Summary

Utarbeidelsen av sopp og plantemateriale for strukturelle Elucidation bruker dynamiske kjernefysiske polarisering SSD NMR

Published: February 12, 2019
doi:

Summary

En protokoll for å forberede 13C,15N-merket sopp og plante prøver for flerdimensjonale SSD NMR spektroskopi og dynamisk kjernefysiske polarisering (DNP) undersøkelser er presentert.

Abstract

Denne protokollen viser hvordan jevnt 13C, 15N-merket fungal materialer kan være produsert og hvordan disse myke materialer bør bli fortsatte for SSD NMR og følsomhet forbedret DNP eksperimenter. Eksempel behandling prosedyren av anlegget biomasse er også detaljert. Denne metoden kan måling av en rekke 1D- og 2D 13C –13C /15N sammenhenger spectra, som gir høy oppløsning strukturelle utviklingen av kompleks biologisk materiale i sin opprinnelige tilstand, med minimal forstyrrelsene. Isotop-merking kan undersøkes av kvantifisere intensiteten i 1D spectra og polarisering overføring effektiviteten i 2D korrelasjon spectra. Suksessen til dynamisk kjernefysiske polarisering (DNP) eksempel forberedelse kan evalueres med følsomhet ekstrautstyr faktor. Ytterligere eksperimenter undersøke de strukturelle aspektene av polysakkarider og proteiner vil føre til en modell av tredimensjonale arkitektur. Disse metodene kan endres og tilpasset for å undersøke en rekke karbohydrat-rik materialer, inkludert naturlig cellen vegger av, sopp, alger og bakterier, samt syntetisk eller karbohydrater polymerer og deres kompleks med andre molekyler.

Introduction

Karbohydrater spille en sentral rolle i ulike biologiske prosesser som energilagring, strukturelle bygningen, og mobilnettet anerkjennelse og vedheft. De er beriket i celleveggen, som er en grunnleggende komponent i, sopp, alger og bakterier1,2,3. Cellen vegg fungerer som en sentral kilde for produksjon av biodrivstoff og biologisk materiale, samt en lovende mål for antimikrobielle behandlinger,4,,5,,6,,7,,8 , 9.

Den moderne forståelsen av disse komplekse materialer har blitt vesentlig avanserte av tiår med innsats som var viet til strukturelle karakterisering ved hjelp av fire store biokjemiske eller genetiske metoder. Den første store metoden avhenger av sekvensiell behandlinger bruker sterke kjemikalier eller enzymer bryte ned cellen vegger i ulike deler, som er etterfulgt av komposisjonelle og koblingsanalyse av sukker i hver fraksjon10. Denne metoden belyser domene fordelingen av polymerer, men tolkningen kan det være misvisende på grunn av de kjemiske og fysiske egenskapene av biomolecules. For eksempel er det vanskelig å avgjøre om alkaliske-utvinnbare brøken stammer fra ett enkelt domene mindre strukturert molekyler eller romlig atskilt molekyler med sammenlignbare oppløselighet. Andre utdraget deler eller hele cellen vegger kan også måles bruker løsning NMR for å avgjøre kovalente sammenhengen, også betegnet som crosslinking, mellom ulike molekyler11,12,13, 14,15. På denne måten detaljert strukturen i kovalente ankere kan bli undersøkt, men begrensninger finnes p.g.a. lav oppløselighet av polysakkarider, relativt lite antall crosslinking områder og uvitenhet av ikke-kovalente effekter som stabiliserer polysakkarid pakking, inkludert hydrogen-binding, van der Waals kraft, elektrostatiske samhandling og polymer forviklinger. Tredje er forpliktende tilhørighet bestemt i vitro bruke isolert polysakkarider16,17,18,19, men rensing prosedyrer kan vesentlig endre strukturen og egenskapene til disse biomolecules. Denne metoden likeledes svikter å gjenskape sofistikert avsettelse og montering av makromolekyler etter biosyntesen. Til slutt, fenotype, celle morfologi og mekaniske egenskaper av genetisk mutanter med dempes produksjonen av visse cellen vegg komponent kaste lys på strukturelle funksjoner av polysakkarider, men mer molekylær bevis er nødvendig å bygge bro disse makroskopisk observasjoner med funksjonen utviklet av protein machineries20.

Nylige fremskritt innen utvikling og anvendelse av flerdimensjonale SSD NMR spektroskopi har innført en unik mulighet for å løse disse strukturell oppgaver. 2D/3D SSD NMR eksperimenter aktivere høyoppløselig undersøkelse av sammensetningen og arkitektur av karbohydrat-rik materialer i den opprinnelige tilstanden uten store forstyrrelsene. Strukturelle undersøkelser har blitt vellykket utført både primær og sekundær cellevegger av planter, katalytisk behandlet biomasse, bakteriell biofilm, pigment spøkelser i sopp og nylig av forfatterne, intakt cellen vegger i en sykdomsfremkallende sopp Aspergillus fumigatus 21 , 22 , 23 , 24 , 25 , 26 , 27 , 28 , 29 , 30 , 31. utvikling av dynamisk kjernefysiske polarisering (DNP)32,33,34,35,36,37,38 , 39 , 40 , 41 , 42 muliggjør vesentlig NMR strukturelle forklaring som følsomhet styrking av DNP markert Skadetiden eksperimentelle på disse komplekse biologisk materiale. Protokollen beskrevet her detaljer prosedyrer for isotop-merking soppen A. fumigatus og forbereder sopp og plante prøver for SSD NMR og DNP karakterisering. Lignende fremgangsmåter som merking skal gjelder for andre sopp med endrede medium, og eksempel forberedelse prosedyrer bør være generelt gjelder for andre karbohydrat-rik biologisk materiale.

Protocol

1. vekst 13C, 15N-merket Aspergillus fumigatus flytende Medium Utarbeidelse av umerkede og 13C, 15N-merket oppblomstringen mediumMerk: Begge gjær ekstra pepton druesukker medium (YPD) og den forbedrede minimal middels43 ble brukt for vedlikehold av sopp kultur. Alle trinnene etter autoklavering utføres laminær strømning hette å redusere forurensning. Utarbeidelse av umerkede flytende medium: oppløse 6.5 g av YPD pulve…

Representative Results

Isotop merkingen vesentlig forbedrer NMR følsomheten og gjør det mulig for å måle en rekke 2D 13C -13C og 13C -15N korrelasjon spectra analysere komposisjon, hydration, mobilitet og pakking av polymerer, som vil bli integrert for å konstruere en tredimensjonal modell av cellevegg arkitektur (figur 1). Hvis uniform merkingen lykkes, et komplett sett av 1D 13C og 15N spectra kan samles i 1 t…

Discussion

Sammenlignet med metodene biokjemiske, har SSD NMR fordeler som en ikke-destruktiv og høy oppløsning teknikk. NMR er også kvantitative kompositoriske analyse, og i motsetning til de fleste andre analytiske metoder, gjør ikke har usikkerhet introdusert av begrenset Løseligheten av biopolymers. Etablering av gjeldende protokollen forenkler fremtidige studier på karbohydrater-rik biologisk materiale og functionalized polymerer. Det bør imidlertid bemerkes at resonans tildeling og data analyse kan være tidkrevende og…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Science Foundation gjennom NSF OIA-1833040. Den nasjonale høy magnetfelt Laboratory (NHMFL) støttes av National Science Foundation gjennom DMR-1157490 og delstaten Florida. MAS-DNP systemet NHMFL er finansiert delvis av NIH S10 OD018519 og NSF CHE-1229170.

Materials

Ammonium Molybdate Tetrahydrate Acros Organics 12054-85-2
AMUPol Cortecnet C010P002
Analytical weighing balance Ohaus B730439218 Model PA84C
Bioclave 16 L VWR 470230-598
Biosafety Cabinet Labconco corporation 302319100
Boric acid VWR BDH9222 store at 15-30 °C
Cobalt(II) Chloride Hexahydrate Honeywell|Fluka 60820 ≥98 %
Copper(II) Sulfate Pentahydrate BDH BDH9312 ≥98 %
Corning LSE shaking incubator Thermo Fisher Scientific 7202152
D2O Sigma Aldrich 151882 99.9 atom % D
d6-DMSO Sigma Aldrich 151874 99.9 atom % D
d8-glycerol Sigma Aldrich 447498 ≥99 atom % D
Dialysis tubing 3.2 kDa Sigma Aldrich D2272 132724
Dipotassium Phosphate VWR BDH9266 ≥98 %
Glycerol Sigma Aldrich G5516 ≥99.5 %
Heraus Megafuge 16R Centrifuge Thermo Fischer Scientific 750004271 Maximum RCF 25,830 x g
HR-MAS Disposable Insert Kit Bruker B4493 Kel-F
Iron(II) Sulfate Heptahydrate Alfa Aesar 14498 ≥99+ %
Magnesium Sulfate Heptahydrate VWR 10034998 store at 18-26 °C
Manganese(II) Chloride Tetrahydrate Alfa Aesar 11563 ≥99 %
Monopotassium Phosphate VWR 470302-254 ≥99 %
pH Meter Mettler Toledo B706689216
Tetrasodium Ethylenediaminetetraacetate Acros Organics 13235-36-9 ≥99.5 %
Zinc Sulfate Heptahydrate Alfa Aesar 33399 ≥98 %
12C3, d8-glycerol Cambridge Isotope Laboratory CDLM-8660 12C3, 99.95%; D8, 98%
13C6-glucose Sigma Alrdrich 364606 ≥99 % (CP)
15N-sodium nitrate Sigma Aldrich 364606 ≥98 % 15N, ≥99 (cp)
3.2 mm sapphire NMR rotor Cortecnet B6939
3.2 mm Silicone plug Bruker B7089
4 mm MAS Rotor Kit Bruker H14355 Zirconia

Riferimenti

  1. Murrey, H. E., Hsieh-Wilson, L. C. The chemical neurobiology of carbohydrates. Chemical Reviews. 108 (5), 1708-1731 (2008).
  2. Latge, J. P. The cell wall: a carbohydrate armour for the fungal cell. Molecular Microbiology. 66 (2), 279-290 (2007).
  3. Cosgrove, D. J. Growth of the plant cell wall. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 6 (11), 850-861 (2005).
  4. Furtado, A., et al. Modifying plants for biofuel and biomaterial production. Plant Biotechnology Journal. 12 (9), 1246-1258 (2014).
  5. Loqué, D., Scheller, H. V., Pauly, M. Engineering of plant cell walls for enhanced biofuel production. Current Opinion in Plant Biology. 25, 151-161 (2015).
  6. Latge, J. P. Aspergillus fumigatus and aspergillosis. Clinical Microbiology Reviews. 12 (2), 310-350 (1999).
  7. Ragauskas, A. J., et al. The path forward for biofuels and biomaterials. Science. 311 (5760), 484-489 (2006).
  8. Service, R. F. Cellulosic ethanol – Biofuel researchers prepare to reap a new harvest. Science. 315 (5818), 1488-1491 (2007).
  9. Somerville, C., Youngs, H., Taylor, C., Davis, S. C., Long, S. P. Feedstocks for Lignocellulosic Biofuels. Science. 329 (5993), 790-792 (2010).
  10. Schiavone, M., et al. A combined chemical and enzymatic method to determine quantitatively the polysaccharide components in the cell wall of yeasts. FEMS Yeast Research. 14 (6), 933-947 (2014).
  11. Cheng, K., Sorek, H., Zimmermann, H., Wemmer, D. E., Pauly, M. Solution-State 2D NMR Spectroscopy of Plant Cell Walls Enabled by a Dimethylsulfoxide-d(6)/1-Ethyl-3-methylimidazolium Acetate Solvent. Analytical Chemistry. 85 (6), 3213-3221 (2013).
  12. Mansfield, S. D., Kim, H., Lu, F. C., Ralph, J. Whole plant cell wall characterization using solution-state 2D NMR. Nature Protocols. 7 (9), 1579-1589 (2012).
  13. Tan, L., et al. An Arabidopsis Cell Wall Proteoglycan Consists of Pectin and Arabinoxylan Covalently Linked to an Arabinogalactan Protein. Plant Cell. 25 (1), 270-287 (2013).
  14. Kollar, R., Petrakova, E., Ashwell, G., Robbins, P. W., Cabib, E. Architecture of the Yeast-Cell Wall – the Linkage between Chitin and Beta(1-3)-Glucan. Journal of Biological Chemistry. 270 (3), 1170-1178 (1995).
  15. Kollar, R., et al. Architecture of the yeast cell wall – beta(1->6)-glucan interconnects mannoprotein, beta(1-3)-glucan, and chitin. Journal of Biological Chemistry. 272 (28), 17762-17775 (1997).
  16. Mccann, M. C., et al. Old and new ways to probe plant cell wall architecture. Canadian Journal of Botany. 73, S103-S113 (1995).
  17. Whitney, S. E. C., Brigham, J. E., Darke, A. H., Reid, J. S. G., Gidley, M. J. In-Vitro Assembly of Cellulose/Xyloglucan Networks – Ultrastructural and Molecular Aspects. The Plant Journal. 8 (4), 491-504 (1995).
  18. Zykwinska, A. W., Ralet, M. C. J., Garnier, C. D., Thibault, J. F. J. Evidence for in vitro binding of pectin side chains to cellulose. Plant Physiology. 139 (1), 397-407 (2005).
  19. Kiemle, S. N., et al. Role of (1,3)(1,4)-beta-Glucan in Cell Walls: Interaction with Cellulose. Biomacromolecules. 15 (5), 1727-1736 (2014).
  20. Pogorelko, G., Lionetti, V., Bellincampi, D., Zabotina, O. Cell wall integrity: targeted post-synthetic modifications to reveal its role in plant growth and defense against pathogens. Plant Signaling & Behavior. 8 (9), e25435 (2013).
  21. Wang, T., Park, Y. B., Cosgrove, D. J., Hong, M. Cellulose-Pectin Spatial Contacts Are Inherent to Never-Dried Arabidopsis thaliana Primary Cell Walls: Evidence from Solid-State NMR. Plant Physiology. 168 (3), 871-884 (2015).
  22. Wang, T., Salazar, A., Zabotina, O. A., Hong, M. Structure and dynamics of Brachypodium primary cell wall polysaccharides from two-dimensional 13C solid-state nuclear magnetic resonance spectroscopy. Biochimica. 53 (17), 2840-2854 (2014).
  23. Grantham, N. J., et al. An even pattern of xylan substitution is critical for interaction with cellulose in plant cell walls. Nature Plants. 3 (11), 859-865 (2017).
  24. Simmons, T. J., et al. Folding of xylan onto cellulose fibrils in plant cell walls revealed by solid-state NMR. Nature Communications. 7, 13902 (2016).
  25. Komatsu, T., Kikuchi, J. Selective Signal Detection in Solid-State NMR Using Rotor-Synchronized Dipolar Dephasing for the Analysis of Hemicellulose in Lignocellulosic Biomass. The Journal of Physical Chemistry Letters. 4 (14), 2279-2283 (2013).
  26. Perras, F. A., et al. Atomic-Level Structure Characterization of Biomass Pre- and Post-Lignin Treatment by Dynamic Nuclear Polarization-Enhanced Solid-State NMR. The Journal of Physical Chemistry A. 121 (3), 623-630 (2017).
  27. Chatterjee, S., Prados-Rosales, R., Itin, B., Casadevall, A., Stark, R. E. Solid-state NMR Reveals the Carbon-based Molecular Architecture of Cryptococcus neoformans Fungal Eumelanins in the Cell Wall. Journal of Biological Chemistry. 290 (22), 13779-13790 (2015).
  28. Zhong, J., Frases, S., Wang, H., Casadevall, A., Stark, R. E. Following fungal melanin biosynthesis with solid-state NMR: biopolymer molecular structures and possible connections to cell-wall polysaccharides. Biochimica. 47 (16), 4701-4710 (2008).
  29. Kang, X., et al. Molecular architecture of fungal cell walls revealed by solid-state NMR. Nature Communications. 9 (1), 2747 (2018).
  30. Takahashi, H., et al. Solid-state NMR on bacterial cells: selective cell wall signal enhancement and resolution improvement using dynamic nuclear polarization. Journal of the American Chemical Society. 135 (13), 5105-5110 (2013).
  31. Wang, T., Hong, M. Solid-state NMR investigations of cellulose structure and interactions with matrix polysaccharides in plant primary cell walls. Journal of Experimental Botany. 67, 503-514 (2016).
  32. Mentink-Vigier, F., Akbey, &. #. 2. 2. 0. ;., Oschkinat, H., Vega, S., Feintuch, A. Theoretical aspects of magic angle spinning-dynamic nuclear polarization. Journal of Magnetic Resonance. 258, 102-120 (2015).
  33. Gupta, R., et al. Dynamic nuclear polarization enhanced MAS NMR spectroscopy for structural analysis of HIV-1 protein assemblies. The Journal of Physical Chemistry B. 120 (2), 329-339 (2016).
  34. Takahashi, H., Hediger, S., De Paëpe, G. Matrix-free dynamic nuclear polarization enables solid-state NMR 13 C-13 C correlation spectroscopy of proteins at natural isotopic abundance. Chemical Communications. 49 (82), 9479-9481 (2013).
  35. Ni, Q. Z., et al. High frequency dynamic nuclear polarization. Accounts of Chemical Research. 46 (9), 1933-1941 (2013).
  36. Koers, E. J., et al. NMR-based structural biology enhanced by dynamic nuclear polarization at high magnetic field. Journal of Biomolecular NMR. 60 (2-3), 157-168 (2014).
  37. Saliba, E. P., et al. Electron Decoupling with Dynamic Nuclear Polarization in Rotating Solids. Journal of the American Chemical Society. 139 (18), 6310-6313 (2017).
  38. Mentink-Vigier, F., et al. Efficient cross-effect dynamic nuclear polarization without depolarization in high-resolution MAS NMR. Chemical Science. 8 (12), 8150-8163 (2017).
  39. Smith, A. N., Twahir, U. T., Dubroca, T., Fanucci, G. E., Long, J. R. Molecular Rationale for Improved Dynamic Nuclear Polarization of Biomembranes. The Journal of Physical Chemistry B. 120 (32), 7880-7888 (2016).
  40. Su, Y., Andreas, L., Griffin, R. G. Magic angle spinning NMR of proteins: high-frequency dynamic nuclear polarization and 1H detection. Annual Reviews of Biochemistry. 84, 465-497 (2015).
  41. Hediger, S., Lee, S., Mentink-Vigier, F., Paepe, G. D. MAS-DNP Enhancements: Hyperpolarization, Depolarization, and Absolute Sensitivity. eMagRes. 7, 1-13 (2018).
  42. Ni, Q. Z., et al. In Situ Characterization of Pharmaceutical Formulations by Dynamic Nuclear Polarization Enhanced MAS NMR. The Journal of Physical Chemistry B. 121 (34), 8132-8141 (2017).
  43. Hill, T. W., Kafer, E. Improved protocols for Aspergillus minimal medium: trace element and minimal medium salt stock solutions. Fungal Genetics Reports. 48 (1), 20-21 (2001).
  44. Rossini, A. J., et al. Dynamic nuclear polarization surface enhanced NMR spectroscopy. Accounts of Chemical Research. 46 (9), 1942-1951 (2013).
  45. Sauvée, C., et al. Highly efficient, water-soluble polarizing agents for dynamic nuclear polarization at high frequency. Angewandte Chemie International Edition. 125 (41), 11058-11061 (2013).
  46. Phyo, P., et al. Gradients in Wall Mechanics and Polysaccharides along Growing Inflorescence Stems. Plant physiology. 175 (4), 1593-1607 (2017).
  47. White, P. B., Wang, T., Park, Y. B., Cosgrove, D. J., Hong, M. Water-polysaccharide interactions in the primary cell wall of Arabidopsis thaliana from polarization transfer solid-state NMR. Journal of the American Chemical Society. 136 (29), 10399-10409 (2014).
  48. Jippo, T., Kamo, O., Nagayama, K. Determination of long-range proton-carbon 13 coupling constants with selective two-dimensional INEPT. Journal of Magnetic Resonance. 66 (2), 344-348 (1969).
  49. Morris, G. A. Sensitivity enhancement in nitrogen-15 NMR: polarization transfer using the INEPT pulse sequence. Journal of the American Chemical Society. 102 (1), 428-429 (1980).
  50. Cadars, S., et al. The refocused INADEQUATE MAS NMR experiment in multiple spin-systems: interpreting observed correlation peaks and optimising lineshapes. Journal of Magnetic Resonance. 188 (1), 24-34 (2007).
  51. Lesage, A., Bardet, M., Emsley, L. Through-bond carbon− carbon connectivities in disordered solids by NMR. Journal of the American Chemical Society. 121 (47), 10987-10993 (1999).
  52. Bennett, A. E., et al. Homonuclear radio frequency-driven recoupling in rotating solids. The Journal of Chemical Physics. 108 (22), 9463-9479 (1998).
  53. Lu, X., Guo, C., Hou, G., Polenova, T. Combined zero-quantum and spin-diffusion mixing for efficient homonuclear correlation spectroscopy under fast MAS: broadband recoupling and detection of long-range correlations. Journal of Biomolecular NMR. 61 (1), 7-20 (2015).
  54. Wang, T., Zabotina, O., Hong, M. Pectin-cellulose interactions in the Arabidopsis primary cell wall from two-dimensional magic-angle-spinning solid-state nuclear magnetic resonance. Biochimica. 51 (49), 9846-9856 (2012).
  55. Wang, T., Yang, H., Kubicki, J. D., Hong, M. Cellulose Structural Polymorphism in Plant Primary Cell Walls Investigated by High-Field 2D Solid-State NMR Spectroscopy and Density Functional Theory Calculations. Biomacromolecules. 17 (6), 2210-2222 (2016).
  56. Kirui, A., et al. Atomic Resolution of Cotton Cellulose Structure Enabled by Dynamic Nuclear Polarization Solid-State NMR. Cellulose. , (2019).
  57. Wang, T., et al. Sensitivity-enhanced solid-state NMR detection of expansin’s target in plant cell walls. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (41), 16444-16449 (2013).
  58. Wang, T., Park, Y. B., Cosgrove, D. J., Hong, M. Cellulose-Pectin Spatial Contacts Are Inherent to Never-Dried Arabidopsis thaliana Primary Cell Walls: Evidence from Solid-State NMR. Plant Physiology. 168 (3), 871-884 (2015).
  59. Liao, S. Y., Lee, M., Wang, T., Sergeyev, I. V., Hong, M. Efficient DNP NMR of membrane proteins: sample preparation protocols, sensitivity, and radical location. Journal of Biomolecular NMR. 64 (3), 223-237 (2016).
  60. Kang, X., et al. Lignin-Polysaccharide Interactions in Plant Secondary Cell Walls Revealed by Solid-State NMR. Nature Communications. 10, 347 (2019).
  61. Takahashi, H., et al. Rapid Natural-Abundance 2D 13C-13C Correlation Spectroscopy Using Dynamic Nuclear Polarization Enhanced Solid-State NMR and Matrix-Free Sample Preparation. Angewandte Chemie International Edition. 51 (47), 11766-11769 (2012).
check_url/it/59152?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kirui, A., Dickwella Widanage, M. C., Mentink-Vigier, F., Wang, P., Kang, X., Wang, T. Preparation of Fungal and Plant Materials for Structural Elucidation Using Dynamic Nuclear Polarization Solid-State NMR. J. Vis. Exp. (144), e59152, doi:10.3791/59152 (2019).

View Video