Summary

Odling av grön mikroalg i bubbla kolumn Photobioreactors och ett test för neutrala lipider

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att konstruera lab-skala bubbla kolumn photobioreactors och använda dem till kultur mikroalger. Det ger också en metod för bestämning av kultur tillväxttakt och neutrala fettinnehållet.

Abstract

Det finns betydande intresse i studien av mikroalger för tekniska applikationer såsom produktion av biobränslen, produkter med högt värde, och för behandling av avfall. Som de flesta nya forskningsinsatser börjar på laboratorieskala, finns det ett behov av kostnadseffektiva metoder för att odla mikroalger i ett reproducerbart sätt. Här, kommunicerar vi en effektiv strategi för kultur mikroalger i laboratorieskala photobioreactors och att mäta tillväxt och neutrala fettinnehållet i de algerna. Instruktioner finns också på hur du ställer in photobioreactor systemet. Även om exempel organismerna är arter av Chlorella och Auxenochlorella, kan detta system anpassas för att odla ett brett utbud av mikroalger, inklusive samtidig kulturer av alger med icke-alger arter. Beståndet kulturer odlas först i flaskor att producera inokulum för photobioreactor system. Alger inokulum är koncentrerad och överförs till photobioreactors för odling i batch-läge. Prover tas dagligen för Absorbansavläsningar. I slutet av batch kultur, celler skördas av centrifug, tvättas, och frysa torkade att erhålla en slutlig torrvikt koncentration. Den slutliga torrvikt koncentrationen används för att skapa ett samband mellan den optiska densiteten och torrvikt koncentrationen. En modifierad Folch metod används därefter att extrahera sammanlagda mängden lipider från den frystorkade biomassan och extraktet har analyserats för dess neutrala fetthalten med en mikroplattan-analys. Denna analys har publicerats tidigare men protokollstegen ingick här Markera kritiska steg i förfarandet där fel inträffar ofta. Bioreaktor systemet beskrivs här fyller en nisch mellan enkel kolv odling och fullt kontrollerade kommersiella bioreaktorer. Även med bara 3-4 biologiska replikerar per behandling, vår metod för att odla alger leder till snäva standardavvikelser i tillväxt och lipid analyserna.

Introduction

Tillämpningen av mikroalger i teknik och bioteknik har rönt stort intresse under de senaste åren. Mikroalger studeras för användning i avloppsvatten behandling1,2,3,4, biobränsle produktion5,6,7,8, och produktion av nutraceuticals och andra värdefulla produkter9,10. Alger är också att vara genetiskt modifierade på större priser i ett försök att förbättra deras lämplighet för särskilda engineering program11,12. Följaktligen finns det stort intresse för experiment med industriellt relevanta organismer i kontrollerade miljöer. Syftet med denna metod är att kommunicera en effektiv strategi för kultur mikroalger i kontrollerad laboratoriemiljö och att mäta tillväxt och neutrala fettinnehållet i de algerna. Att förbättra tillväxten priser och neutrala fettinnehållet i mikroalger har identifierats som två viktiga flaskhalsar mot kommersialisering av alger biobränslen13.

En rad olika metoder har använts för att kultur alger i experimentsyfte. Dessa strategier kan i allmänhet delas mellan storskalig utomhus odling och småskalig inomhus odling. Utomhus odling i photobioreactors och öppna dammar är lämplig för experiment som syftar till att skala upp processer som har redan visat på laboratorieskala (t.ex. att testa skala upp av en ny hög-lipid stam av alger)14. Men inomhus småskalig odling är lämpligt när du utvecklar nya eller förbättrade alger stammar eller utföra experiment som syftar till att förstå biologiska mekanismer. I dessa senare fall krävs en hög grad av experimentell kontroll att locka fram subtila förändringar i biologiska beteende. Därför krävs ofta axenic kulturer för att minimera de komplexa biotiska faktorer som förknippas med andra organismer (t.ex. bakterier, andra alger) som oundvikligen växer i stora utomhus-system. Även när man studerar interaktionen mellan alger och andra organismer, har vi funnit att användningen av mycket-kontrollerade försöksbetingelser är till hjälp när man undersöker molekylära utbyte mellan organismer15,16,17.

Inom kategorin småskaliga inomhus Algodling, en uppsättning strategier har använts. Kanske är den vanligaste metoden att odla alger i Erlenmeyer-kolvar på ett skakbord under en ljus bank18,19. Utbytet av syre och CO2 sker genom passiv diffusion genom en skum plugg i toppen av kolven. Vissa forskare har förbättrat detta upplägg genom aktiv luftning av kolvar20. En annan metod är att odla alger i flaskor, mixad av uppståndelse bar och aktiv luftning. Trots sin enkelhet, har vi funnit att användningen av kolvar och flaskor ofta leder till inkonsekventa resultat bland biologiska replikat. Förmodligen detta är på grund av position effekter – olika positioner får olika mängder av ljus, vilket även påverkar interna reaktorn temperaturer. Dagliga rotation av reaktorer till nya positioner kan hjälpa men inte lindra problemet eftersom vissa stadier av alger tillväxt (t.ex. tidigt exponentiell) är mer känsliga för positionella effekter än andra (t.ex. log fas).

På motsatta sidan av spektrumet av teknisk finess är fullt kontrollerade kommersiella photobioreactors. Dessa system kontinuerligt övervaka och justera villkoren i reaktorn att optimera algtillväxt. De har programmerbar belysning, realtid temperaturkontroll och pH-kontroll. Tyvärr, de är dyra och vanligtvis kosta flera tusen dollar per reaktor. Den vetenskapliga och tekniska tidskrifter kräver biologiska replikering av resultat, vilket kräver inköp av flera bioreaktorer. Vi presenterar här en bubbla reaktorn pelarsystem som överbryggar klyftan mellan det enkla (kolv) och sofistikerade (fullt kontrollerade bioreaktor) närmar sig för lab-skala alger odling. Bubbla kolumner Använd stigande gasbubblor att underlätta gasutbyte och blanda reaktorn. Detta tillvägagångssätt ger en viss kontroll över belysning och temperatur men gör det på ett sätt som är kostnadseffektivt. Dessutom har vi funnit detta system att ge konsekvent resultat bland biologiska replikat, minska antalet krävs för biologiska replikat som krävs för att få statistiskt signifikanta resultat jämfört med metoden kolv eller flaska. Vi har också använt detta system att framgångsrikt odla blandningar av alger och bakterier21. Utöver Algodling beskriva vi ett förfarande för att mäta den neutrala fetthalten i de odlade algerna. Den senare metoden har varit publicerad någon annanstans22, men vi inkludera den här proceduren för att ge anvisningar för hur man använder det framgångsrikt.

Protocol

1. inställning av bubbla kolumn Photobioreactors Konstruera en uppsättning ventilerade lock från de plast lock som kom med 1 L glasflaskor och hybridisering rör (se figur 1 för Schematisk och foton). Konstruera lock för luftfuktare, blanda fällan, varje air lift photobioreactor och varje flaska reaktor. ¼ ”hål i locket: 2 hål behövs för bioreaktor och luftfuktare lock; 3 hål behövs för blandande fällan. Glida en ¼ ”o-ringen över trådar av e…

Representative Results

Detta förfarande ger en tidsförloppet för alger optisk densitet data vid OD 550 nm (figur 4A). Den optiska densiteten och torr vikt koncentration data kan vara korrelerade (figur 4B). Detta åstadkoms genom att första beräkna den slutliga torrvikt alger koncentrationen efter frystorkning steget. Nästa, den optiska densiteten av kultur seriell utspädning (utförs den sista dagen för provtagning) och faktiska torrvikt halte…

Discussion

Viktigaste när odla alger är en förståelse för de särskilda behoven hos den organism eller grupp av organismer. Alger odling systemet beskrivs här kan användas till kultur ett brett utbud av alger men de särskilda abiotiska faktorerna (temperatur, media, pH, ljusintensitet, CO2 -nivå, luftning rate) måste anpassas till behoven hos organismen. Observera de parametrar som beskrivs här användes för odling av Chlorella och Auxenochlorella. Dessa organismer är av industriellt intres…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Stöd för denna forskning lämnades av USDA nationella institutet för livsmedel och jordbruk Hatch projektet ALA0HIGGINS och Auburn University kontor profossen, Vice President för forskning och i Samuel Ginn College of Engineering. Stöd gavs också av NSF bevilja CBET-1438211.

Materials

Supplies for airlift photobioreactor setup
1 L Pyrex bottles Corning 16157-191 For bottle reactors, humidifiers
1/2" hose clamp Home Depot UC953A or equivalent
1/4" female luer to barb Nordson biomedical Nordson FTLL360-6005 1/4" ID, PP
1/4" ID, 3/8" OD autoclaveable PVC tubing Thermo-Nalgene 63013-244 50'
1/4" in O-rings Grainger 1REC5 #010 Medium Hard Silicone O-Ring, 0.239" I.D., 0.379"O.D.
1/8" Female luer to barb Nordson biomedical FTLL230-6005
1/8" ID, 1/4" OD autoclaveable PVC tubing Thermo-Nalgene 63013-608 250'
1/8" male spinning luer to barb Nordson biomedical MLRL013-6005
1/8" multiport barb Nordson biomedical 4PLL230-6005 1/8" multiport barb
1/8" NPT to barb Nordson biomedical 18230-6005 1/8" 200 series barb
1/8" panel mount luer Nordson biomedical Nordson MLRLB230-6005 1/8", PP
10 gallon fish tank Walmart 802262 Can hold up to 8 bioreactors depending on layout
100-1000 ccm flow meter Dwyer RMA-13-SSV For bottle reactors
2 ft fluorescent light bank Agrobrite FLT24 T5
200-2500 ccm flow meter Dwyer RMA-14-SSV For air regulation upstream of humidifier
250 mL Pyrex bottles Corning 16157-136 For gas mixing after humidifier
50-500 ccm flow meter Dwyer RMA-12-SSV For hybridization tube reactors
5-50 ccm flow meter Dwyer RMA-151-SSV For CO2 flow rate control
Air filters 0.2 µm Whatman/ Fisher 09-745-1A Polyvent, 28 mm, 0.2 µm, PTFE, 50 pack
Check valves VWR 89094-714
Corning lids for pyrex bottles VWR 89000-233 10 GL45 lids
Female luer endcap Nordson biomedical Nordson FTLLP-6005 Female stable PP
Hybridization tubes Corning 32645-030 35×300 mm, pack of 2
Light timer Walmart 556393626
Locknuts Nordson biomedical Nordson LNS-3 1/4", red nylon
Low profile magnetic stirrer VWR 10153-690 Low profile magnetic stirrer
Male luer endcap Nordson biomedical Nordson LP4-6005 Male plug PP
Spinning luer lock ring Nordson biomedical Nordson FSLLR-6005
Stir bars – long VWR 58949-040 38.1 mm, for bottle reactors
Stir bars – medium VWR 58949-034 25 mm, for hyridization tubes
Supplies and reagents for culturing algae
0.2 µm filters VWR 28145-491 13 mm, PTFE, for filtering spent media from daily culture sampling
1 mL syringes Air-tite 89215-216 For filtering spent media from daily culture sampling
1.5 mL tubes VWR 87003-294 Sterile (or equivalent)
10 mL Serological pipettes Greiner Bio-One 82050-482 Sterile (or equivalent)
100 mm plates VWR 25384-342 100×15 mm stackable petri dishes, sterile
15 mL tubes Greiner Bio-One 82050-276 Sterile (or equivalent), polypropylene
2 mL Serological pipette tips Greiner Bio-One 82051-584 Sterile (or equivalent)
2 mL tubes VWR 87003-298 Sterile (or equivalent)
50 mL tubes Greiner Bio-One 82050-348 Sterile (or equivalent), polypropylene
96 well microplate Greiner Bio-One 89089-578 Polystyrene with lid, flat bottom
Inocculating loops VWR 80094-478 Sterile (or equivalent)
Liquid carbon dioxide tank and regulator Airgas CD-50
Supplies and reagents for lipid extraction and neutral lipid assay
2 mL bead tubes VWR 10158-556 Polypropylene tube w/ lid
96 well microplates Greiner Bio-One 82050-774 Polypropylene, flat bottom
Bleach Walmart 550646751 Only use regular bleach, not cleaning bleach
Chloroform BDH BDH1109-4LG
Dimethyl sulfoxide BDH BDH1115-1LP
Isopropyl alcohol BDH BDH1133-1LP
Methanol BDH BDH20864.400
Nile red VWR TCN0659-5G
Pasteur pipette tips VWR 14673-010
Sodium chloride BDH BDH9286-500G
Vegetable oil Walmart 9276383 Any vegetable oil should work as long as it is fresh
Zirconia/ silica beads (0.5 mm diameter) Biospec products 11079105z
Equipment
Analytical balance Mettler-Toledo XS205DU Capable of at least 4 decimal accuracy
Bead homogenizer Omni 19-040E
Benchtop micro centrifuge Thermo Heraeus Fresco 21 with 24×2 Including rotor capable of handling 1.5 and 2 mL tubes
Dry block heater VWR 75838-282 Including dry block for a microplate
Freeze dryer Labconco 7670520 2.5L freeze drying system
Large benchtop centrifuge Thermo Heraeus Megafuge 16R Tissue Including rotors capable of handling 400 mL bottles, 50 mL tubes, and 15 mL tubes
Microplate reader Molecular Devices SpectraMax M2 Capable of reading absorbance and fluorescence
Vortex mixer VWR 10153-838

Riferimenti

  1. Prandini, J. M., et al. Enhancement of nutrient removal from swine wastewater digestate coupled to biogas purification by microalgae Scenedesmus spp. Bioresource Technology. , 67-75 (2016).
  2. Liu, C., et al. Phycoremediation of dairy and winery wastewater using Diplosphaera sp. MM1. Journal of Applied Phycology. 28 (6), 3331-3341 (2016).
  3. Passero, M., Cragin, B., Coats, E. R., McDonald, A. G., Feris, K. Dairy Wastewaters for Algae Cultivation, Polyhydroxyalkanote Reactor Effluent Versus Anaerobic Digester Effluent. BioEnergy Research. 8 (4), 1647-1660 (2015).
  4. Hodgskiss, L. H., Nagy, J., Barnhart, E. P., Cunningham, A. B., Fields, M. W. Cultivation of a native alga for biomass and biofuel accumulation in coal bed methane production water. Algal Research. 19, 63-68 (2016).
  5. Gao, C., et al. Oil accumulation mechanisms of the oleaginous microalga Chlorella protothecoides revealed through its genome, transcriptomes, and proteomes. BMC Genomics. 15, (2014).
  6. Burch, A. R., Franz, A. K. Combined nitrogen limitation and hydrogen peroxide treatment enhances neutral lipid accumulation in the marine diatom Phaeodactylum tricornutum. Bioresource Technology. 219, 559-565 (2016).
  7. Brennan, L., Owende, P. Biofuels from microalgae–A review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products. Renewable Sustainable Energy Reviews. 14 (2), 557-577 (2009).
  8. Branyikova, I., et al. Microalgae – Novel highly efficient starch producers. Biotechnology and Bioengineering. 108 (4), 766-776 (2010).
  9. Chalima, A., et al. Utilization of Volatile Fatty Acids from Microalgae for the Production of High Added Value Compounds. Fermentation. 3 (4), (2017).
  10. Harun, R., Singh, M., Forde, G. M., Danquah, M. K. Bioprocess engineering of microalgae to produce a variety of consumer products. Renewable and Sustainable Energy Reviews. 14 (3), 1037-1047 (2010).
  11. Liu, L., et al. Development of a new method for genetic transformation of the green alga Chlorella ellipsoidea. Molecular biotechnology. 54 (2), 211-219 (2013).
  12. Cheng, J., et al. Mutate Chlorella sp. by nuclear irradiation to fix high concentrations of CO2. Bioresource Technology. 136, 496-501 (2013).
  13. Davis, R., Aden, A., Pienkos, P. T. Techno-economic analysis of autotrophic microalgae for fuel production. Applied Energy. 88 (10), 3524-3531 (2011).
  14. Sales, C. M., Au, Comparison of Scale in a Photosynthetic Reactor System for Algal Remediation of Wastewater. Journal of Visualized Experiments. (121), e55256 (2017).
  15. Higgins, B. T., et al. Cofactor symbiosis for enhanced algal growth, biofuel production, and wastewater treatment. Algal Research. 17, 308-315 (2016).
  16. Higgins, B., et al. Algal-bacterial synergy in treatment of winery wastewater. Nature Clean Water. 1 (6), (2017).
  17. Higgins, B. T., et al. Impact of thiamine metabolites and spent medium from Chlorella sorokiniana on metabolism in the green algae Auxenochlorella prototheciodes. Algal Research. 33, 197-208 (2018).
  18. Lépinay, A., et al. First insight on interactions between bacteria and the marine diatom Haslea ostrearia: Algal growth and metabolomic fingerprinting. Algal Research. 31, 395-405 (2018).
  19. Franchino, M., Comino, E., Bona, F., Riggio, V. A. Growth of three microalgae strains and nutrient removal from an agro-zootechnical digestate. Chemosphere. 92 (6), 738-744 (2013).
  20. Choix, F. J., Lopez-Cisneros, C. G., Mendez-Acosta, H. O. Azospirillum brasilense Increases CO2 Fixation on Microalgae Scenedesmus obliquus, Chlorella vulgaris, and Chlamydomonas reinhardtii Cultured on High CO2 Concentrations. Microbial Ecology. 76 (2), 430-442 (2018).
  21. Higgins, B., VanderGheynst, J. Effects of Escherichia coli on mixotrophic growth of Chlorella minutissima and production of biofuel precursors. PLoS One. 9 (5), e96807 (2014).
  22. Higgins, B., Thornton-Dunwoody, A., Labavitch, J. M., VanderGheynst, J. S. Microplate assay for quantitation of neutral lipids in extracts from microalgae. Analytical Biochemistry. 465, 81-89 (2014).
  23. Tanadul, O. U., Vandergheynst, J. S., Beckles, D. M., Powell, A. L., Labavitch, J. M. The impact of elevated CO2 concentration on the quality of algal starch as a potential biofuel feedstock. Biotechnology and Bioengineering. 111 (7), 1323-1331 (2014).
  24. Folch, J., Lees, M., Sloane Stanley, G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. Journal of Biological Chemistry. 226 (1), 497-509 (1957).
  25. Higgins, B. T., et al. Informatics for improved algal taxonomic classification and research: A case study of UTEX 2341. Algal Research. 12, 545-549 (2015).
  26. Garrett, R. H., Grisham, C. M. . Biochimica. , 578-730 (2012).
  27. de-Bashan, L. E., Trejo, A., Huss, V. A. R., Hernandez, J. -. P., Bashan, Y. Chlorella sorokiniana UTEX 2805, a heat and intense, sunlight-tolerant microalga with potential for removing ammonium from wastewater. Bioresource Technology. 99 (11), 4980-4989 (2008).
  28. Wang, Q., Higgins, B., Ji, H., Zhao, D. . Annual International Meeting of the ASABE. , (2018).
check_url/it/59106?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wang, Q., Peng, H., Higgins, B. T. Cultivation of Green Microalgae in Bubble Column Photobioreactors and an Assay for Neutral Lipids. J. Vis. Exp. (143), e59106, doi:10.3791/59106 (2019).

View Video