjon bli nøye kontrollert.

En kompleks regulatoriske nettverk av proteiner og ikke-koding RNAs svarer til et utvalg av miljømessige stimuli, inkludert celle tetthet, vekstfase, nøytrofile-assosiert faktorer og næringsstoffer tilgjengelighet, slik at virulens gener som er uttrykt i den nøyaktig tid og sted i vert vev7,8,9,10,11,12,13. For eksempel regulerer tidlig/S to komponent systemet (TCS) uttrykk for virulens faktorer via sensor kinase (SaeS) og svar regulator (tidlig)14. SaeS er autophosphorylated på en bevart histidin rester svar til verten signaler (f.eks, menneskelige nøytrofile peptider [HNPs], calprotectin)8,15,16. Gruppen phosphoryl deretter overført til en aspartate rester tidlig aktivere det som en DNA-bindende protein (tidlig ~ P)17. Tidlig/S TCS regulerer over 20 gener som bidrar til patogenesen inkludert fibronectin binding proteiner (FnBPs), leukocidins og coagulase14,18,19,20. Mål kan klassifiseres i høy affinitet og lav-affinitet genet mål, som trolig indusert som tidlig ~ P stiger når de utsettes for sine signaler21. Tidlig/S aktiviteten er kontrollert av andre regulatorer av genuttrykk som tok quorum sensing systemet, repressor av giftstoffer protein (Rot) og alternativ sigma faktor B (SigB)22,23,24.

NUC er en Sae-avhengige virulens genet i Staphylococcus aureus og koder thermonuclease (Nuc), som er avgjørende for rømmer fra neutrophilic extracellular trapper (nett) og formidling under den løpet av infeksjon25,26. Uttrykk for nuc er også sterkt indirekte undertrykt av CodY i nærvær av forgrenede-kjeden aminosyrer og GTP27, og direkte undertrykt av stafylokokk tilbehør regulator protein SarA28,29 , der aktiviteten påvirkes av oksygen (redoks tilstand) og pH30. Gitt at sae og nuc mutanter er svekket i musen modeller av infeksjon, er det interesse for å utvikle kjemiske intervensjoner som hemmer deres tilsvarende aktiviteter26,31. Til tross for dette er det ingen informasjon om deres regulering under infeksjon.

Fluorescerende journalister har blitt brukt til å overvåke og kvantifisere genuttrykk på enkeltcelle nivå. Her presenterer vi en metode for å kvantifisere S. aureus genuttrykk under infeksjon, da sammen med i vitro transcriptome analyse og kraftig Bildeteknikker som magnetisk resonans imaging (MRI) og magnetisk resonans spektroskopi (MRS), kan avsløre hvordan bakteriell fysiologi er regulert i vivo og den relative abundances av næringsstoffer i enkelte nisjer. Metoden kan brukes på alle bakteriell patogen med en tett genetisk.

Oversikt over genomet integrerende vektoren.

Genomet integrerende vektor pRB4 inneholder 500 base parene hver fra oppstrøms og nedstrøms for S. aureus USA300 SAUSA300_0087 pseudogene å lette homologe rekombinasjon. pRB4 er avledet fra temperatur-sensitive pMAD vektor ryggraden som inneholder erythromycin motstand kassett (ermC) og thermostable beta-galactosidase gene bgaB for blå/hvit screening av recombinants32. Foretatt reporter Konstruer inneholder også en chloramphenicol motstand markør (katten) for valg etter genomet integrering og plasmider eliminering, samt EcoRI og SmaI områder å fusjonere regulatoriske regionen rundt superfolder Green fluorescerende protein (sGFP) (figur 1). Det er kjent at valg av ribosom bindende nettsted (RBS) påvirker aktiviteten til reporteren, og ofte krever empirisk optimalisering33. Dermed er en RBS ikke levert. Her, innfødt ribosom binding området brukes til å gi en mer naturlig mønsteret av genuttrykk, men andre steder kan brukes.

Protocol

Alle metodene som er beskrevet her er godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk Committee (IACUC) fra Georgetown University. 1. generasjon fluorescerende Reporter belastningen Fordøye genomet integrerende pRB4 vektoren sekvensielt med EcoRI og SmaI begrensning enzymer. Etter produsentens protokoll, sette opp en overnatting fordøyelsen med SmaI bruker 1 µg av pRB4 ved 25 ° C, og deretter fortsette med andre fordøyelsen 1t på 37 ° C ved å legge EcoRI til reaksjonsblanding…

Representative Results

Vi utviklet en plasmider avledet fra pMAD32 som kan levere en reporter fusion konstruksjon i kromosomet av double crossover homologe rekombinasjon (figur 1). Denne konstruksjonen gir kvantitativ analyse av noen regulerende område som støtter produksjon av GFP protein og fluorescerende signalet over bakgrunnen. Plasmider gir ampicillin motstand (Apr) for vedlikehold og forplantning i E. coli og gir erythromycin mot…

Discussion

Bakteriell infeksjonssykdommer er et økende helseproblem over hele verden på grunn av oppkjøpet av antibiotikaresistens determinanter46. Tilpasning til vertsmiljøer er avgjørende for vekst og overlevelse under infeksjon, kan strategier målretting gene expression programmer som øker patogen fitness være nyttig therapeutically. Et slikt program er et sett av gener som er kontrollert av tidlig/S to komponent system (TCS), vist tidligere å spille en viktig rolle i immunforsvaret evasion<sup c…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Alexander Horswill for gave PsarAP1– tdTomato fusion og Karen Creswell hjelp med flyt cytometri analyse. Vi takker også Alyssa King for råd om statistisk analyse. Dette arbeidet ble finansiert delvis av en NIH utforskende/utviklingsmessige forskning Award (stipend AI123708) og fakultetet oppstart fond til SRB. Fond ikke hadde noen rolle i studien design, innsamling og tolkning eller beslutningen om å sende arbeidet for publikasjonen.

Materials

5% sheep blood Hardy Diagnostics (Santa Maria, CA) A10
5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside (X-Gal) ThermoScientific R0402
Ampicillin Fisher Scientific BP1760-25
C57Bl/6 Mice Charles River NA
Chloramphenicol Sigma-Aldrich C-0378
confocal laser scanning microscope Zeiss NA
cryostat microtome Thermo Scientific NA
Culture, Cap VWR International 2005-02512
D+2:25NA Oligo Integrated DNA Technologies (Coralville, Iowa) NA
DNA Ligase New England Biolabs M0202S
Erythromycin Sigma-Aldrich E5389
Flow Analyzer Becton Dickinson NA
glass beads Sigma Z273627
Miniprep, plasmid Promega A1220
orbital shaking water bath New Brunswick Innova NA
PCR purification QIagen 28106
Phosphate Buffer Saline (PBS) Cellgrow 46-013-CM
Plate reader Tecan NA
Precellys 24 homogenizer Bertin Laboratories NA
pUC57-Kan GenScript (Piscataway, NJ) NA
Q5 Taq DNA Polymerase New England Biolabs (Ipswich, MA) M0491S
Restriction Enzymes New England Biolabs (Ipswich, MA) R0150S (PvuI), R3136S (BamHI), R0144S (BglII), R3131S (NheI), R0101S (EcoRI), R0141S (SmaI).
Reverse transcriptase New England BioLabs E6300L
Sanger Sequencing Genewiz (Germantown, MD) NA
Sub Xero clear tissue freezing medium Mercedes Medical MER5000
Superfrost Plus microscope slides Fisher Scientific 12-550-15
superloop GE Lifesciences 18111382
Syringe, Filter VWR International 28145-481
Syto 40 Thermo Fisher Scientific S11351 Membrane permeant nucleic acid stain
Tetracycline Sigma-Aldrich T7660
Tryptic Soy Broth VWR 90000-376
UV-visible spectrophotometer Beckman Coulter-DU350 NA
Vectashield Antifade Mounting medium with DAPI Vector Laboratories H-1500

Riferimenti

  1. Hood, M. I., Skaar, E. P. Nutritional immunity: transition metals at the pathogen-host interface. Nature Reviews Microbiology. 10 (8), 525-537 (2012).
  2. Lowy, F. Staphylococcus aureus infections. The New England Journal of Medicine. 339 (8), 520-532 (1998).
  3. Grosser, M. R., et al. Genetic requirements for Staphylococcus aureus nitric oxide resistance and virulence. PLoS Pathogen. 14 (3), 1006907 (2018).
  4. Valentino, M., et al. Genes contributing to Staphylococcus aureus fitness in abscess- and infection-related ecologies. MBio. 5 (5), 01714-01729 (2014).
  5. Cheng, A., et al. Genetic requirements for Staphylococcus aureus abscess formation and persistence in host tissues. FASEB Journal. 23 (10), 3393-3404 (2009).
  6. Meyers, L. A., Levin, B. R., Richardson, A. R., Stojiljkovic, I. Epidemiology, hypermutation, within-host evolution and the virulence of Neisseria meningitidis. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 270 (1525), 1667-1677 (2003).
  7. Balasubramanian, D., et al. Staphylococcus aureus Coordinates Leukocidin Expression and Pathogenesis by Sensing Metabolic Fluxes via RpiRc. MBio. 7 (3), 00818 (2016).
  8. Geiger, T., Goerke, C., Mainiero, M., Kraus, D., Wolz, C. The virulence regulator Sae of Staphylococcus aureus.: promoter activities and response to phagocytosis-related signals. Journal of Bacteriology. 190 (10), 3419-3428 (2008).
  9. Weiss, A., Broach, W. H., Shaw, L. N. Characterizing the transcriptional adaptation of Staphylococcus aureus. to stationary phase growth. Pathogens and Disease. 74 (5), (2016).
  10. Balaban, N., Novick, R. P. Autocrine regulation of toxin synthesis by Staphylococcus aureus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (5), 1619-1623 (1995).
  11. Pohl, K., et al. CodY in Staphylococcus aureus: a regulatory link between metabolism and virulence gene expression. Journal of Bacteriology. 191 (9), 2953-2963 (2009).
  12. Majerczyk, C. D., et al. Staphylococcus aureus CodY negatively regulates virulence gene expression. Journal of Bacteriology. 190 (7), 2257-2265 (2008).
  13. McNamara, P. J., Milligan-Monroe, K. C., Khalili, S., Proctor, R. A. Identification, cloning, and initial characterization of rot, a locus encoding a regulator of virulence factor expression in Staphylococcus aureus. Journal of Bacteriology. 182 (11), 3197-3203 (2000).
  14. Liu, Q., Yeo, W. S., Bae, T. The SaeRS Two-Component System of Staphylococcus aureus. Genes (Basel). 7 (10), 81 (2016).
  15. Giraudo, A., Calzolari, A., Cataldi, A., Bogni, C., Nagel, R. The sae locus of Staphylococcus aureus encodes a two-component regulatory system. FEMS Microbiology Letters. 177 (1), 15-22 (1999).
  16. Cho, H., et al. Calprotectin Increases the Activity of the SaeRS Two Component System and Murine Mortality during Staphylococcus aureus Infections. PLoS Pathogen. 11 (7), 1005026 (2015).
  17. Sun, F., et al. In the Staphylococcus aureus two-component system sae, the response regulator SaeR binds to a direct repeat sequence and DNA binding requires phosphorylation by the sensor kinase SaeS. Journal of Bacteriology. 192 (8), 2111-2127 (2010).
  18. Liang, X., et al. Inactivation of a two-component signal transduction system, SaeRS, eliminates adherence and attenuates virulence of Staphylococcus aureus. Infection and Immunity. 74 (8), 4655-4665 (2006).
  19. Giraudo, A. T., Cheung, A. L., Nagel, R. The sae locus of Staphylococcus aureus controls exoprotein synthesis at the transcriptional level. Archives of Microbiology. 168 (1), 53-58 (1997).
  20. Flack, C. E., et al. Differential regulation of staphylococcal virulence by the sensor kinase SaeS in response to neutrophil-derived stimuli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (19), 2037-2045 (2014).
  21. Mainiero, M., et al. Differential target gene activation by the Staphylococcus aureus two-component system saeRS. Journal of Bacteriology. 192 (3), 613-623 (2010).
  22. Li, D., Cheung, A. Repression of hla by rot is dependent on sae in Staphylococcus aureus. Infection and Immunity. 76 (3), 1068-1075 (2008).
  23. Bischoff, M., et al. Microarray-based analysis of the Staphylococcus aureus sigmaB regulon. Journal of Bacteriology. 186 (13), 4085-4099 (2004).
  24. Novick, R., Jiang, D. The staphylococcal saeRS system coordinates environmental signals with agr quorum sensing. Microbiology. 149, 2709-2717 (2003).
  25. Olson, M. E., et al. Staphylococcus aureus nuclease is an SaeRS-dependent virulence factor. Infection and Immunity. 81 (4), 1316-1324 (2013).
  26. Berends, E., et al. Nuclease expression by Staphylococcus aureus facilitates escape from neutrophil extracellular traps. Journal of Innate Immunity. 2 (6), 576-587 (2010).
  27. Waters, N. R., et al. A spectrum of CodY activities drives metabolic reorganization and virulence gene expression in Staphylococcus aureus. Molecular Microbiology. 101 (3), 495-514 (2016).
  28. Cassat, J., et al. Transcriptional profiling of a Staphylococcus aureus clinical isolate and its isogenic agr and sarA mutants reveals global differences in comparison to the laboratory strain RN6390. Microbiology. 152, 3075-3090 (2006).
  29. Kiedrowski, M., et al. Nuclease modulates biofilm formation in community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus. PLoS One. 6 (11), 26714 (2011).
  30. Fujimoto, D. F., et al. Staphylococcus aureus SarA is a regulatory protein responsive to redox and pH that can support bacteriophage lambda integrase-mediated excision/recombination. Molecular Microbiology. 74 (6), 1445-1458 (2009).
  31. Yeo, W. S., et al. The FDA-approved anti-cancer drugs, streptozotocin and floxuridine, reduce the virulence of Staphylococcus aureus. Scientific Reports. 8 (1), 2521 (2018).
  32. Arnaud, M., Chastanet, A., Débarbouillé, M. New vector for efficient allelic replacement in naturally nontransformable, low-GC-content, Gram-positive bacteria. Applied and Environmental Microbiology. 70 (11), 6887-6891 (2004).
  33. Malone, C. L., et al. Fluorescent reporters for Staphylococcus aureus. Journal of Microbiological Methods. 77 (3), 251-260 (2009).
  34. Schenk, S., Laddaga, R. A. Improved method for electroporation of Staphylococcus aureus. FEMS Microbiology Letters. 73 (1-2), 133-138 (1992).
  35. Monk, I. R., Foster, T. J. Genetic manipulation of Staphylococci-breaking through the barrier. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2, 49 (2012).
  36. Novick, R. P. Genetic systems in staphylococci. Methods in Enzymology. 204, 587-636 (1991).
  37. Diep, B. A., et al. Complete genome sequence of USA300, an epidemic clone of community-acquired meticillin-resistant Staphylococcus aureus. Lancet. 367 (9512), 731-739 (2006).
  38. Boles, B. R., Thoendel, M., Roth, A. J., Horswill, A. R. Identification of genes involved in polysaccharide-independent Staphylococcus aureus biofilm formation. PLoS One. 5 (4), 10146 (2010).
  39. Villaruz, A. E., et al. A point mutation in the agr locus rather than expression of the Panton-Valentine leukocidin caused previously reported phenotypes in Staphylococcus aureus pneumonia and gene regulation. Journal of Infect Diseases. 200 (5), 724-734 (2009).
  40. Reeves, P. G., Nielsen, F. H., Fahey, G. C. J. AIN-93 purified diets for laboratory rodents: final report of the American Institute of Nutrition ad hoc writing committee on the reformulation of the AIN-76A rodent diet. Journal of Nutrition. 123 (11), 1939-1951 (1993).
  41. Thomer, L., Schneewind, O., Missiakas, D. Pathogenesis of Staphylococcus aureus Bloodstream Infections. Annual Review of Pathology. 11, 343-364 (2016).
  42. Olson, M., et al. Staphylococcus aureus nuclease is an SaeRS-dependent virulence factor. Infection and Immunity. 81 (4), 1316-1324 (2013).
  43. Thammavongsa, V., Missiakas, D., Schneewind, O. Staphylococcus aureus degrades neutrophil extracellular traps to promote immune cell death. Science. 342 (6160), 863-866 (2013).
  44. Cheung, A. L., Nast, C. C., Bayer, A. S. Selective activation of sar promoters with the use of green fluorescent protein transcriptional fusions as the detection system in the rabbit endocarditis model. Infection and Immunity. 66 (12), 5988-5993 (1998).
  45. Pilsczek, F. H., et al. A novel mechanism of rapid nuclear neutrophil extracellular trap formation in response to Staphylococcus aureus. Journal of Immunology. 185 (12), 7413-7425 (2010).
  46. Uhlemann, A. C., Otto, M., Lowy, F. D., DeLeo, F. R. Evolution of community- and healthcare-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Infection, Genetics and Evolution. 21, 563-574 (2014).
  47. Voyich, J. M., et al. The SaeR/S gene regulatory system is essential for innate immune evasion by Staphylococcus aureus. Journal of Infectious Diseases. 199 (11), 1698-1706 (2009).
  48. Cheng, A., DeDent, A., Schneewind, O., Missiakas, D. A play in four acts: Staphylococcus aureus. abscess formation. Trends in Microbiology. 19 (5), 225-232 (2011).
  49. Balasubramanian, D., Harper, L., Shopsin, B., Torres, V. J. Staphylococcus aureus pathogenesis in diverse host environments. Pathogens and Disease. 75 (1), (2017).
  50. Vitko, N. P., Grosser, M. R., Khatri, D., Thurlow, L. R., Richardson, A. R. Expanded Glucose Import Capability Affords Staphylococcus aureus Optimized Glycolytic Flux during Infection. MBio. 7 (3), 00296 (2016).
  51. Landete, J. M., et al. Use of anaerobic green fluorescent protein versus green fluorescent protein as reporter in lactic acid bacteria. Applied Microbiology and Biotechnol. 99 (16), 6865-6877 (2015).
  52. Buckley, A. M., et al. Lighting Up Clostridium Difficile: Reporting Gene Expression Using Fluorescent Lov Domains. Scientific Reports. 6, 23463 (2016).
  53. Bose, J. L. Genetic manipulation of staphylococci. Methods in Molecular Biology. 1106, 101-111 (2014).
  54. Krute, C. N., et al. Generation of a stable plasmid for in vitro and in vivo studies of Staphylococcus. Applied and Environmental Microbiology. , 02370 (2016).
  55. Cassat, J. E., et al. Integrated molecular imaging reveals tissue heterogeneity driving host-pathogen interactions. Science Translational Medicine. 10 (432), 6361 (2018).
  56. Handlogten, M. E., Hong, S. P., Westhoff, C. M., Weiner, I. D. Apical ammonia transport by the mouse inner medullary collecting duct cell (mIMCD-3). American Journal of Physiology-Renal Physiology. 289 (2), 347-358 (2005).
  57. Hijmans, B. S., Grefhorst, A., Oosterveer, M. H., Groen, A. K. Zonation of glucose and fatty acid metabolism in the liver: mechanism and metabolic consequences. Biochimie Journal. 96, 121-129 (2014).
  58. Davis, K. M., Mohammadi, S., Isberg, R. R. Community behavior and spatial regulation within a bacterial microcolony in deep tissue sites serves to protect against host attack. Cell Host & Microbe. 17 (1), 21-31 (2015).
  59. Stenman, J. M., et al. Canonical Wnt signaling regulates organ-specific assembly and differentiation of CNS vasculature. Science. 322 (5905), 1247-1250 (2008).
check_url/it/59055?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Behera, R. K., Mlynek, K. D., Linz, M. S., Brinsmade, S. R. A Fluorescence-based Method to Study Bacterial Gene Regulation in Infected Tissues. J. Vis. Exp. (144), e59055, doi:10.3791/59055 (2019).

View Video